Содержание

Вечерний Петербург — «Насморк, ясно, не напасть, только как бы не пропасть»


Насморк, ясно, не напасть, только как бы не пропасть

Самолечение вредно, даже когда лечите банальный насморк

Классическая петербургская осенняя погода, как водится, принесла с собой всплеск простудных заболеваний. От чихающих да кашляющих никуда не скроешься. И само собой, очень многих одолевает насморк, о существовании которого мы успели и подзабыть за жаркие летние денечки. Что же такое насморк и как с ним бороться? Вроде бы мы и сами умные, о насморке все знаем. А вот и нет. Как свидетельствует медицинская практика, граждане так умудряются «залечить» насморк, что в итоге получают серьезные осложнения, вплоть до госпитализации в стационар. Об этом недуге, который лишает нас обоняния, мешает спать да и вообще существенно портит внешность, а значит, и настроение, редакция «ВП» спросила у Альберта Эдуардовича Шахназарова, заведующего отделением отоларингологии поликлиники Государственного медицинского университета имени академика Павлова.

— Насморк — это воспаление слизистой оболочки носа, на языке медицины — ринит (от греческого слова «ринос» — «нос»). Всем нам знакомый острый ринит является результатом воздействия на слизистую носа вирусной или бактериальной инфекции. Ринит — не заболевание как таковое, а симптом инфекционного заболевания. Это могут быть банальные ОРЗ, а также грипп, риновирус, корь, скарлатина и другие недуги. Именно поэтому консультация врача очень важна, чтобы не пропустить начало тяжелого заболевания.

Острый ринит также может быть спровоцирован неблагоприятным фактором внешней среды, например сильной загазованностью воздуха, что в условиях мегаполиса — обычное дело.

Различают три стадии развития ринита. Первая — стадия раздражения: в носу как бы першит, прозрачные выделения только начинаются. Вторая — стадия обильных выделений из носа. Третья — когда насморк переходит в стадию слизисто-гнойных выделений. Продолжительность острого насморка обычно 5 — 7 дней, в тяжелых случаях — до двух недель.

К сожалению, вылечить насморк (мы говорим об остром рините) за один день не получится. Но вот за два-три дня — реально. Если лечение начато на ранней стадии.

Лечение ринита включает в себя промывание носовых пазух. Идеально, если это будет спрей с обработанной морской водой. Но можно промывать нос и кипяченой водой, добавив в нее соль — морскую или поваренную. Концентрация раствора может быть различной: начиная с половины столовой ложки соли на литр воды и больше (для взрослого человека). Промывать нос следует несколько раз в день, каждую ноздрю по очереди. Раствор следует заливать с помощью специального устройства для промывания носа или спринцовки (которые можно купить в аптеке). Лучше это делать, наклонившись над раковиной (чтобы жидкость могла свободно в нее стекать) и приоткрыв рот. Обязательно обратите внимание на температуру воды. Она не должна обжигать слизистые — лучше, чтобы вода была немного теплее комнатной температуры. Высморкайтесь (но без усилий) после промывания, чтобы удалить остатки воды из носа.

Можно закапывать в нос лекарственные препараты (в том числе растительного происхождения), можно использовать гомеопатические лекарства.

Также нужно применять средства, укрепляющие иммунитет.

Помните, что широко рекламируемые препараты, снимающие симптомы ОРЗ и ОРВИ, именно снимают симптомы. Их можно добавлять в схему лечения, но не делать на них упор.

И учтем: в период повышения заболеваемости ОРВИ и гриппом рекомендуется смазывать носовые ходы противовирусной мазью (можно взять дешевую оксолиновую мазь). Также в период повышения заболеваемости рекомендуется периодически орошать нос спреем с морской водой (по мере необходимости, например при пересыхании слизистых, начиная с 3 — 4 раз в день).

Как сморкаться правильно

  1. Не нужно высмаркивать обе ноздри одновременно, поскольку это может привести к развитию острого отита (так как создается излишнее давление в полости носа и инфекция может проникнуть в среднее ухо).
  2. Сморкаться следует без усилий, прочищая каждую ноздрю в отдельности, слегка приоткрывая при этом рот.
  3. Шмыгать носом не рекомендуется, так как инфекция при этом может проникнуть еще глубже в носоглотку, что будет только на руку болезни.
  4. Пользуйтесь только сухими чистыми платками. Оптимальный вариант — одноразовые бумажные. Помним, что влажное содержимое платка — идеальная среда для размножения микробов. Поэтому платки из ткани желательно стирать после каждого использования.

Что нельзя делать при насморке

  1. Прогревать нос и область околоносовых пазух мешочками с горячим песком (или крупой, морской солью), вареными куриными яйцами и прочими «обогревательными приборами». Такие прогревания вместо пользы могут обернуться развитием синусита и гайморита. Тепловые процедуры — только по назначению врача!
  2. Нельзя закапывать в нос концентрированный сок лука, запихивать в нос чесночные дольки, полоскать нос концентрированными отварами трав и овощей. Рискуете заполучить ожог слизистой оболочки пазух носа.
    Также с осторожностью нужно лечить и больное горло. Например, народный рецепт по смазыванию глотки керосином оборачивается некротическим поражением глотки.

Формы ринитов

  • Острый — сопровождающий ОРЗ, грипп и другие инфекционные недуги.
  • Хронический. В хронический может перейти острый ринит. К хроническому риниту также может привести длительное воздействие неблагоприятных факторов (в том числе на вредных производствах). Обязательно обращайтесь к врачу!
  • Вазомоторный ринит обусловлен нарушением реакции организма на рефлекторные раздражители (холодный воздух, резкий запах), что ведет к бурной реакции со стороны слизистой носа.
  • Аллергический ринит. Обращение к врачу-аллергологу обязательно!

Как закапывать в нос лекарство

  1. При закапывании стараемся держать голову прямо (если используем капли, то голову слегка запрокидываем).
  2. Лучше использовать лекарство в виде спрея, так достигается максимальное орошение слизистой носа при использовании минимального количества лекарства. Капли предпочтительней для детей до 6 лет (чтобы избежать развития ларингоспазма — внезапного непроизвольного сокращения мышц гортани), а также при насморке, который сопровождается ощущением заложенности ушей.
  3. При насморке, сопровождающемся ощущением заложенности ушей, нужно сначала закапать лекарство в правую половину носа и наклонить голову вправо. Задержать это положение на 15 — 30 секунд. Затем также закапать в левую половину носа. При таком способе закапывания лекарство достигает устьев слуховых труб, снимая с них отек, уменьшая ощущение заложенности ушей и предупреждая развитие отита.
  4. При очень сильной заложенности носа сморкаемся только после закапывания сосудосуживающего препарата.
  5. Помним, что при ОРЗ нельзя закапывать масляные капли, так как они не обладают сосудосуживающим свойством и вдобавок оставляют на слизистой носа пленку. Пленка снижает защитные способности слизистой и не мешает развиваться патогенным микроорганизмам.
  6. Для профилактики насморка можно в период подъема заболеваемости орошать нос разными спреями на основе морской воды.
    Эти же спреи пригодятся и в схеме лечения насморка.
  7. Перед использованием любого лекарства внимательно читайте инструкцию! Есть противопоказания. И не применяйте препарат дольше указанного в инструкции срока. Даже препараты на основе лекарственных трав нельзя применять очень долго.

Татьяна Тюменева

Информация с сайта газеты «Вечерний Петербург»

Как прочистить заложенный нос и заставить его дышать – 4 способа, которые подсказали британские врачи

Аллергия, коронавирус, грипп, сезонная инфекция – поводов для заложенности носа не счесть. Едва ли не каждый четвертый человек в мире нуждается в специальных каплях, к сожалению, далеко не безвредных.

Фото: pexel.com

Заблокированный нос вызывает дискомфорт, мешает работе и учебе. Что делать, если нос не дышит, а голова раскалывается на части? Британские врачи напомнили о способах, которыми лечились наши бабушки, не имеющие представления о сосудосуживающих каплях.

Итак, небольшая экскурсия в прошлое вместе с Express.

Подышите над паром. Старинный метод дает неожиданные результаты. Согрейте воду в любой широкой емкости, наклонитесь над ней, не забыв прикрыть голову тканью или чистым вафельным полотенцем. Через несколько минут нос очистится, голова перестанет болеть и гудеть. Травы или эфирные масла, добавленные в воду, усилят эффект в несколько раз. Запаситесь ромашкой, эвкалиптом, мятой. Вариантов гораздо больше.

Наложите теплый компресс. Теплое влажное полотенце, приложенное к лицу, поможет снять отек и воспаление, которые возникают при закупорке носа или инфекции пазух носа. Шаги самые простые. Смочите полотенце в теплой воде, отожмите его и накройте лицо так, чтобы было удобно дышать ртом. Процедура хороша еще и тем, что сохраняет слизистые оболочки влажными.

Нети Пот. Так называются небольшие кастрюли в форме чайника. Они применяются в йоге как средство личной гигиены и профилактики заболеваний носоглотки.

Нети хорошо удаляет грязь и слизь из носа, очищает носовые пазухи от бактерий, улучшает состояние при аллергии, бронхите. Эффективность процедуры увеличит морская соль.

Высокая подушка. Одна из главных ошибок пациентов, жалующихся на заложенный нос, заключается в неверной позе во время сна. Если подушка находится на одном уровне с плечами, это усилит проблему, приведет к застойным явлениям в носовых пазухах носа. При заложенности носа врачи советуют спать с приподнятой головой и слегка опущенным подбородком. Такая поза поможет очистить нос и носовые пазухи от слизи.

В каких случаях надо обратиться к врачу по поводу заложенного носа? Чаще всего проблемы, вызванные блокировкой носовых пазух, проходят в течение недели после появления симптомов. Но если ситуация затянулась, надо обратиться к врачу. Идти в поликлинику необходимо и в тех случаях, когда заложенность возникает часто, сопровождается температурой выше 38 градусов.

Данная статья носит информационный характер. Перед тем, как пользоваться старинными способами, необходимо проконсультироваться с лечащим врачом. Ранее сетевое издание «Учительская газета» рассказало, как продлить жизнь, как избавиться от храпа, каким не должен быть завтрак для желающих похудеть, а также о том, какие фрукты ухудшат состояние больных артритом.

Правительство Магаданской области :: Все новости :: КАК БЫСТРО ВЫЛЕЧИТЬ НАСМОРК

required meta for utf-8 handling!

Порой всерьез насморк как заболевание воспринимают лишь, когда дышать становится совсем невозможно, до последнего момента руководствуясь расхожим правилом «за неделю само пройдет».

Врачи с этим «сам пройдет» категорически не согласны – сопливый нос может оказаться и предвестником, и причиной намного более серьёзных проблем.
Насморк – ринит может быть инфекционным и неинфекционным, но в любом случае его суть заключается в воспалении слизистой оболочки носа:
• острый ринит;
• хронический;
• аллергический;
• вазомоторный.
При общем проявлении синдрома воспаления слизистой оболочки носа все четыре типа насморка являются следствием разных обстоятельств, различается также течение болезни, а значит, и методы ее лечения.
Острый насморк
Причина возникновения острого ринита – патологическое воздействие вирусов или бактерий на слизистую носа. У человека внезапно начинается общее недомогание, отекает нос, появляются частые позывы к чиханию.
Чаще всего острый насморк приходит вместе с инфекционным заболеванием, например, гриппом, скарлатиной или корью. Острый насморк, кстати, может оказаться следствием не самых осмотрительных сексуальных отношений – острый ринит является одним из возможных симптомов гонореи.
Естественно, что при таких обстоятельствах насморк – далеко не главная проблема, лечением острых инфекционных заболеваний должны заниматься специалисты.
Поэтому в избавлении от острого ринита главное своевременно и без промедлений обратиться к врачу.
Хронический ринит
Хронический насморк – уже не просто воспаление слизистой оболочки. При хроническом течении ринита слизистая носа меняет свою структуру, разрастается, утолщаются стенки кровеносных сосудов. Страдающие от этого заболевания жалуются на ослабление обоняния, заложенность и частые корки в носу.
У хронического ринита есть основные причины возникновения:
• неблагоприятная окружающая среда, табачный дым, пыль, загазованность воздуха, пары химикатов;
• травмы и искривления носовой перегородки;
• исход долго не лечившегося и тяжело прошедшего острого насморка;
• нарушение местного кровообращения в тканях носа.
Быстро вылечить хронический насморк, невозможно, но основные симптомы все же снять можно. В зависимости от происхождения и типа хронического ринита врач может порекомендовать:
• капли в нос с вяжущим действием, уменьшающие продукцию слизи;
• увлажняющие полость носа антисептические солевые растворы;
• антибактериальные препараты при обострениях, вызванных инфекцией;
• сосудосуживающие и противовоспалительные спреи;
• витаминные капли на масляной основе при атрофическом рините, сопровождающемся истончением и хрупкостью слизистой и поверхностных кровеносных сосудов;
• физиотерапию, включая УВЧ, электрофорез, лекарственные ингаляции и прочие процедуры;
• операцию по удалению участков разросшихся тканей или по исправлению перегородки.
В перспективе стоит подумать о переезде в более комфортные условия, отказаться от работы с вредными и раздражающими веществами и, конечно, посоветоваться с лор-врачом для подбора более продолжительного курса лечения, который позволит справиться с проблемой, а не ее последствиями.
Отдельно в хронических насморках стоит атрофический ринит- озена. Это заболевание характеризуют образующиеся в носу зловонные зеленые корки и потеря обоняния, связанная с атрофией слизистой и нервных окончаний носа. Выбрать правильное лечение озены поможет только врач, после того как установит ее происхождение.
Аллергический ринит
Слезы из глаз, многократные чихания, неуемный зуд и обильные выделения из опухшего носа. Эта картина красочно восстает в памяти аллергиков при одной мысли о приходе лета, тополином пухе или цветочной пыльце.
В основе аллергического ринита лежит немедленная воспалительная реакция слизистой оболочки носа на контакт с теми или иными аллергенами. Сосудосуживающие капли в случае с аллергическим ринитом не только окажутся бесполезными, но способны привести к ухудшению состояния и возникновению нового заболевания – медикаментозного ринита.
Сталкивавшиеся с этой проблемой ранее спешат принять уже знакомые антигистаминные препараты. Но не менее важно и сразу же тщательно очистить нос от аллергена, промыв его противоотёчными, противовоспалительными и увлажняющими растворами.
Эти растворы доступны по цене и продаются в любой аптеке, их полезно держать под рукой всем, кто страдает от насморков, притом не только аллергических. Часто такие спреи делаются на основе подсоленной или морской воды, в них могут содержаться различные добавки, отвечающие за снятие раздражения и зуда, размягчение корок и слизи.
Если аллергический ринит носит круглогодичный характер, то можно порекомендовать использование профилактических средств на основе растительной целлюлозы. Такие капли образуют тончайшую защитную пленку на слизистой оболочке носа, защищая ее от контакта с возможными раздражителями.
При тяжелых случаях аллергического ринита специально под пациента может быть подобран препарат-спрей на основе кортикостероидов и его грамотная дозировка.
В случае, когда аллергический ринит появился впервые, либо заболевание протекает более тяжело, нежели обычно, надо незамедлительно обратиться за консультацией к врачу.
Вазомоторный ринит
Самым сложным для понимания причин является ринит вазомоторный. В основе его возникновения — проблемы гормонального фона, изменения сосудов и нарушение работы механизмов, отвечающих за реакцию на различные рефлекторные раздражения.
Заболевание может преследовать человека долгие годы, как и хронический ринит, периодически переходя в стадию обострения. В нем есть все общее от прочих насморков – приступы с отеком слизистой, частые чихания и обильные выделения из носа.
Снять отечность и хроническое воспаление можно при помощи спреев с кортикостероидами либо инъекций непосредственно под слизистую оболочку полости носа. Однако для получения стойкого эффекта в борьбе с вазомоторным ринитом может понадобиться хирургическая операция – подслизистая вазотомия.
Это быстрая манипуляция под местной анестезией, направленная на рассечение сосудистых соединений между слизистой и надкостницей носа с помощью радиоволновой и электрокоагуляции, лазера или ультразвука.
Общие методы, которые помогут быстро вылечить насморк
Еще до приема врача, который по разным причинам может не случиться в первый же день ухудшения самочувствия, можно попробовать если не быстро вылечить насморк, то по крайней мере облегчить себе жизнь.
Первым и главным самостоятельным действием при насморке любого вида является очищение носовой полости от корок, слизи, микробов, вирусов и аллергенов.
В аптеках представлены десятки спреев, подходящих для всех типов насморка. В основе большинства растворенная в воде морская соль, а также различные минералы и добавки. Такие спреи практически не имеют противопоказаний, выпускаются в удобных формах, разных объемах и концентрациях, рассчитанных как на взрослых, так и на детей.
Кроме того, предварительное «морское» очищение носа улучшит усвоение прописанных врачом сосудосуживающих препаратов. Следует помнить, что одной из распространенных причин насморка является злоупотребление каплями для носа. Не стоит «выписывать» себе новые лекарства, руководствуясь яркой рекламой, пусть лечением занимаются профессионалы.
До получения рецепта на лекарства, можно попробовать закапать в нос масло облепихи и шиповника, свежий сок от листа каланхоэ и алоэ, нюхать ментоловое масло, одновременно смазывая им виски, нос, лоб, дышать парами измельченного свежего лука и чеснока.
Необходимо избегать переохлаждения и контакта с провоцирующей насморк средой.
Если у вас нет повышенной температуры, то не будет лишним попарить вечером ноги в горячей воде с морской солью, горчицей или отварами трав, например, мяты или шалфея;
Людям, склонным к насморкам, стоит всерьез задуматься над усилением иммунитета и повышением общего тонуса – закаливание организма, физкультуры, прогулки на свежем воздухе, богатое витаминами питание и свежевыжатые соки помогут избежать нежелательного обострения.

Перикоронарит — Сеть МЦ «Доктор Боголюбов»

ВОСПАЛЕНИЕ ДЕСНЫ НАД ЗУБОМ

В процессе прорезывания любого зуба десна над ним может воспалиться. Данное состояние носит название «перикоронит». Развиться это заболевание может в области любого зуба, но наиболее часто встречающимся является воспаление слизистой в области зуба мудрости, или третьего моляра. Воспаление слизистой у детей в момент прорезывания зубов считается нормой и редко вызывает сильные болезненные ощущения и тем более гнойные воспаления.

Развитию воспалительного процесса способствует особое расположение зуба мудрости. В процессе прорезывания он некоторое время остается частично прикрытым слизистым лоскутком, или капюшоном. В результате чистки зубов данная область практически не очищается от зубного налета. В итоге под капюшоном начинают размножаться болезнетворные бактерии, что и приводит к воспалительному процессу.

Наиболее частые причины перикоронита

Очень редко зуб мудрости прорезывается легко и безболезненно. Иногда он расположен параллельно линии роста других зубов, что не позволяет ему занять нормальное положение.

Также возможно частичное прорезывание зуба. Иногда его зачаток находится в кости. В любом случае рост сопровождается воспалением слизистой полости рта в области причинного зуба.

Симптомы заболевания

Первым признаком заболевания является появление ноющей боли в области зуба мудрости. Как правило, в течение трех дней боль становится острой. Соответственно, пережёвывание пищи на пораженной стороне становится невозможным. В некоторых случаях боль иррадиирует в ухо, шею, горло, при этом она усиливается при глотании и при попытке открыть рот.

При осмотре полости рта слизистая над зубом отечная, гиперемированная и болезненная при пальпации. При запущенном процессе из-под слизистого капюшона выделяется гнойное содержимое с неприятным запахом. Может отмечаться общее недомогание и повышение температуры тела.

Если не снять воспаление, процесс переходит в хроническую форму, характеризующуюся сменой периодов обострений и ремиссий.

Виды перикоронита

По своему течению перикоронит может быть язвенным или гнойным. При первом во время осмотра определяется наличие некротического процесса по краям слизистой капюшона над зубом. Гнойный перикоронит чаще носит хронический характер и проявляется постоянным выделением гнойного содержимого из-под капюшона, а также слабыми ноющими болями в области воспалительного очага.

Диагностика заболевания

Диагноз перикоронита должен выставляться после тщательного осмотра и опроса пациента. При этом очень важное значение имеет результат рентгеновского обследования. На основании снимка определяется положение зуба, состояние окружающих тканей, а также расположение гайморовых пазух, ветвей нервных окончаний и канала нижней челюсти.

Лечение заболевания

В процессе прорезывания зуба следует очень внимательно отнестись к гигиене полости рта, уделив особое внимание десневому карману. Также рекомендуется после каждого приема пищи полоскать рот антисептическими растворами. Помимо этого, можно промыть пространство под капюшоном с помощью обычного шприца и антисептика. В любом случае при первых симптомах заболевания следует обратиться к стоматологу.

Лечение перикоронита зависит от состояния и положения зуба. Если он находится в зубном ряду, то лечение ограничивается иссечением капюшона. При этом назначаются курс антибиотикотерапии и обезболивающие препараты (при необходимости).

В тех случаях, когда зуб растёт вне зубной дуги, причиняет дискомфорт и является причиной головных болей или искажения вкусовых ощущений, он подлежит удалению. После этого также проводится лечение антибиотиками.


Лечение носа в Омске, цены на услуги в стоматологиях Спартамед

Аденоидэктомия с использованием видеоэндоскопических технологий 16400 р

Аденоидэктомия с использованием видеоэндоскопических технологий (электрод)* 28600 р

Биопсия слизистой гортаноглотки 2145 р

Биопсия слизистой оболочки гортани 2145 р

Биопсия слизистой оболочки полости носа 2145 р

Внутриносовые блокады 975 р

Внутриушной электрофорез лекарственных препаратов при заболеваниях органа слуха 700 р

Воздействие низкоинтенсивным лазерным излучением при заболеваниях верхних дыхательных путей (лазеротерапия носа и носоглотки) 890 р

Вскрытие гематомы верхних дыхательных путей 5840 р

Вскрытие паратонзиллярного абсцесса 7775 р

Вскрытие фурункула носа 5840 р

Иссечение синехий и атрезий носа 5840 р

Лазерная коагуляция миндалин глотки 17490 р

Массаж барабанных перепонок 390 р

Микрогайморотомия с использованием видеоэндоскопических технологий 34975 р

Наложение повязки при операциях в полости рта (разовый материал при операции) 4365 р

Определение антигена стрептококка группы A (S. pyogenes) в отделяемом верхних дыхательных путей (экспресс-диагностика) 610 р

Осмотр полости рта с помощью дополнительных инструментов (Разовый материал) 1385 р

Отоэндоскопия 3885 р

Парацентез 10690 р

Первичная хирургическая обработка раны наружного уха 1745 р

Первичная хирургическая обработка раны уха 1745 р

Пластика мягкого неба 16665 р

Пластика носовой перегородки с использованием видеоэндоскопических технологий 13605 р

Подслизистая вазотомия нижних носовых раковин 18465 р

Подслизистая вазотомия нижних носовых раковин (хирургический способ остановки носовых кровотечений) 9720 р

Полисинусотомия с использованием видеоэндоскопических технологий 33040 р

Получение отделяемого из наружного слухового прохода 3885 р

Прием (осмотр, консультация) врача-оториноларинголога первичный (Юргель Ю. Н.) 1900 р

Прием (осмотр, консультация) врача-оториноларинголога повторный (Юргель Ю.Н.) 1600 р

Продувание слуховой трубы 585 р

Промывание верхнечелюстной пазухи носа 2230 р

Промывание лакун миндалин 1555 р

Промывание околоносовых пазух и носа методом вакуумного перемещения 1950 р

Пункция околоносовых пазух 1745 р

Радикальная операция на верхнечелюстных пазухах 38870 р

Репозиция костей носа 5840 р

Тимпанометрия 1555 р

Тональная аудиометрия 1555 р

Тонзиллотомия 15545 р

Увулопластика 9720 р

Удаление новообразований глотки 7775 р

Удаление новообразований гортани методом радиоволновой деструкции 12050 р

Удаление новообразований полости носа 9720 р

Удаление полипов носовых ходов с использованием видеоэндоскопических технологий 29150 р

Удаление ушной серы 975 р

Электрофорез лекарственных препаратов эндоназальный 700 р

Современные и альтернативные методы лечения повреждений слизистой оболочки носа: обзор

Int J Mol Sci. 2020 янв; 21(2): 480.

Джегадевсвари Селвараджа

1 Центр тканевой инженерии, медицинский факультет, Университет Кебангсаан Малайзия, Черас, Куала-Лумпур 56000, Малайзия; [email protected]

aminuddin bin saim

2

2 Ухо, носовая и горла Consultant Clinic, Ampang Puteri Специалист по специальности, Ampang, Selangor 68000, Малайзия

Ruszymah BT HJ IDRUS

3 Департамент физиологии, факультета медицины, Universiti Kebangsaan Malaysia, Черас, Куала-Лумпур 56000, Малайзия; мок[email protected]

Yogeswaran Lokanathan

1 Центр тканевой инженерии, медицинский факультет, Universiti Kebangsaan Malaysia, Черас, Куала-Лумпур 56000, Малайзия; [email protected]

2 Клиника уха, горла и носа, Специализированная больница Ампанг Путери, Ампанг, Селангор 68000, Малайзия

3 Кафедра физиологии, Медицинский факультет, Университет Кебангсаан Малайзия, Черас, Куала-Лумпур , Малайзия; мок. [email protected]

Поступила в редакцию 1 ноября 2019 г.; Принято 18 декабря 2019 г.

Лицензиат MDPI, Базель, Швейцария. Эта статья находится в открытом доступе и распространяется на условиях лицензии Creative Commons Attribution (CC BY) (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/).Эта статья цитировалась в других статьях в PMC. .

Abstract

Повреждение слизистой оболочки носа может быть вызвано травмой, лучевой терапией, хронической инфекцией, такой как синусит, и постсинусной хирургией. Скорость заживления и его лечение важны для выздоровления пациентов, особенно после операции на пазухах, которая приводит к новым травмам.В этом обзоре изначально обсуждались современные знания о механизме, лежащем в основе заживления носовых ран. Обсуждались доступные в настоящее время варианты лечения для улучшения заживления ран после операции на пазухах, и они включали внутривенное введение антибиотиков или стероидов, различные назальные спреи и назальные тампоны. Кроме того, также обсуждались новые альтернативные методы лечения ран слизистой оболочки носа, такие как фитотерапия, и развитие методов регенеративной медицины, таких как стволовые клетки и их побочные продукты. Несмотря на различные доступные варианты лечения ран на слизистой оболочке носа, строгие убедительные доказательства их эффективности настоятельно необходимы для того, чтобы рекомендовать их как часть метода лечения.

Ключевые слова: слизистая оболочка носа, заживление ран, регенеративная медицина, травмы носа 1].Риносинусит является распространенным заболеванием носовой полости, которым страдает примерно 5–15% населения в целом [2]. Такие методы лечения, как антибиотики, носовой душ, стероиды и назальные спреи, обычно назначают пациентам для устранения инфекции, уменьшения воспаления и возвращения пораженной слизистой оболочки к нормальному, функциональному респираторному эпителию. Другим распространенным методом лечения является хирургическое вмешательство, известное как эндоскопическая хирургия околоносовых пазух (ЭСС), которое назначается после неэффективности консервативного лечения после заболеваний носа, таких как хронический риносинусит и полипоз носа [3]. [4]. Это может быть связано с несколькими факторами, такими как метаплазия слизистой оболочки из-за хронического воспаления или вторичное повреждение оставшихся здоровых тканей во время процедуры, что может поставить под угрозу регенерацию слизистой оболочки носа [5].

Значение ЭСС в практике оториноларингологии обусловило интерес к пониманию заживления послеоперационных ран слизистой оболочки носа.К сожалению, на сегодняшний день большая часть наших знаний доступна с точки зрения заживления ран, что касается восстановления поврежденной кожи или роговицы [6]. В отношении слизистой оболочки носа мало известно о физиологических основах заживления ран этой ткани [7]. Вейтлет и др. собрал и обсудил научную литературу о заживлении ран слизистой оболочки носа с десяти лет назад [8]. В этом обзоре были представлены последние обновления накопленных знаний с точки зрения физиологии слизистой оболочки носа и заживления ран после операций на носу.

2. Заживление ран слизистой оболочки носа

Эпителий носа состоит из непрерывного слоя псевдомногослойных столбчатых эпителиальных клеток, которые отделены от собственной пластинки сплошной базальной мембраной. В эпителии можно обнаружить четыре отличительных типа клеток: базальные, бокаловидные, реснитчатые и нереснитчатые столбчатые клетки. В интактной слизистой оболочке функции эпителиальных клеток носа включают выработку и транспорт слизи, резорбцию поверхностной жидкости, гомеостаз и иммунные реакции совместно с нижележащей лимфатической и сосудистой тканью [7].Повреждение слизистой оболочки носа может быть следствием постлучевой или послеоперационной травмы, а также инфекции при хроническом риносинусите.

Нормальное заживление ран слизистой оболочки носа после ЭШС состоит из четырех клинических различных стадий процесса заживления: стадии немедленной очистки операционной полости, перехода слизистой оболочки, полной эпителизации и ремоделирования тканей [9]. Физиологически эти четыре фазы коррелируют с фазами гемостаза, воспаления, пролиферации и ремоделирования тканей при заживлении ран, которые наблюдались в моделях повреждения носа in vivo на кроликах [10] и крысах [11].

Повреждение слизистой оболочки носа вызывает кровотечение. Следовательно, первой задачей заживления раны является герметизация утечки путем образования фибриновой пробки посредством активации каскада коагуляции [6]. Сразу после операции можно наблюдать кровяные корки, преобладающие в полости носа в течение первых двух недель. По истечении двух недель после операции операционная полость очищается, что является подготовкой к следующему этапу [12]. Подобное образование корок также можно наблюдать по общей морфологии носовой раны на модели кролика [10] и крысы [11].

За фазой гемостаза следует фаза воспаления. Основная цель этой фазы — очистить рану от инфекции [6]. У человека в операционных полостях происходит переход слизистой оболочки в ответ на удаление слизистой оболочки в течение 3–10 недель после операции. Переходы, которые можно наблюдать, включают отек слизистой оболочки, везикулы, грануляционную ткань, мини-полипы, фиброзную гиперплазию и адгезию. В конечном итоге они будут очищены, чтобы уступить место процессу эпителизации слизистой оболочки [12]. In vivo отек подэпителия и инфильтрация лейкоцитами наблюдались через двое суток после ранения у крыс [11] и через три недели после ранения у кроликов [10].

После очистки от патогенных материалов и мертвых иммунных клеток наступает фаза пролиферации [6]. За клиренсом перехода слизистой оболочки следует эпителизация слизистой оболочки, которая происходит в течение 11–14 недель после операции у человека [12]. Увеличение субэпителиального фиброза и толщины эпителия отмечали на 14-й день после ранения у крыс [11], тогда как толщина эпителия у кроликов достигала своего пика к 4-й неделе после ранения [10].

Последней фазой заживления ран является ремоделирование тканей. В слизистой оболочке носа эта фаза включает дифференцировку назального эпителия в специализированные клетки, бокаловидные клетки и реснитчатые клетки. У человека изменения в субэпителиальной слизистой оболочке могут отмечаться до шести месяцев после операции [12]. В крысиной модели дифференцировка эпителия в бокаловидные клетки и реснитчатые клетки началась на 14-й день и полностью восстановилась почти до нормы на 28-й день [11]. В модели кролика количество реснитчатых клеток достигало своего пика через пять недель после ранения [10].

3. Послеоперационные осложнения эндоскопической хирургии придаточных пазух носа

ESS — это метод, использующий эндоскопическое зрение, позволяющий хирургу достичь придаточных пазух носа с минимальным повреждением окружающих тканей [3]. Это одна из наиболее распространенных процедур, выполняемых в оториноларингологии, и ее успешность зависит от результата заживления послеоперационной раны [3].

После введения хирургической травмы ожидается кровотечение в связи с тем, что полость носа богата кровоснабжением, поступающим из наружной и внутренней сонных артерий в этой области [13].Послеоперационное кровотечение чаще всего происходит в течение первых 24 часов после процедуры, но может откладываться на несколько дней или даже недель. В случае образования гематомы в пределах слизистой оболочки носа ее удаление необходимо для предотвращения ишемии и фиброза, ведущих к развитию рубцевания [4].

Другим частым осложнением после ЭСС является слипание тканей, также известное как носовые синехии. Носовые синехии образуются, когда две влажные противоположные поверхности внутри носа заживают вместе, образуя слившуюся фиброзную ткань, которая может блокировать нормальный поток воздуха через нос [14].Считается, что из-за своей роли в отложении и ремоделировании внеклеточного матрикса (ECM) назальные фибробласты ответственны за назальные синехии.

Существует также подгруппа пациентов с рецидивирующим хроническим риносинуситом, у которых наблюдается утолщение костей, известное как остит. Остеит – это утолщение кости из-за воспаления. Заболевание слизистой оболочки может повлиять на жизнеспособность кости под ней. Со временем эта плохая жизнеспособность может перерасти в костное воспаление, которое в конечном итоге приводит к утолщению кости.Мало что известно о послеоперационном остите и стратегии лечения этого состояния [15].

Таким образом, основными задачами послеоперационного ведения заживления раны носа являются остановка послеоперационного кровотечения, предотвращение спаек и ускорение процесса заживления [4].

4. Послеоперационное лечение заживления раны носа

Для облегчения заживления ран слизистой оболочки носа после инвазивной хирургии околоносовых пазух применялось множество местных вмешательств и повязок. Используемые вмешательства включают внутривенное введение антибиотиков или стероидов, спринцевание носа и тампонирование носа для предотвращения инфекции и ослабления длительного воспаления, что в совокупности улучшает процесс заживления слизистой оболочки носа.

4.1. Системное лекарство

Послеоперационное лечение системными препаратами включает пероральное или внутривенное введение стероидов и антибиотиков, которые используются для уменьшения воспаления и инфекции, которые останавливают прогрессирование заживления раны после операции на пазухах [16].

Среди кортикостероидов, которые использовались после операции, были пероральный бетаметазон [17] и пероральный преднизолон [18]. Использование системных стероидов при ФЭСС в периоперационном периоде спорно; однако недавние систематические обзоры и метаанализ показали, что введение системных стероидов, особенно после операции, может быть связано с улучшением эндоскопических показателей и снижением риска рецидива у пациентов с хроническим риносинуситом с полипозом носа [16]. Джоррисен и Бахерт исследовали пероральный прием бетаметазона (2 мг в течение семи дней) с последующим применением топических спреев мометазона фуроата (200 мкг два раза в день в течение шести месяцев) в связи со снижением риска синусита (ОР 0,76, 95% ДИ 0,31, 1,90) и улучшением послеоперационного периода. эндоскопическая оценка. С другой стороны, наблюдалось, что послеоперационное введение преднизолона (перорально, 30 мг в течение девяти дней) приводит к более здоровым пазухам [18].

Несмотря на то, что большинству пациентов системные стероиды помогли предотвратить рецидив раны, у значительной части пациентов все еще наблюдались рецидивы раны даже в ближайшем послеоперационном периоде [16].Кроме того, длительное использование системных стероидов может привести к множеству побочных эффектов [19].

Было мало доказательств в поддержку использования антибиотиков у пациентов после FESS [20]. Было показано, что трехнедельный курс амоксициллина и клавуланата калия (375 мг, три раза в день в течение трех недель) не имеет существенных различий с точки зрения симптомов и эндоскопической оценки по сравнению с контролем [21]. Аналогичный результат был также продемонстрирован в рандомизированном двойном слепом контролируемом исследовании перорального амоксициллина (250 мг, т.д. с в течение четырех недель) [22]. Между тем, краткое последующее исследование показало, что двухнедельный курс амоксициллина и клавуланата (625 мг два раза в день) улучшал заложенность носа и дренаж только на пятый день в отношении других симптомов и улучшал эндоскопические показатели на пятый и 12-й дни. 23]. В связи с появлением резистентности бактерий к макролидам риски перевешивают преимущества, и следует побудить к сокращению использования антибиотиков.

4.2. Назальный спрей

Назальный спрей — это метод доставки лекарств, в основном стероидов, в интраназальное пространство с помощью аэрозольного баллончика.Основная цель послеоперационного лечения с помощью назального спрея — модулировать воспалительную фазу заживления назальной раны [24,25]. Он считается стандартным методом лечения рецидивирующего синусита после хирургического вмешательства [17]. Беклометазона дипропионат, первый аэрозольный кортикостероид для местного применения, используется в клинической практике с 70-х годов. В литературе описано множество других аэрозольных стероидных препаратов, включая преднизолона ацетат, мометазона фуроат, триамцинолона ацетонид и флутиказона пропионат [24].Между тем, сообщалось, что различные типы интраназальных стероидных спреев имеют разную эффективность после FESS [26]. Это было продемонстрировано недавним клиническим испытанием (ClinicalTrials.gov: {«type»:»clinical-trial»,»attrs»:{«text»:»NCT02194062″,»term_id»:»NCT02194062″}}NCT02194062), что определить два типа интраназальных стероидных спреев (флутиказон и будесонид) для снижения частоты полипоза у пациентов с хроническим риносинуситом после FESS. Было замечено, что будесонид превосходит флутиказон (улучшение синоназального исходного теста (SNOT-22) и шкалы Лунда-Кеннеди) [26].

Местное введение антибиотиков и противогрибковых препаратов с помощью назального спрея когда-то считалось краеугольным камнем послеоперационного лечения после ЭСС. Это связано со старой парадигмой, которая постулировала, что воспаление, наблюдаемое в послеоперационной носовой полости, является результатом инфекции микроорганизмами в пазухах. В эпоху устойчивых к антибиотикам микроорганизмов оба метода лечения, как правило, потеряли популярность с точки зрения послеоперационного ведения после ЭСС [24].

По мере развития технологии назальный спрей используется для доставки биоактивных соединений, таких как компонент ECM или компонент каскада коагуляции.В модели заживления кожных ран in vitro было показано, что белок ECM гиалуронан усиливает реэпителизацию [27]. Было показано, что введение гиалуроната натрия через небулайзер в полость носа вызывает более быстрое восстановление после ЭСС, сохраняя при этом комфорт пациента на протяжении всего процесса [28].

Идея доставки компонента коагуляционного каскада в носовую полость сосредоточена вокруг разрешения фазы гемостаза, чтобы обеспечить прогрессирование заживления раны [29]. Проспективное исследование, сравнивающее введение аэрозольного фибрина и нерассасывающихся назальных тампонов, показало, что корки, спайки, кровотечения, образование грануляционной ткани, инфекция и стеноз устья лобной пазухи после эндоскопической хирургии, а также общий комфорт улучшаются после использования фибринового спрея. [30].

4.3. Назальная повязка

Одновременно с разработкой назального спрея в качестве назальной повязки начали использовать биоматериалы. Основной целью тампонирования носа является ускорение заживления послеоперационной раны за счет ускорения процесса заживления, предотвращения спаек и остановки послеоперационного кровотечения. Мэсси и Сингх опубликовали подробный обзор биоматериалов, используемых для тампонирования носа [31]. Назальная тампона выполнена в виде пены или губки, которая может действовать как тампон, который вводится в полость носа для создания давления для остановки кровотечения.Тампоны для носа могут быть рассасывающимися и нерассасывающимися.

Нерассасывающаяся тампона использовалась в хирургии околоносовых пазух в течение десятилетий до появления ее рассасывающегося варианта [31]. Носовая тампона может быть источником боли и дискомфорта для пациентов из-за процесса удаления носовой тампоны. Во многих случаях его удаление описывалось некоторыми пациентами как наиболее болезненная часть всей процедуры [32]. Таким образом, в последующие десятилетия следует разработка рассасывающихся назальных тампонов.

Что касается рассасывающихся назальных тампонов, то известно, что для их изготовления используется несколько материалов. В целом их можно разделить на три категории: белок ЕСМ, коагулянт и биополимер. К таким материалам относятся желатин, гиалуронан, фибрин, хитозан, целлюлоза, картофельный крахмал, карбоксиметилцеллюлоза, полиуретан и полиэтиленгликоль [31]. Они были изготовлены в различных формах, включая пены, гели, сетки, пленки и порошки. Хотя биорассасывающаяся назальная тампона обеспечивает лучший результат с точки зрения предотвращения синехий и остановки носового кровотечения, ее влияние на ускорение заживления раны от умеренного до незначительного.

Самая ранняя форма рассасывающихся назальных тампонов представлена ​​в виде желатиновой пленки [33] или пены [34]. По сравнению с необработанным носом не было замечено существенных различий в отношении результатов спаек, грануляционной ткани или отека [33,34].

Гиалуронан является одним из основных компонентов внеклеточного матрикса, который, как известно, усиливает реэпителизацию in vitro [27]. Гиалуронан в форме геля, MeroGel, был тщательно изучен, и, насколько нам известно, в общей сложности было проведено четыре РКИ.В одном исследовании по сравнению с нерассасывающейся назальной тампой MeroGel показал лучшие результаты в отношении предотвращения спаек через 4 и 12 недель после операции [35]. Тем не менее, в трех других более ранних исследованиях не удалось обнаружить существенных различий с точки зрения результатов заживления ран, таких как послеоперационный отек и рубцевание, между группой лечения (MeroGel) и контрольной группой [36,37,38]. Кроме того, сообщалось, что испытания с перекрестно-сшитым гиалуроновым водонерастворимым гелем [39] и гидрогелем [40] показали лучшие результаты.В совокупности продукты на основе гиалуроновой кислоты, по-видимому, приносят скромную пользу в отношении заживления ран слизистой оболочки носа.

Что касается других биоматериалов, то два материала, фибрин [41] и хитозан [42,43], продемонстрировали превосходные ранозаживляющие и кровоостанавливающие свойства по сравнению с нерассасывающейся назальной тампоном, в то время как целлюлоза [44], картофельный крахмал [45] , карбоксиметилцеллюлоза [46], полиуретан [47] и полиэтиленгликоль [48] остаются аналогичными необработанному контролю или нерассасывающейся упаковке [31]. обобщает действие рассасывающихся назальных тампонов, изготовленных из различных биоматериалов. В целом использование назального тампона эквивалентно контролю.

Таблица 1

Влияние рассасывающихся назальных тампонов на параметры заживления носовых ран.

9012 9

2 9190 45 Картофельный крахмал

Абсорбируемый назальный пакет
Эндоскопические Hranulation Edema
[33] Gelatin Film не распаковывается NA = = Н. А.
[34] Желатин пены Распакованный Н.А. = = =
[35] Гиалуроновая кислота гель поливинилацетат (PVA) Na + Na Na Na [36] [36] [36] [36] PVA Na = Na =
[38] Гель гиалуроновой кислоты ПВА = НП НП НП
[37] Гиалуроновая гель Распакованный Н. А. = Н. А. =
[39] Гиалуроновая гель Распакованный + + Н.А. Н.А.
[40 ] Гиалуроновая гель Распакованный Н. А. + Н.А. Н.А.
[41] фибринового клея ПВА Н.А. Н.А. Н.А. +
[42] Хитозан гель Распакованный = Н. А. Н.А. +
[43] Хитозан гель Распакованный = Н.А. Н.А. +
[44] Целлюлозный порошок ПВА + + NA +
Желатин-тромбин матрица Н. А. Н.А. Н.А. =
[46] карбоксиметилцеллюлозы Картофельный крахмал = = = =
[47] Пенополиуретан Распакованный + Н. А. Н.А. +
[48] Полиэтиленгликоль Гиалуроновая гель Н.А. = Н. А. =

По мере развития области послеоперационное ведение заживления носовых ран перешло к парадигме функциональной назальной тампоны.В этой парадигме биоматериалы, которые были изготовлены в виде рассасывающихся тампонов для носа, использовались в качестве средства доставки известных лекарств для заживления ран, таких как стероиды и антибиотики.

Гель Silsos ® представляет собой зарегистрированную назальную повязку, изготовленную из октасульфата сахарозы серебра в сочетании с октасульфатом сахарозы калия, гиалуронатом натрия, пропиленгликолем, карбомером и водой [49]. Серебро является хорошо известным противомикробным средством, которое обычно используется для лечения кожных ран.В рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании сообщалось, что пациенты, получавшие гель Silsos ® , показали лучшие результаты по шкале Sino-Nasal Outcome Test 22 (SNOT22) по сравнению с группой плацебо. Эндоскопически также наблюдалась лучшая интеграция в слизистую оболочку в группе с гелем Silsos ® . Плацебо содержит гель (карбопол и пропиленгликоль) без серебра. Исследование успешно показало эффективность серебра в заживлении ран слизистой оболочки носа [49].

SinuBandFP представляет собой двухслойную тонкую пленку размером 2 см × 2 см, состоящую из фибриногена и обогащенную в общей сложности 160 мкг флутиказона пропионата. После применения SinuBandFP в полости носа со временем высвобождается кортикостероид флутиказона пропионат. В рандомизированном контролируемом исследовании по изучению его безопасности и эффективности группа SinuBandFP продемонстрировала местную безопасность, безопасность для глаз и отсутствие значительных изменений уровня кортизола в моче через 24 часа по сравнению с SinuBand без кортикостероидов.С точки зрения эффективности, группа SinuBandFP показала лучшие результаты с точки зрения количества полипов, возникновения спаек и общей боли [50].

Nasopore ® представляет собой биорассасывающуюся назальную повязку, изготовленную из фрагментируемого поли(DL-лактид-ко-Е-капролактона) уретана. В рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании Grzeskowiak и коллеги сравнили эффективность упаковки Nasopore ® , пропитанной либо стероидом (бетаметазоном), либо антибиотиком (ципрофлоксацином) [51]; Nasopore ® , пропитанный физиологическим раствором, использовали в качестве плацебо. Исследование показало значительное улучшение процесса послеоперационного заживления и удовлетворенности пациентов при использовании биорассасывающихся тампонов, выделяющих стероиды и антибиотики, по сравнению с тампонами, пропитанными физиологическим раствором. обобщает влияние функциональной назальной тампоны на различные исходы заживления носовых ран. Назальная упаковка предлагает систему доставки лекарств, которую можно адаптировать в соответствии с потребностями пациента.

Таблица 2

Функциональная назальная упаковка для доставки лекарств.

[49]
Функциональный пакет Nasal
Nasal Pack препараты результаты
Silsos Gel Silver улучшает Snot22 Оценка и слизистые заживления
[50] SinuBandFP флутиказона пропионат улучшает полип счета, адгезия, боль
[51] Nasopore бетаметазона улучшает заживление и удовлетворение
ципрофлоксацина улучшает заживление и удовлетворение

5.

Дополнительное и альтернативное лечение травм носа

Лечение травм носа было описано во многих культурных и религиозных записях в прошлом. Из-за тесной связи между слизистой оболочкой носа и внешней средой через вдыхаемый воздух фитотерапия играет большую роль в лечении многих случаев повреждения носа в разных культурах [52].

5.1. Ирригация носа

Древняя индуистская практика Аюрведы содержит самые ранние сведения о промывании носа [53].В аюрведических писаниях перечисляется ряд практик личной гигиены, называемых суча. Среди суча насчитывается 90 489 джала нети 90 490, также известных как практика промывания носа [54]. Согласно священному писанию, более высокого состояния медитации можно достичь, очистив нос, поскольку ясное дыхание может привести к ясному мышлению. Простейший метод очистки носа заключался в том, чтобы понюхать воду из сложенных чашечкой рук и выдуть ее, что также является шагом в мусульманской практике омовения [53]. В современной науке данные РКИ продемонстрировали важность промывания носа для ускорения заживления ран слизистой оболочки носа [55].

Точные механизмы до сих пор неизвестны, но большинство экспертов считают, что это связано с прямым очищением слизистой оболочки носа, независимо от состава используемого раствора [54]. Это приводит к тому, что слизистая оболочка становится мягкой и смещается. Кроме того, антиген и медиаторы воспаления, такие как лейкотриены и простагландины, вызывают аллергические реакции и могут быть удалены путем промывания носа. Состав солевых растворов может повлиять на эффективность промывания носа, где использование более низкой концентрации соли и изотонических растворов немедленно значительно снизит микробные антигены.С другой стороны, показано, что используемые гипертонические растворы могут минимально влиять на концентрацию микробных антигенов.

Промывание носа с добавлением ионов, таких как натрий и хлорид, может способствовать целостности и функционированию эпителиальных клеток. Кроме того, добавление магния снижает метаболизм эйкозаноидов путем прямого ингибирования фермента 5-липоксигеназы, способствуя восстановлению клеток и ограничивая воспаление [55]. Магний также ингибирует экзоцитоз пермеабилизированных эозинофилов и снижает апоптоз респираторных клеток в сочетании с цинком [55].

5.2. Китайская медицина

В китайской медицине травяные составы создаются для уравновешивания «Инь-Ян», что основано на теории традиционной китайской медицины (ТКМ). Возникновение болезней считается результатом дисбаланса в теории. В азиатских странах, таких как Китай, назальные стероиды и пероральные антибиотики используются вместе с травами в качестве адъювантного лечения после ЭСС. Было проведено исследование для изучения безопасности и эффективности отвара Чжу-Юань (ZYD) в послеоперационном уходе за пациентами с FESS.Согласно теории традиционной китайской медицины, ZYD используется для лечения симптомов китайской медицины (мокрота и жар, препятствующие носовым пазухам). Исследование показало, что введение ZYD дало значительные результаты, которые имеют такую ​​​​же безопасность и эффективность, что и интраназальное введение кортизона. Однако исследование было краткосрочным (длилось 12 недель) и требовало изучения долгосрочных эффектов и дальнейшего изучения для выяснения основных механизмов ZYD [56].

5.3. Пчелиный прополис

Прополис — это материал, который пчелы используют для строительства своих ульев.Было показано, что он синтезирован пчелами из растительной смолы и обладает противовоспалительной активностью [57]. Исследование с крысиными моделями и повреждением носа выявило уменьшение воспаления и ускорение заживления ран слизистой оболочки носа [58]. В исследовании также было показано, что прополис уменьшает тяжесть воспаления и сохраняет как бокаловидные клетки, так и цилиарные клетки в слизистой оболочке носа [58]. Точные механизмы заживления ран слизистой оболочки носа прополисом требуют дальнейшего изучения, но было высказано предположение, что его заживляющие свойства связаны с его иммуностимулирующим эффектом, при котором способность к секреции цитокинов значительно увеличивается в течение периода лечения в зависимости от времени. Кроме того, прополис может стимулировать значительное увеличение компонентов ВКМ на начальном этапе заживления раны. Другое исследование, в котором изучается фениловый эфир кофейной кислоты, биоактивное соединение прополиса, также выявило ускорение заживления ран на слизистой оболочке носа [59].

5.4. Куркумин

Среди специй в значительной степени сообщалось о лечебных свойствах куркумы [60]. В кожных ранах куркумин продемонстрировал противовоспалительные и ранозаживляющие свойства [61].Используя модель повреждения носа у крыс, также сообщалось, что куркумин уменьшает воспаление и ускоряет заживление ран на слизистой оболочке носа [62]. Это связано со снижением воспалительной реакции слизистой оболочки носа за счет ингибирования продукции цитокинов для активации макрофагов и моноцитов [62]. С другой стороны, куркумин усиливает организацию грануляционной ткани, которая содержит большее количество мелких капилляров и миофибробластов в модели диабетической крысы [62].

6.

Тканевая инженерия и регенеративная медицина

Тканевая инженерия — это направление регенеративной медицины, в котором применяется междисциплинарный подход к восстановлению и регенерации тканей за счет комбинации трех элементов: стволовых клеток, биомиметических каркасов и биоактивных молекул. В контексте регенерации слизистой оболочки носа тканевая инженерия является многообещающей для достижения целей регенерации.

6.1. Клеточная и тканевая терапия

Стволовые клетки вызывают интерес в регенеративной медицине с начала 20-го века.Что касается заживления ран, то были сообщения о его эффективности при заживлении ран на коже [63] и эпителии роговицы [64]. Используя модель кролика с травмой носа, Kavuzlu et al. имплантировали лист мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани, в слизистую оболочку носа для ускорения ее заживления [65]. Имплантат привел к улучшению морфологии, количества и плотности реснитчатых эпителиальных клеток носа. Предполагается, что механизмы процесса заживления связаны с усилением реэпителизации и стимуляцией раневого ангиогенеза за счет секреции факторов роста, цитокинов и коллагеновой ткани, а также за счет антиоксидантного действия за счет нейтрализации активных форм кислорода [65].

В другом исследовании была предпринята попытка использовать метод доставки аэрозоля для доставки регенеративных клеток на поврежденную ткань, например, в работах Кардиа и его коллег [66]. Они успешно продемонстрировали улучшение регенерации и восстановления в дыхательных путях кролика при доставке аэрозольных аллогенных эпителиальных клеток дыхательных путей [66]. Процесс регенерации и восстановления включает быструю реэпителизацию оголенной области, где происходят дедифференцировка, миграция, пролиферация и редифференцировка клеток для репопуляции эпителия трахеи.Кроме того, было высказано предположение, что процесс репарации опосредуется секрецией таких соединений, как факторы роста, цитокины и хемокины, которые вызывают репарацию эпителия трахеи [67].

Во многих хирургических вмешательствах трансплантат аутологичной ткани считается золотым стандартом. Это можно наблюдать при ожоговых ранах [68], повреждении связок [69] и остеоартрозе [70]. Было показано, что использование аутологичных трансплантатов слизистой оболочки носа у кроликов улучшает реэпителизацию. Используя световую и сканирующую электронную микроскопию, Topdag et al.продемонстрировали, что цилиарный эпителий покрывает большую площадь, имеет более зрелые и сложные реснички и менее гипертрофированный эпителий в пересаженной ткани по сравнению с не пересаженной тканью [6].

6.2. Тканевые каркасы

Тканевые каркасы служат в качестве шаблона, который обеспечивает поддержку клеток в сконструированной ткани. Каркасы изготавливаются таким образом, чтобы они напоминали нативную ткань либо за счет структурных сетей и геометрии, либо за счет биохимического состава.

Биоматериал, используемый для изготовления каркаса, может быть природного или синтетического происхождения.Одним из видов естественных тканевых каркасов является децеллюляризированный матрикс нативной ткани. Было показано, что децеллюляризованный внеклеточный матрикс трахеи положительно влияет на миграцию, дифференцировку и функцию респираторного эпителия в мышиной модели ортотопической трансплантации трахеи [71].

Коллаген и гиалуронан являются двумя широко используемыми природными биоматериалами для цилиарной дифференцировки респираторных эпителиальных клеток человека [72]. Было показано, что в комбинации двухслойные каркасы из коллагена и гиалуроновой кислоты облегчают дифференцировку эпителиальных клеток легких и экспрессию муцина [73].

Тканеинженерные каркасы также могут быть синтетического происхождения. Изготовление двухслойной трахеи с использованием аутологичных клеток носового респираторного эпителия и фибробластов, посеянных на титановом каркасе, успешно индуцировало реэпителизацию в трахее овцы [74]. Вдобавок ко всему, многообещающие результаты показали работы по гибридной комбинации природного и синтетического биоматериала для инженерии тканей органов дыхания [75]. Рабиатул и др. использовали метод функционализации поверхности для электропрядения полиметилметакрилата (ПММА) синтетического происхождения с коллагеном типа 1, природным полимером.Результат показал, что гибридные каркасы способны поддерживать прикрепление респираторных эпителиальных клеток и способствовать пролиферации [75].

6.3. Клеточные секреторные белки, факторы роста и кондиционированная среда

В качестве альтернативы гипотезе о дифференцировке стволовых клеток было также высказано предположение, что влияние стволовых клеток на заживление ран связано с секрецией цитокинов и гормонов роста, которые активируют резидентные клетки в ткани. регенерировать. В лаборатории факторы, секретируемые клетками, можно обнаружить в среде, в которой культивируются стволовые клетки.Следовательно, после сбора эта среда называется кондиционированной средой.

В результате целебные свойства кондиционированной среды стволовых клеток также стали предметом интереса регенеративной медицины. Доказано, что доставка эпителия дыхательных путей в дыхательные пути улучшает его регенерацию [76]. Также было показано, что секретируемые факторы, происходящие из эпителия дыхательных путей, ускоряют раннее восстановление эпителия трахеи [77]. Раннее восстановление могло включать уменьшение воспаления, опосредованное секрецией факторов эпителием дыхательных путей, таких как ИЛ-10, который снижает уровни провоспалительных цитокинов (ИЛ-1β и ИЛ-6) в дополнение к секреции других факторов. такие как фактор роста эндотелия сосудов α и белки муцина [77].

Фибробласты – клетки соединительной ткани, играющие вспомогательную роль в ткани, в которой они находятся, одна из таких – синтез внеклеточного матрикса [76]. Также было доказано, что среда, кондиционированная фибробластами носа, усиливает пролиферацию и миграцию клеток респираторного эпителия за счет использования избыточных тканей после операций по удалению турбины [77].

Мезенхимальные стволовые клетки и их секреторные факторы также представляют интерес в контексте регенерации тканей.Было показано, что кондиционированная среда из мезенхимальных стволовых клеток, полученных из пуповины, улучшает заживление носового эпителия как in vivo, так и in vitro [78]. В исследовании с использованием секреции мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани, улучшенная регенерация ткани дыхательных путей была связана со стимуляцией перехода эпителия в мезенхиму [79].

В поддержку концепции клинического применения секретома мезенхимальных стволовых клеток (МСК) костного мозга человека в регенерации для лечения идиопатического легочного фиброза и других фиброзных заболеваний легких Akram et al. протестировали среду, кондиционированную МСК (MSC-CM), с клетками линии A549 альвеолярных эпителиальных клеток II типа человека (AEC) и первичными эпителиальными клетками малых дыхательных путей человека (SAEC) с использованием модели заживления царапин in vitro. Они обнаружили, что MSC-CM в их исследовании содержали фибронектин, люмикан, периостин и IGFBP-7. Они также продемонстрировали, что MSC-CM способствует заживлению ран AEC и SAEC за счет стимуляции миграции клеток [80].

Технология рекомбинантных белков позволила ученым синтезировать индивидуальные факторы роста.В результате стало возможным изучение влияния отдельных факторов роста на многие болезни человека. Фактор роста гепатоцитов (HGF), первоначально открытый как митоген для гепатоцитов, в основном продуцируется мезенхимальными клетками [81]. Также известно, что он стимулирует эпителиальную пролиферацию, подвижность, морфогенез и ангиогенез в различных органах посредством фосфорилирования тирозина его рецептора c-Met. Было показано, что в слизистой оболочке носа HGF ускоряет заживление ран за счет ускорения реэпителизации и усиления цилиогенеза [82].

Сообщалось также, что фактор роста нервов (NGF) усиливает заживление эпителия после операции [83]. Интерфейс воздух-жидкость с использованием назального эпителия использовали для проверки влияния NGF на скорость закрытия ран и экспрессию клеточной адгезии, образование плотных контактов, пролиферацию клеток и белок, связанный с цилиогенезом. Исследование успешно продемонстрировало ускорение закрытия эпителиальных ран с помощью NGF [84].

Инсулиноподобный фактор роста (IGF-I) представляет собой гормон, молекулярная структура которого аналогична инсулину.В основном секретируемый печенью ИФР-1 важен как для регуляции нормальной физиологии, так и для некоторых патологических состояний [85]. In vitro IGF-I продемонстрировал ускоренное заживление ран в эпителиальных клеточных линиях человека, полученных из назальной, бронхиальной и трахеальной областей [86]. Когда ИФР-I был включен в назальные тампоны на основе гиалуроновой кислоты, он продемонстрировал избирательное улучшение скорости заживления слизистой оболочки носа здоровых овец, но не овец с воспаленными тканями [87].

7. Плазмотерапия

Исследователи расширили свой интерес к изучению эффекта плазмы в медицине, так как в некоторых литературных источниках предполагалось ее благотворное воздействие, включая противовоспалительное, противораковое, противомикробное и даже регенерацию тканей. Плазма считается четвертым состоянием вещества, которое состоит из частично ионизированного газа, содержащего электроны, радикалы, энергичные фотоны и ионы.

Что еще более важно, применение плазмотерапии было недавно задокументировано Won et al.(2018) [88], изучая раствор, обработанный нетермической плазмой (NTS), и его терапевтические эффекты для регенерации слизистой оболочки носа in vitro и in vivo. В общем, НТС готовили обработкой растворов нетепловой плазмой через плазменное устройство. NTS не проявлял цитотоксичности по отношению к эпителиальным клеткам бронхов человека BEAS-2B, одновременно усиливая клеточную пролиферацию, миграцию и переход от эпителия к мезенхиме во время процесса заживления раны.

Кроме того, исследование in vitro показало, что NTS также усиливает активность матриксной металлопротеиназы (MMP)-2/MMP-9, которая индуцирует миграцию клеток во время заживления ран.Чтобы предоставить больше доказательств его эффективности, они протестировали NTS на крысах, выполнив промывание слизистой оболочки носа солевым раствором, обработанным NTS, после введения раны в правую слизистую оболочку носовой перегородки. Индекс толщины эпителия (ETI) и субэпителиальный индекс (STI) использовали для получения соотношения средней высоты вновь образованной ткани в группе, получавшей лечение, по сравнению с высотой в контрольной группе. Гистопатологический анализ показал, что NTS значительно увеличил ETI, предполагая повышенную пролиферацию эпителия при значительном снижении STI, что привело к уменьшению отечных изменений ткани. Кроме того, в группе, получавшей NTS, наблюдалась меньшая инфильтрация воспалительными клетками по сравнению с контрольной группой. В совокупности в этом отчете задокументирована потенциальная эффективность плазмотерапии в улучшении заживления ран слизистой оболочки носа [88].

8. Выводы

За последние десятилетия многие вмешательства в посттравматическое лечение заживления слизистой оболочки носа были усовершенствованы. С развитием медицины можно добиться благоприятного исхода заживления ран слизистой оболочки носовых пазух.Помимо консервативного лечения, стволовые клетки и другие стратегии регенеративной медицины предлагают большой потенциал в регенерации эпителия дыхательных путей. Тем не менее, необходимо провести тщательные клинические испытания, чтобы сделать их основными методами лечения.

Благодарности

Это исследование было поддержано исследовательским грантом Universiti Kebangsaan Malaysia (GUP-2017-007).

Сокращения

8
ECM внеклеточного матрикса
ESS эндоскопической хирургии
SNOT22 Sino-Носовые Результат испытания 22
TCM Традиционная китайская медицина
ZYD Чжу-Юань отвар
ПММА полиметилметакрилат-метакрилата
MSC мезенхимальных стволовых клеток
АЕС эпителиальных клеток альвеол
MSC-СМ MSC кондиционированной среды
SAEC SAEC Маленькая дыхательная эпителиальная ячейка
HGF Гепатоцит фактор роста
NGF фактор роста нерва
IGF-1 IGF-фактор роста 1
NTS Нетермическая плазменная обработка, т. е. Обсуждение
MMP MAMP Matrix-MetallOroteinase
ETI Толщина эпителиала
STI Sub-Epitleial Index

Взносы автора

J.С. составил и написал рукопись. АБС критически рассмотрел и оформил рукопись. РБХИ рецензировал и оформлял рукопись. Ю.Л. получил исследовательский грант, разработал и рассмотрел рукопись. Все авторы прочитали и согласились с опубликованной версией рукописи.

Финансирование

Финансовая поддержка в этом исследовании была предоставлена ​​Universiti Kebangsaan Malaysia через исследовательский грант (GUP-2017-007).

Конфликт интересов

Авторы подтверждают отсутствие финансовых, личных или профессиональных интересов, которые могли бы повлиять на статью.

Список литературы

1. Camelo-Nunes I.C., Solé D. Аллергический ринит: Показатели качества жизни. Дж. Брас. пневмол. 2010; 36: 124–133. doi: 10.1590/S1806-37132010000100017. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]2. Бахерт К., Паванкар Р., Чжан Л., Буннаг К., Фоккенс В.Дж., Хамилос Д.Л. ЗНАЧОК: Хронический риносинусит. World Allergy Organ, J. 2014;7:1–28. дои: 10.1186/1939-4551-7-25. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]3. Фоккенс В.Дж., Лунд В.Дж., Муллол Дж., Бахерт К., Алобид И., Baroody F., Georgalas C. EPOS 2012: Европейская позиция по риносинуситу и назальным полипам 2012. Резюме для оториноларингологов. Ринология. 2012; 50:1–12. doi: 10.4193/Rhino50E2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]4. Ширас Дж.А. Комплексное исследование осложнений эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Междунар. J. Оториноларингол. Хирургия головы и шеи. 2017;3:472. doi: 10.18203/issn.2454-5929.ijohns20172008. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]5. Топдаг М., Кара А., Конюк Э., Демир Н., Озтюрк М., Джалыскан С., Исери М.Заживляющие эффекты аутологичных слизистых трансплантатов при экспериментально поврежденных верхнечелюстных пазухах кроликов. клин. Эксп. Оториноларингол. 2016;9:44–50. doi: 10.21053/генеральный директор.2016.9.1.44. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]6. Сингх С., Янг А., Макнот К.-Э. Физиология заживления ран. Хирургия (Оксфорд) 2017; 35: 473–477. doi: 10.1016/j.mpsur.2017.06.004. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 7. Ян Ю., Гордон В.М., Ван Д.Ю. Восстановление и ремоделирование эпителия носа при физических травмах, инфекциях и воспалительных заболеваниях.Курс. мнение Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2013;21:263–270. doi: 10.1097/MOO.0b013e32835f80a0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]8. Watelet J.-B., Bachert C., Gevaert P., Van Cauwenberge P. Заживление ран слизистой оболочки носа и околоносовых пазух: обзор. Являюсь. Дж. Ринол. 2002; 16:77–84. doi: 10.1177/194589240201600202. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]9. Pajic-Penavi I. Эндоскопические наблюдения за заживлением ран. В: Янку С., редактор. Достижения в эндоскопической хирургии. ИнТех; Лондон, Великобритания: 2011. стр. 425–431.[Google Академия] 10. Чой К.Ю., Чо С.В., Чой Дж.Дж., Чжан Ю.Л., Ким Д.В., Хан Д.Х., Вон Т.Б. Заживление слизистой оболочки носовой перегородки в экспериментальной модели кролика с повреждением слизистой оболочки. Мировой Дж. Оториноларингол. Шея Surg. 2017;3:17–23. doi: 10.1016/j.wjorl.2017.02.004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]11. Халмуратова Р., Ким Д.В., Чон С.-Ю. Влияние дексаметазона на заживление ран слизистой оболочки перегородки у крыс. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2011;25:e112–e116. doi: 10.2500/ajra.2011.25.3595. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 12. Сюй Г., Цзян Х., Ли Х., Ши Дж., Чен Х. Стадии переходного течения слизистой оболочки носа после функциональной эндоскопической хирургии околоносовых пазух и их клинические показания. J. Оториноларингол. Относ. Спец. 2008; 70: 118–123. doi: 10.1159/000114535. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 13. Пант Х. Гемостаз в эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Отоларингол. клин. Север Ам. 2016; 49: 655–676. doi: 10.1016/j.otc.2016.03.011. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 14. Джэ Ю.Л., Сын В.L. Профилактика образования латеральных синехий после эндоскопической хирургии пазух с применением силастика. Арка Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2007; 133: 776–779. [PubMed] [Google Scholar] 15. Бхандаркар Н.Д., Саттер Н.Б., Кеннеди Д.В., Смит Т.Л. Остеит при хроническом риносинусите: обзор литературы. Междунар. Форум. Аллергия Ринол. 2012;3:355–363. doi: 10.1002/alr.21118. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 16. Пандир В., Пандир Дж., Ланкастер Г., Баер С., Киркланд П., Корнет М., Фоккенс В. Дж. Роль кортикостероидов в функциональной эндоскопической хирургии носовых пазух: систематический обзор и метаанализ.Ринология. 2016; 54:3–19. doi: 10.4193/Rhin15.079. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 17. Джориссен М., Бахерт К. Влияние кортикостероидов на заживление ран после эндоскопической хирургии пазух. Ринология. 2009;47:280. doi: 10.4193/Rhin08.227. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 18. Райт Э.Д., Агравал С. Влияние периоперационных системных стероидов на хирургические результаты у пациентов с хроническим риносинуситом с полипозом: оценка с помощью новой системы оценки периоперационной эндоскопии пазух (POSE). Ларингоскоп.2007; 117:1–28. doi: 10.1097/MLG.0b013e31814842f8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 19. Роджита М., Самал С., Прадхан П., Венкатачалам В.П. Сравнение стероидов и итраконазола для предотвращения рецидивов аллергического грибкового риносинусита: рандомизированное контролируемое исследование. Дж. Клин. Диагн. Рез. 2017; 11: MC01–MC03. doi: 10.7860/JCDR/2017/23488.9610. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]20. Савацубаси М., Мураками Д., Комунэ С. Антибиотикотерапия хронического риносинусита после эндоскопической операции: как долго следует назначать макролидные антибиотики? Междунар. Дж. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2014;4:44. [Google Академия] 21. Jiang R.S., Liang K.L., Yang K.Y., Shiao J.Y., Su M.C., Hsin CH, Lin J.F. Послеоперационная антибиотикотерапия после функциональной эндоскопической хирургии пазух. Являюсь. Дж. Ринол. 2008; 22: 608–612. doi: 10.2500/ajr.2008.22.3241. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 22. Лян К.Л., Су Ю.С., Цай С.С., Линь Дж.С., Цзян Р.С., Су М.С., Лян К.Л., Су Ю.С., Цай С.С., Лин Дж.С. и др. Послеоперационный уход с использованием китайской фитотерапии или амоксициллина после функциональной эндоскопической хирургии носовых пазух: рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование.Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2011;25:170–175. doi: 10.2500/ajra.2011.25.3610. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 23. Албу С., Лукачу Р. Профилактическое назначение антибиотиков при эндоскопической хирургии околоносовых пазух: краткое последующее исследование. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2010; 24:306–309. doi: 10.2500/ajra.2010.24. 3475. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 24. Лук Л.Дж., ДельГаудио Дж.М. Местная лекарственная терапия хронического риносинусита. Отоларингол. клин. Н. Ам. 2017; 50: 533–543. doi: 10.1016/j.otc.2017.01.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 25.Снидвонгс К., Калиш Л., Сакс Р., Крейг Дж. К., Харви Р. Дж. Топический стероид при хроническом риносинусите без полипов. В: Калиш Л., изд. Кокрановская база данных систематических обзоров. Джон Уайли и сыновья, ООО; Чичестер, Великобритания: 2011. [PubMed] [Google Scholar]26. Нойбауэр П.Д., Швам З.Г., Манес Р.П. Сравнение интраназального спрея флутиказона, распылителя будесонида и будесонида респул у пациентов с хроническим риносинуситом с полипозом после эндоскопической операции на пазухах. Междунар. Форум Аллергия Ринол.2016;6:233–237. doi: 10.1002/alr.21688. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 27. Найман Э., Хусс Ф., Найман Т., Юнкер Дж., Крац Г. Гиалуроновая кислота, важный фактор ранозаживляющих свойств амниотической жидкости: исследования in vitro реэпителизации кожных ран человека. Дж. Пласт. Surg. Ручной сург. 2013;47:89–92. doi: 10.3109/2000656X.2012.733169. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 28. Казале М. Новые перспективы применения гиалуроновой кислоты при хронических воспалительных заболеваниях верхних дыхательных путей. Глоб. Дж.Отоларингол. 2015;1:555558. [Google Академия] 29. Эркан А.Н., Чакмак О., Кочер Н.Е., Ылмаз И. Влияние фибринового клея на ткани носовой перегородки. Ларингоскоп. 2007; 117: 491–496. doi: 10.1097/MLG.0b013e31802dc5bc. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 30. Ю М.С., Кан С.-Х., Ким Б.-Х., Лим Д.Дж. Влияние аэрозольного фибринового герметика на гемостаз и заживление ран после эндоскопической хирургии носовых пазух: проспективное рандомизированное исследование. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2014;28:335–340. doi: 10.2500/ajra.2014.28.4047. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 31.Мэсси С.Дж., Сингх А. Достижения в области рассасывающихся биоматериалов и назальных тампонов. Отоларингол. клин. Север Ам. 2017;50:545–563. doi: 10.1016/j.otc. 2017.01.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 32. Wang J., Cai C., Wang S. Merocel в сравнении с Nasopore для тампонирования носа: метаанализ рандомизированных контролируемых исследований. ПЛОС ОДИН. 2014;9:e93959. doi: 10.1371/journal.pone.0093959. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]33. Tom L.W.C., Palasti S., Potsic W.P., Handler S.D., Wetmore R.F. Влияние стентов из желатиновой пленки на средний носовой ход.Являюсь. Дж. Ринол. 1997; 11: 229–232. doi: 10.2500/105065897781751884. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 34. Ви Дж. Х., Ли Ч. Х., Ри К. С., Ким Дж.-В. Сравнение тампонирования гелевой пеной и без тампонирования после эндоскопической операции на пазухах у одних и тех же пациентов. Евро. Арка Ото Рино Ларингол. 2012; 269:897–903. doi: 10.1007/s00405-011-1768-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 35. Berlucchi M., Castelnuovo P., Vincenzi A., Morra B., Pasquini E. Эндоскопические результаты резорбируемого тампонирования носа после функциональной эндоскопической хирургии околоносовых пазух: многоцентровое проспективное рандомизированное контролируемое исследование. Евро. Арка Ото Рино Ларингол. 2009; 266: 839–845. doi: 10.1007/s00405-008-0841-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 36. Миллер Р.С., Стюард Д.Л., Тами Т.А., Силларс М.Дж., Сейден А.М., Шете М., Велге Дж. Клинические эффекты назальной повязки на основе эфира гиалуроновой кислоты (мерогель) на интраназальное заживление ран после функциональной эндоскопической хирургии пазух. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2003; 128: 862–869. doi: 10.1016/S0194-5998(03)00460-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 37. Вормолд П.Дж., Бустред Р.Н., Ле Т., Hawke L., Sacks R. Проспективное слепое рандомизированное контролируемое исследование использования назальных тампонов с гиалуроновой кислотой у пациентов после эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Являюсь. Дж. Ринол. 2006; 20:7–10. doi: 10.1177/194589240602000102. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 38. Франклин Дж. Х., Райт Э. Д. Рандомизированное контролируемое исследование рассасывающейся назальной тампоны на результаты хирургического лечения риносинусита с полипозом. Являюсь. Дж. Ринол. 2007; 21: 214–217. doi: 10.2500/ajr.2007.21.3011. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 39.Киммельман С. П., Эдельштейн Д. Р., Ченг Х. Дж. Синус сепрагеля (Hylan B) в качестве послеоперационной повязки для эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2001; 125: 603–608. doi: 10.1067/mhn.2001.120229. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]40. Ши Р., Чжоу Дж., Ван Б., Ву Ц., Шен Ю., Ван П., Шу X.Z. Клинические результаты новой назальной повязки с гиалуроновой кислотой: проспективное рандомизированное контролируемое исследование. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2013; 27:71–76. doi: 10.2500/ajra.2013.27.3833. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]41.Вайман М., Шламкович Н., Эвиатар Э., Сегал С. Использование фибринового клея в качестве кровоостанавливающего средства в эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Аня. Отол. Ринол. Ларингол. 2005; 114: 237–241. doi: 10.1177/000348940511400313. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]42. Нгок Ха Т., Валентайн Р. , Моратти С., Робинсон С., Хэнтон Л., Вормолд П.-Дж. Слепое рандомизированное контролируемое исследование по оценке эффективности геля хитозана при устьевом стенозе после эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Междунар. Форум. Аллергия Ринол. 2013;3:573–580. doi: 10.1002/алр.21136. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]43. Валентайн Р., Атанасиадис Т., Моратти С., Хэнтон Л., Робинсон С., Вормолд П.-Дж. Эффективность нового геля хитозана в отношении гемостаза и заживления ран после эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2010;24:70–75. doi: 10.2500/ajra.2010.24.3422. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]44. Аль-Шейх С., Муддайя А., Ли Р.Дж., Бхутта М.Ф. Порошок окисленной целлюлозы для гемостаза после операции на пазухах: экспериментальное рандомизированное исследование. Дж. Ларингол. Отол. 2014; 128:709–713.doi: 10.1017/S0022215114001303. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]45. Бейя Дж.А., Ротенберг Б.В. Сравнение очищенного растительного полисахарида (HemoStase) с желатин-тромбиновой матрицей (FloSeal) при остановке кровотечения во время операции на околоносовых пазухах: рандомизированное контролируемое исследование. Аня. Отол. Ринол. Ларингол. 2011; 120:495–498. doi: 10.1177/000348941112000801. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]46. Антисдел Дж.Л., Мейер А., Комер Б., Джанг Д., Гуррола Дж., Хаббаз Э., Коунтакис С. Модель сравнения продуктов в отоларингологии: анализ эквивалентности рассасывающихся гемостатических средств после эндоскопической хирургии пазух.Ларингоскоп. 2016;126:S5–S13. doi: 10.1002/lary.25678. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]47. Kastl K.G., Reichert M., Scheithauer M.O., Sommer F., Kisser U., Braun T., Leunig A. Комфорт пациента после FESS и упаковки Nasopore ® , двойное слепое, проспективное, рандомизированное исследование. Ринология. 2014;52:60–65. doi: 10.4193/Rhin13.020. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]48. Сонг К.Дж., Ли Х.М., Ли Э.Дж., Квон Дж.Х., Джо К.Х., Ким К.-С. Антиадгезионный эффект термочувствительного полоксамера, применяемого после удаления тампона из носа при эндоскопической хирургии околоносовых пазух: рандомизированное многоцентровое клиническое исследование. клин. Отоларингол. 2013; 38: 225–230. doi: 10.1111/coa.12117. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]49. Оттавиано Г., Бландамура С., Фасанаро Э., Фаваретто Н., Андреа Л., Джакомелли Л., Бартолини А., Стафьери А. Назальные аппликации сахарозы октасульфата серебра и заживление ран после эндоскопической хирургии носовых пазух: проспективный, рандомизированный, двойной -слепое плацебо-контролируемое исследование. Являюсь. Дж. Отоларингол. Голова Шея Мед. Surg. 2015; 36: 625–631. doi: 10.1016/j.amjoto.2015.02.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]50.Адриансен Г.Ф.Дж.П.М., Лим К.Х., Фоккенс В.Дж. Безопасность и эффективность биорассасывающейся повязки с флутиказона пропионатом, выделяющей пазухи, в послеоперационном ведении эндоскопической хирургии пазух: рандомизированное клиническое исследование. Междунар. Форум. Аллергия Ринол. 2017;7:813–820. doi: 10.1002/alr.21963. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]51. Гжесковяк Б., Вержовска М., Валорек Р., Середика-Бурдук М., Вавжиняк К., Бурдук П.К. Рассасывающаяся назальная тампона, пропитанная стероидами и антибиотиками, для заживления ран после эндоскопической хирургии носовых пазух: рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование.Браз. J. Оториноларингол. 2018; 85: 473–480. doi: 10.1016/j.bjorl.2018.04.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]52. Guo R., Cantery PH, Ernst E. Травяные лекарственные средства для лечения риносинусита: систематический обзор. Отоларингол. Шея Surg. 2006; 135: 496–506. doi: 10.1016/j.otohns.2006.06.1254. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]53. Хо Э.Ю., Кэди К.А., Роблес Дж.С. Тематическое исследование подъема, американизации и распада Нети Пот как интегративной медицины в дискурсе американских СМИ. Община здоровья.2016;31:1181–1192. doi: 10.1080/10410236.2015.1047145. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]54. Растоги С., Растоги Р., Растоги Р. Применение Джаланети при остром риносинусите. Индийский Дж. Традит. Знай. 2007; 6: 324–327. [Google Академия]55. Гиотакис А.И., Кароу Э.М., Шайтхауэр М. О., Вебер Р., Рихельманн Х. Промывания солевым раствором после операции на носовых пазухах: контролируемое однократное слепое рандомизированное исследование. Ринология. 2016;54:302–310. doi: 10.4193/Rhin16.026. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]56. Цзин Л., Chunquan Z., Hai L., Chen Y., Siyuan G., Yi W., Honggang D. Эффект отвара Zhu-yuan у пациентов с хроническим риносинуситом после функциональной эндоскопической хирургии пазух. Дж. Традит. Подбородок. Мед. 2018; 38:83–88. doi: 10.1016/j.jtcm.2018.02.003. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 57. Хенач Д., Весселинг Ф., Кросс К.В., Стокроос Р.Дж. Мед и продукты пчеловодства в оториноларингологии: описательный обзор. клин. Отоларингол. 2016;41:519–531. doi: 10.1111/coa.12557. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]58. Эль-Анвар М.В., Абдельмонем С., Абдельсамеа А.А., Альшавадфи М., Эль-Кашиши К. Влияние прополиса на заживление поврежденной слизистой оболочки носа: экспериментальное исследование. Междунар. Арка Оториноларингол. 2016;20:222–225. doi: 10.1055/s-0036-1579664. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]59. Кинис В., Озбай М., Акдаг М., Алабалик У., Гул А., Йылмаз Б., Топчу И. Влияние фенетилового эфира кофейной кислоты на заживление ран слизистой оболочки носа у крыс: экспериментальное исследование. Являюсь. Дж. Отоларингол. 2014; 35: 482–486. дои: 10.1016/j.amjoto.2014.02.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 61. Моханти С., Саху С.К. Куркумин и его препараты для местного применения для заживления ран. Препарат Дисков. Сегодня. 2017; 22:1582–1592. doi: 10.1016/j.drudis.2017.07.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]62. Эмироглу Г., Озергин Джошкун З., Калкан Ю., Челеби Эрдиванлы О., Тумкая Л., Терзи С., Дурсун Э. Влияние куркумина на заживление ран в крысиной модели травмы слизистой оболочки носа. Эвид. Дополнение на основе. Альтерн. Мед. 2017;2017:9452392.doi: 10.1155/2017/9452392. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]63. Лин Ю.-К., Граховац Т., О С.Дж., Иерачи М., Рубин Д. П., Марра К.Г. Оценка многослойного листа стволовых клеток, полученных из жировой ткани, в модели заживления ран на всю толщину. Акта Биоматер. 2013;9:5243–5250. doi: 10.1016/j.actbio.2012.09.028. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]64. Нисида К., Ямато М., Хаясида Ю., Ватанабэ К., Маэда Н., Ватанабэ Х., Окано Т. Функциональные биоинженерные листовые трансплантаты эпителия роговицы из стволовых клеток роговицы, выращенных ex vivo на поверхности чувствительных к температуре клеточных культур.Трансплантация. 2004; 77: 379–385. doi: 10.1097/01.TP.0000110320.45678.30. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 65. Кавузлу А., Татар Э., Карагёз Т., Пынарлы Ф.А., Татар И., Байыр О., Коркмаз М.Х. Влияние стволовых клеток на регенерацию ресничек поврежденного синоназального эпителия кролика. Евро. Арка Ото Рино Ларингол. 2017; 274:3057–3064. doi: 10.1007/s00405-017-4595-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]66. Кардия Э., Чинг Э.С., Яхая Б.Х. Доставка эпителиальных клеток дыхательных путей на основе аэрозоля улучшает регенерацию и восстановление дыхательных путей. Дж. Тиссью Инж. Реген. Мед. 2018;12:e995–e1007. doi: 10.1002/term.2421. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]67. Кардиа Э., Мохамед Р., Яхая Б.Х. Стимулирующие выделения эпителиальных клеток дыхательных путей ускоряют раннее восстановление эпителия трахеи. науч. Отчет 2017; 7:11732. doi: 10.1038/s41598-017-11992-6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]68. Китала Д., Кавецки М., Клама-Барыла А., Лабусь В., Краут М., Глик Дж., Новак М. Аллогенные и аутологические кожные трансплантаты в лечении пациентов с ожоговыми травмами: ретроспективный открытый анализ клиническое исследование с сопоставлением пар.Доп. клин. Эксп. Мед. 2016;25:923–929. doi: 10.17219/acem/61961. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]70. Флинн С., Росс К.А., Хэннон С.П., Ясуи Ю., Ньюман Х., Муравски К.Д., Кеннеди Дж.Г. Аутологичная костно-хрящевая трансплантация при костно-хрящевых поражениях таранной кости. Стопа лодыжки Int. 2016; 37: 363–372. doi: 10.1177/1071100715620423. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]71. Куттен Дж.К., Макговерн Д., Хобсон С.М., Луффи С.А., Ниепонис А., Тобита К., Гилберт Т.В. Децеллюляризованный внеклеточный матрикс трахеи поддерживает миграцию, дифференцировку и функцию эпителия.Ткань англ. Часть А. 2015; 21:75–84. doi: 10.1089/ten.tea.2014.0089. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]72. Кумар П., Врана Н.Э., Гаеммагами А.М. Перспективы и проблемы инженерии функционального респираторного эпителия для приложений in vitro и in vivo. Микрофиз. Сист. 2017; 1:1–20. doi: 10.21037/mps.2017.09.01. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 73. О’Лири С., Кавана Б., Унгер Р.Э., Киркпатрик С.Дж., О’Ди С., О’Брайен Ф.Дж., Крайан С.А. Разработка тканеинженерной модели трахеобронхиального эпителия с использованием двухслойного коллагеново-гиалуронатного каркаса.Биоматериалы. 2016; 85: 111–127. doi: 10.1016/j.biomaterials.2016.01.065. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]74. Идрус Р.Б.Х., Норуддин Н.А.А., Ченг Ч.Х., Локанатан Ю., Саим А.Б. Титановая сетка с расширенными клетками респираторного эпителия при реконструкции трахеи. Дж. Биоматер. Ткань англ. 2014; 4: 367–372. doi: 10.1166/jbt.2014.1177. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 75. Рабиатул А.Р., Локанатан Ю., Рохайна С.М., Чоудхури С.Р., Аминуддин Б.С., Рузима Б.Х.И. Модификация поверхности нановолокон из электроформованного полиметилметакрилата (ПММА) для разработки модели респираторного эпителия in vitro.Дж. Биоматер. науч. Полим. Эд. 2015;26:1297–1311. doi: 10.1080/09205063.2015.1088183. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]76. Чоудхури С.Р., Аминуддин Б.С., Рузима Б.Х.И. Влияние добавления среды, кондиционирующей дермальные фибробласты, на размножение кератиноцитов за счет усиления прикрепления. Индийский J. Exp. биол. 2012;50:332–339. [PubMed] [Google Scholar]77. Рохайна С., Йогесваран Л., Рабиатул Адавия Р., Чоудхури С., Аминуддин Б., Русзимах Б. Влияние среды, кондиционированной носовыми фибробластами, на рану in vitro.Реген. Рез. 2014;3:88–89. [Google Академия] 78. Duan H.-G., Ji F., Zheng C.-Q., Li J., Wang J. Кондиционированная среда из мезенхимальных стволовых клеток пуповины улучшает повреждение слизистой оболочки носа радиацией. Биотехнолог. лат. 2018;40:999–1007. doi: 10.1007/s10529-018-2553-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]79. Халим Н.С., Айзат В.М., Яхая Б.Х. Влияние факторов, секретируемых мезенхимальными стволовыми клетками, на восстановление эпителия дыхательных путей. Реген. Мед. 2019;14:15–31. doi: 10.2217/rme-2018-0020. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]80.Акрам К.М., Самад С., Спитери М.А., Форсайт Н.Р. Мезенхимальные стволовые клетки способствуют репарации ран альвеолярными эпителиальными клетками in vitro посредством различных миграционных и паракринных механизмов. Дыхание Рез. 2013;14:9. дои: 10.1186/1465-9921-14-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]81. Накамура Т., Мидзуно С. Открытие фактора роста гепатоцитов (HGF) и его значение для клеточной биологии, наук о жизни и клинической медицины. проц. Япония. акад. сер. Б физ. биол. науч. 2010; 86: 588–610. дои: 10.2183/пяб.86.588. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]82. Чен М., Гуан М., Ли Дж. , Ван Х., Ян Б. Влияние фактора роста гепатоцитов на заживление ран слизистой оболочки верхнечелюстной пазухи кролика. Дж. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2012; 41: 253–258. [PubMed] [Google Scholar]83. Нитья М., Сугуна Л., Роуз К. Влияние фактора роста нервов на ранние реакции в процессе заживления ран. Биохим. Биофиз. Акта. 2003; 1620: 25–31. doi: 10.1016/S0304-4165(02)00501-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]84.Тан Л., Хациродос Н., Вормолд П. Влияние фактора роста нервов и фактора роста кератиноцитов на заживление ран слизистой оболочки пазух. Восстановление ран. 2008; 16: 108–116. doi: 10.1111/j.1524-475X.2007.00323.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]85. Puche JE, Castilla-Cortázar I. Условия дефицита инсулиноподобного фактора роста-I (IGF-I) человека. Дж. Пер. Мед. 2012;10:224. doi: 10.1186/1479-5876-10-224. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]86. Адамс Д.Х., Макинтош Д., Вормолд П.Дж., Коуин А.Дж. Дифференциальные эффекты инсулиноподобных факторов роста на заживление царапин в клетках респираторного эпителия. Являюсь. Дж. Ринол. 2006; 20: 652–657. doi: 10.2500/ajr.2006.20.2916. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]87. Раджапакса С.П., Коуин А., Адамс Д., Вормолд П.-Дж. Влияние назального тампона на основе гиалуроновой кислоты на заживление слизистой в модели синусита у овец. Являюсь. Дж. Ринол. 2005; 19: 572–576. doi: 10.1177/194589240501

7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]88. Вон Х.Р., Кан С.У., Ким Х.J., Jang J.Y., Shin Y.S., Kim C.H. Раствор, обработанный нетермической плазмой, с потенциалом в качестве нового терапевтического средства для регенерации слизистой оболочки носа. науч. Отчет 2018; 8: 1–11. doi: 10.1038/s41598-018-32077-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Современные и альтернативные методы лечения травм слизистой оболочки носа: обзор

Int J Mol Sci. 2020 янв; 21(2): 480.

Джегадевсвари Селвараджа

1 Центр тканевой инженерии, медицинский факультет, Университет Кебангсаан Малайзия, Черас, Куала-Лумпур 56000, Малайзия; мок. liamg @ hajaravlyawsvedage

aminuddin bin saim

2 ухо, нос , Universiti Kebangsaan Malaysia, Черас, Куала-Лумпур 56000, Малайзия; [email protected]

Yogeswaran Lokanathan

1 Центр тканевой инженерии, медицинский факультет, Universiti Kebangsaan Malaysia, Черас, Куала-Лумпур 56000, Малайзия; мок[email protected]

2 Консультативная клиника уха, горла и носа, специализированная больница Ампанг Путери, Ампанг, Селангор 68000, Малайзия

3 Кафедра физиологии, медицинский факультет, Университет Кебангсаан, Малайзия, Черас, 60 Куала-Лумпур, 5 Малайзия ; [email protected]

Поступила в редакцию 1 ноября 2019 г.; Принято 18 декабря 2019 г.

Лицензиат MDPI, Базель, Швейцария. Эта статья находится в открытом доступе и распространяется на условиях лицензии Creative Commons Attribution (CC BY) (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/).Эта статья была процитирована другими статьями в PMC.

Abstract

Повреждение слизистой оболочки носа может быть вызвано травмой, лучевой терапией, хронической инфекцией, такой как синусит, и постсинусной хирургией. Скорость заживления и его лечение важны для выздоровления пациентов, особенно после операции на пазухах, которая приводит к новым травмам. В этом обзоре изначально обсуждались современные знания о механизме, лежащем в основе заживления носовых ран. Обсуждались доступные в настоящее время варианты лечения для улучшения заживления ран после операции на пазухах, и они включали внутривенное введение антибиотиков или стероидов, различные назальные спреи и назальные тампоны.Кроме того, также обсуждались новые альтернативные методы лечения ран слизистой оболочки носа, такие как фитотерапия, и развитие методов регенеративной медицины, таких как стволовые клетки и их побочные продукты. Несмотря на различные доступные варианты лечения ран на слизистой оболочке носа, строгие убедительные доказательства их эффективности настоятельно необходимы для того, чтобы рекомендовать их как часть метода лечения.

Ключевые слова: слизистая оболочка носа, заживление ран, регенеративная медицина, травмы носа

1.Введение

Заболевания носа, особенно в результате хронического воспаления и инфекции, такие как риносинусит, существенно влияют на качество жизни пациента [1]. Риносинусит является распространенным заболеванием носовой полости, которым страдает примерно 5–15% населения в целом [2]. Такие методы лечения, как антибиотики, носовой душ, стероиды и назальные спреи, обычно назначают пациентам для устранения инфекции, уменьшения воспаления и возвращения пораженной слизистой оболочки к нормальному, функциональному респираторному эпителию.Другим распространенным методом лечения является хирургическое вмешательство, известное как эндоскопическая хирургия околоносовых пазух (ЭСС), которое назначается после неэффективности консервативного лечения после заболеваний носа, таких как хронический риносинусит и полипоз носа [3]. [4]. Это может быть связано с несколькими факторами, такими как метаплазия слизистой оболочки из-за хронического воспаления или вторичное повреждение оставшихся здоровых тканей во время процедуры, что может поставить под угрозу регенерацию слизистой оболочки носа [5].

Значение ЭСС в практике оториноларингологии обусловило интерес к пониманию заживления послеоперационных ран слизистой оболочки носа. К сожалению, на сегодняшний день большая часть наших знаний доступна с точки зрения заживления ран, что касается восстановления поврежденной кожи или роговицы [6]. В отношении слизистой оболочки носа мало известно о физиологических основах заживления ран этой ткани [7]. Вейтлет и др. собрал и обсудил научную литературу о заживлении ран слизистой оболочки носа с десяти лет назад [8].В этом обзоре были представлены последние обновления накопленных знаний с точки зрения физиологии слизистой оболочки носа и заживления ран после операций на носу.

2. Заживление ран слизистой оболочки носа

Эпителий носа состоит из непрерывного слоя псевдомногослойных столбчатых эпителиальных клеток, которые отделены от собственной пластинки сплошной базальной мембраной. В эпителии можно обнаружить четыре отличительных типа клеток: базальные, бокаловидные, реснитчатые и нереснитчатые столбчатые клетки. В интактной слизистой оболочке функции эпителиальных клеток носа включают выработку и транспорт слизи, резорбцию поверхностной жидкости, гомеостаз и иммунные реакции совместно с нижележащей лимфатической и сосудистой тканью [7]. Повреждение слизистой оболочки носа может быть следствием постлучевой или послеоперационной травмы, а также инфекции при хроническом риносинусите.

Нормальное заживление ран слизистой оболочки носа после ЭШС состоит из четырех клинических различных стадий процесса заживления: стадии немедленной очистки операционной полости, перехода слизистой оболочки, полной эпителизации и ремоделирования тканей [9].Физиологически эти четыре фазы коррелируют с фазами гемостаза, воспаления, пролиферации и ремоделирования тканей при заживлении ран, которые наблюдались в моделях повреждения носа in vivo на кроликах [10] и крысах [11].

Повреждение слизистой оболочки носа вызывает кровотечение. Следовательно, первой задачей заживления раны является герметизация утечки путем образования фибриновой пробки посредством активации каскада коагуляции [6]. Сразу после операции можно наблюдать кровяные корки, преобладающие в полости носа в течение первых двух недель.По истечении двух недель после операции операционная полость очищается, что является подготовкой к следующему этапу [12]. Подобное образование корок также можно наблюдать по общей морфологии носовой раны на модели кролика [10] и крысы [11].

За фазой гемостаза следует фаза воспаления. Основная цель этой фазы — очистить рану от инфекции [6]. У человека в операционных полостях происходит переход слизистой оболочки в ответ на удаление слизистой оболочки в течение 3–10 недель после операции.Переходы, которые можно наблюдать, включают отек слизистой оболочки, везикулы, грануляционную ткань, мини-полипы, фиброзную гиперплазию и адгезию. В конечном итоге они будут очищены, чтобы уступить место процессу эпителизации слизистой оболочки [12]. In vivo отек подэпителия и инфильтрация лейкоцитами наблюдались через двое суток после ранения у крыс [11] и через три недели после ранения у кроликов [10].

После очистки от патогенных материалов и мертвых иммунных клеток наступает фаза пролиферации [6].За клиренсом перехода слизистой оболочки следует эпителизация слизистой оболочки, которая происходит в течение 11–14 недель после операции у человека [12]. Увеличение субэпителиального фиброза и толщины эпителия отмечали на 14-й день после ранения у крыс [11], тогда как толщина эпителия у кроликов достигала своего пика к 4-й неделе после ранения [10].

Последней фазой заживления ран является ремоделирование тканей. В слизистой оболочке носа эта фаза включает дифференцировку назального эпителия в специализированные клетки, бокаловидные клетки и реснитчатые клетки.У человека изменения в субэпителиальной слизистой оболочке могут отмечаться до шести месяцев после операции [12]. В крысиной модели дифференцировка эпителия в бокаловидные клетки и реснитчатые клетки началась на 14-й день и полностью восстановилась почти до нормы на 28-й день [11]. В модели кролика количество реснитчатых клеток достигало своего пика через пять недель после ранения [10].

3. Послеоперационные осложнения эндоскопической хирургии придаточных пазух носа

ESS — это метод, использующий эндоскопическое зрение, позволяющий хирургу достичь придаточных пазух носа с минимальным повреждением окружающих тканей [3].Это одна из наиболее распространенных процедур, выполняемых в оториноларингологии, и ее успешность зависит от результата заживления послеоперационной раны [3].

После введения хирургической травмы ожидается кровотечение в связи с тем, что полость носа богата кровоснабжением, поступающим из наружной и внутренней сонных артерий в этой области [13]. Послеоперационное кровотечение чаще всего происходит в течение первых 24 часов после процедуры, но может откладываться на несколько дней или даже недель.В случае образования гематомы в пределах слизистой оболочки носа ее удаление необходимо для предотвращения ишемии и фиброза, ведущих к развитию рубцевания [4].

Другим частым осложнением после ЭСС является слипание тканей, также известное как носовые синехии. Носовые синехии образуются, когда две влажные противоположные поверхности внутри носа заживают вместе, образуя слившуюся фиброзную ткань, которая может блокировать нормальный поток воздуха через нос [14]. Считается, что из-за своей роли в отложении и ремоделировании внеклеточного матрикса (ECM) назальные фибробласты ответственны за назальные синехии.

Существует также подгруппа пациентов с рецидивирующим хроническим риносинуситом, у которых наблюдается утолщение костей, известное как остит. Остеит – это утолщение кости из-за воспаления. Заболевание слизистой оболочки может повлиять на жизнеспособность кости под ней. Со временем эта плохая жизнеспособность может перерасти в костное воспаление, которое в конечном итоге приводит к утолщению кости. Мало что известно о послеоперационном остите и стратегии лечения этого состояния [15].

Таким образом, основными задачами послеоперационного ведения заживления раны носа являются остановка послеоперационного кровотечения, предотвращение спаек и ускорение процесса заживления [4].

4. Послеоперационное лечение заживления раны носа

Для облегчения заживления ран слизистой оболочки носа после инвазивной хирургии околоносовых пазух применялось множество местных вмешательств и повязок. Используемые вмешательства включают внутривенное введение антибиотиков или стероидов, спринцевание носа и тампонирование носа для предотвращения инфекции и ослабления длительного воспаления, что в совокупности улучшает процесс заживления слизистой оболочки носа.

4.1. Системное лекарство

Послеоперационное лечение системными препаратами включает пероральное или внутривенное введение стероидов и антибиотиков, которые используются для уменьшения воспаления и инфекции, которые останавливают прогрессирование заживления раны после операции на пазухах [16].

Среди кортикостероидов, которые использовались после операции, были пероральный бетаметазон [17] и пероральный преднизолон [18]. Использование системных стероидов при ФЭСС в периоперационном периоде спорно; однако недавние систематические обзоры и метаанализ показали, что введение системных стероидов, особенно после операции, может быть связано с улучшением эндоскопических показателей и снижением риска рецидива у пациентов с хроническим риносинуситом с полипозом носа [16]. Джоррисен и Бахерт исследовали пероральный прием бетаметазона (2 мг в течение семи дней) с последующим применением топических спреев мометазона фуроата (200 мкг два раза в день в течение шести месяцев) в связи со снижением риска синусита (ОР 0,76, 95% ДИ 0,31, 1,90) и улучшением послеоперационного периода. эндоскопическая оценка. С другой стороны, наблюдалось, что послеоперационное введение преднизолона (перорально, 30 мг в течение девяти дней) приводит к более здоровым пазухам [18].

Несмотря на то, что большинству пациентов системные стероиды помогли предотвратить рецидив раны, у значительной части пациентов все еще наблюдались рецидивы раны даже в ближайшем послеоперационном периоде [16].Кроме того, длительное использование системных стероидов может привести к множеству побочных эффектов [19].

Было мало доказательств в поддержку использования антибиотиков у пациентов после FESS [20]. Было показано, что трехнедельный курс амоксициллина и клавуланата калия (375 мг, три раза в день в течение трех недель) не имеет существенных различий с точки зрения симптомов и эндоскопической оценки по сравнению с контролем [21]. Аналогичный результат был также продемонстрирован в рандомизированном двойном слепом контролируемом исследовании перорального амоксициллина (250 мг, т.д. с в течение четырех недель) [22]. Между тем, краткое последующее исследование показало, что двухнедельный курс амоксициллина и клавуланата (625 мг два раза в день) улучшал заложенность носа и дренаж только на пятый день в отношении других симптомов и улучшал эндоскопические показатели на пятый и 12-й дни. 23]. В связи с появлением резистентности бактерий к макролидам риски перевешивают преимущества, и следует побудить к сокращению использования антибиотиков.

4.2. Назальный спрей

Назальный спрей — это метод доставки лекарств, в основном стероидов, в интраназальное пространство с помощью аэрозольного баллончика.Основная цель послеоперационного лечения с помощью назального спрея — модулировать воспалительную фазу заживления назальной раны [24,25]. Он считается стандартным методом лечения рецидивирующего синусита после хирургического вмешательства [17]. Беклометазона дипропионат, первый аэрозольный кортикостероид для местного применения, используется в клинической практике с 70-х годов. В литературе описано множество других аэрозольных стероидных препаратов, включая преднизолона ацетат, мометазона фуроат, триамцинолона ацетонид и флутиказона пропионат [24].Между тем, сообщалось, что различные типы интраназальных стероидных спреев имеют разную эффективность после FESS [26]. Это было продемонстрировано недавним клиническим испытанием (ClinicalTrials.gov: {«type»:»clinical-trial»,»attrs»:{«text»:»NCT02194062″,»term_id»:»NCT02194062″}}NCT02194062), что определить два типа интраназальных стероидных спреев (флутиказон и будесонид) для снижения частоты полипоза у пациентов с хроническим риносинуситом после FESS. Было замечено, что будесонид превосходит флутиказон (улучшение синоназального исходного теста (SNOT-22) и шкалы Лунда-Кеннеди) [26].

Местное введение антибиотиков и противогрибковых препаратов с помощью назального спрея когда-то считалось краеугольным камнем послеоперационного лечения после ЭСС. Это связано со старой парадигмой, которая постулировала, что воспаление, наблюдаемое в послеоперационной носовой полости, является результатом инфекции микроорганизмами в пазухах. В эпоху устойчивых к антибиотикам микроорганизмов оба метода лечения, как правило, потеряли популярность с точки зрения послеоперационного ведения после ЭСС [24].

По мере развития технологии назальный спрей используется для доставки биоактивных соединений, таких как компонент ECM или компонент каскада коагуляции.В модели заживления кожных ран in vitro было показано, что белок ECM гиалуронан усиливает реэпителизацию [27]. Было показано, что введение гиалуроната натрия через небулайзер в полость носа вызывает более быстрое восстановление после ЭСС, сохраняя при этом комфорт пациента на протяжении всего процесса [28].

Идея доставки компонента коагуляционного каскада в носовую полость сосредоточена вокруг разрешения фазы гемостаза, чтобы обеспечить прогрессирование заживления раны [29]. Проспективное исследование, сравнивающее введение аэрозольного фибрина и нерассасывающихся назальных тампонов, показало, что корки, спайки, кровотечения, образование грануляционной ткани, инфекция и стеноз устья лобной пазухи после эндоскопической хирургии, а также общий комфорт улучшаются после использования фибринового спрея. [30].

4.3. Назальная повязка

Одновременно с разработкой назального спрея в качестве назальной повязки начали использовать биоматериалы. Основной целью тампонирования носа является ускорение заживления послеоперационной раны за счет ускорения процесса заживления, предотвращения спаек и остановки послеоперационного кровотечения. Мэсси и Сингх опубликовали подробный обзор биоматериалов, используемых для тампонирования носа [31]. Назальная тампона выполнена в виде пены или губки, которая может действовать как тампон, который вводится в полость носа для создания давления для остановки кровотечения.Тампоны для носа могут быть рассасывающимися и нерассасывающимися.

Нерассасывающаяся тампона использовалась в хирургии околоносовых пазух в течение десятилетий до появления ее рассасывающегося варианта [31]. Носовая тампона может быть источником боли и дискомфорта для пациентов из-за процесса удаления носовой тампоны. Во многих случаях его удаление описывалось некоторыми пациентами как наиболее болезненная часть всей процедуры [32]. Таким образом, в последующие десятилетия следует разработка рассасывающихся назальных тампонов.

Что касается рассасывающихся назальных тампонов, то известно, что для их изготовления используется несколько материалов. В целом их можно разделить на три категории: белок ЕСМ, коагулянт и биополимер. К таким материалам относятся желатин, гиалуронан, фибрин, хитозан, целлюлоза, картофельный крахмал, карбоксиметилцеллюлоза, полиуретан и полиэтиленгликоль [31]. Они были изготовлены в различных формах, включая пены, гели, сетки, пленки и порошки. Хотя биорассасывающаяся назальная тампона обеспечивает лучший результат с точки зрения предотвращения синехий и остановки носового кровотечения, ее влияние на ускорение заживления раны от умеренного до незначительного.

Самая ранняя форма рассасывающихся назальных тампонов представлена ​​в виде желатиновой пленки [33] или пены [34]. По сравнению с необработанным носом не было замечено существенных различий в отношении результатов спаек, грануляционной ткани или отека [33,34].

Гиалуронан является одним из основных компонентов внеклеточного матрикса, который, как известно, усиливает реэпителизацию in vitro [27]. Гиалуронан в форме геля, MeroGel, был тщательно изучен, и, насколько нам известно, в общей сложности было проведено четыре РКИ.В одном исследовании по сравнению с нерассасывающейся назальной тампой MeroGel показал лучшие результаты в отношении предотвращения спаек через 4 и 12 недель после операции [35]. Тем не менее, в трех других более ранних исследованиях не удалось обнаружить существенных различий с точки зрения результатов заживления ран, таких как послеоперационный отек и рубцевание, между группой лечения (MeroGel) и контрольной группой [36,37,38]. Кроме того, сообщалось, что испытания с перекрестно-сшитым гиалуроновым водонерастворимым гелем [39] и гидрогелем [40] показали лучшие результаты.В совокупности продукты на основе гиалуроновой кислоты, по-видимому, приносят скромную пользу в отношении заживления ран слизистой оболочки носа.

Что касается других биоматериалов, то два материала, фибрин [41] и хитозан [42,43], продемонстрировали превосходные ранозаживляющие и кровоостанавливающие свойства по сравнению с нерассасывающейся назальной тампоном, в то время как целлюлоза [44], картофельный крахмал [45] , карбоксиметилцеллюлоза [46], полиуретан [47] и полиэтиленгликоль [48] остаются аналогичными необработанному контролю или нерассасывающейся упаковке [31]. обобщает действие рассасывающихся назальных тампонов, изготовленных из различных биоматериалов. В целом использование назального тампона эквивалентно контролю.

Таблица 1

Влияние рассасывающихся назальных тампонов на параметры заживления носовых ран.

9012 9

2 9190 45 Картофельный крахмал

Абсорбируемый назальный пакет
Эндоскопические Hranulation Edema
[33] Gelatin Film не распаковывается NA = = Н. А.
[34] Желатин пены Распакованный Н.А. = = =
[35] Гиалуроновая кислота гель поливинилацетат (PVA) Na + Na Na Na [36] [36] [36] [36] PVA Na = Na =
[38] Гель гиалуроновой кислоты ПВА = НП НП НП
[37] Гиалуроновая гель Распакованный Н. А. = Н. А. =
[39] Гиалуроновая гель Распакованный + + Н.А. Н.А.
[40 ] Гиалуроновая гель Распакованный Н. А. + Н.А. Н.А.
[41] фибринового клея ПВА Н.А. Н.А. Н.А. +
[42] Хитозан гель Распакованный = Н. А. Н.А. +
[43] Хитозан гель Распакованный = Н.А. Н.А. +
[44] Целлюлозный порошок ПВА + + NA +
Желатин-тромбин матрица Н. А. Н.А. Н.А. =
[46] карбоксиметилцеллюлозы Картофельный крахмал = = = =
[47] Пенополиуретан Распакованный + Н. А. Н.А. +
[48] Полиэтиленгликоль Гиалуроновая гель Н.А. = Н. А. =

По мере развития области послеоперационное ведение заживления носовых ран перешло к парадигме функциональной назальной тампоны.В этой парадигме биоматериалы, которые были изготовлены в виде рассасывающихся тампонов для носа, использовались в качестве средства доставки известных лекарств для заживления ран, таких как стероиды и антибиотики.

Гель Silsos ® представляет собой зарегистрированную назальную повязку, изготовленную из октасульфата сахарозы серебра в сочетании с октасульфатом сахарозы калия, гиалуронатом натрия, пропиленгликолем, карбомером и водой [49]. Серебро является хорошо известным противомикробным средством, которое обычно используется для лечения кожных ран.В рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании сообщалось, что пациенты, получавшие гель Silsos ® , показали лучшие результаты по шкале Sino-Nasal Outcome Test 22 (SNOT22) по сравнению с группой плацебо. Эндоскопически также наблюдалась лучшая интеграция в слизистую оболочку в группе с гелем Silsos ® . Плацебо содержит гель (карбопол и пропиленгликоль) без серебра. Исследование успешно показало эффективность серебра в заживлении ран слизистой оболочки носа [49].

SinuBandFP представляет собой двухслойную тонкую пленку размером 2 см × 2 см, состоящую из фибриногена и обогащенную в общей сложности 160 мкг флутиказона пропионата. После применения SinuBandFP в полости носа со временем высвобождается кортикостероид флутиказона пропионат. В рандомизированном контролируемом исследовании по изучению его безопасности и эффективности группа SinuBandFP продемонстрировала местную безопасность, безопасность для глаз и отсутствие значительных изменений уровня кортизола в моче через 24 часа по сравнению с SinuBand без кортикостероидов.С точки зрения эффективности, группа SinuBandFP показала лучшие результаты с точки зрения количества полипов, возникновения спаек и общей боли [50].

Nasopore ® представляет собой биорассасывающуюся назальную повязку, изготовленную из фрагментируемого поли(DL-лактид-ко-Е-капролактона) уретана. В рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании Grzeskowiak и коллеги сравнили эффективность упаковки Nasopore ® , пропитанной либо стероидом (бетаметазоном), либо антибиотиком (ципрофлоксацином) [51]; Nasopore ® , пропитанный физиологическим раствором, использовали в качестве плацебо. Исследование показало значительное улучшение процесса послеоперационного заживления и удовлетворенности пациентов при использовании биорассасывающихся тампонов, выделяющих стероиды и антибиотики, по сравнению с тампонами, пропитанными физиологическим раствором. обобщает влияние функциональной назальной тампоны на различные исходы заживления носовых ран. Назальная упаковка предлагает систему доставки лекарств, которую можно адаптировать в соответствии с потребностями пациента.

Таблица 2

Функциональная назальная упаковка для доставки лекарств.

[49]
Функциональный пакет Nasal
Nasal Pack препараты результаты
Silsos Gel Silver улучшает Snot22 Оценка и слизистые заживления
[50] SinuBandFP флутиказона пропионат улучшает полип счета, адгезия, боль
[51] Nasopore бетаметазона улучшает заживление и удовлетворение
ципрофлоксацина улучшает заживление и удовлетворение

5.

Дополнительное и альтернативное лечение травм носа

Лечение травм носа было описано во многих культурных и религиозных записях в прошлом. Из-за тесной связи между слизистой оболочкой носа и внешней средой через вдыхаемый воздух фитотерапия играет большую роль в лечении многих случаев повреждения носа в разных культурах [52].

5.1. Ирригация носа

Древняя индуистская практика Аюрведы содержит самые ранние сведения о промывании носа [53].В аюрведических писаниях перечисляется ряд практик личной гигиены, называемых суча. Среди суча насчитывается 90 489 джала нети 90 490, также известных как практика промывания носа [54]. Согласно священному писанию, более высокого состояния медитации можно достичь, очистив нос, поскольку ясное дыхание может привести к ясному мышлению. Простейший метод очистки носа заключался в том, чтобы понюхать воду из сложенных чашечкой рук и выдуть ее, что также является шагом в мусульманской практике омовения [53]. В современной науке данные РКИ продемонстрировали важность промывания носа для ускорения заживления ран слизистой оболочки носа [55].

Точные механизмы до сих пор неизвестны, но большинство экспертов считают, что это связано с прямым очищением слизистой оболочки носа, независимо от состава используемого раствора [54]. Это приводит к тому, что слизистая оболочка становится мягкой и смещается. Кроме того, антиген и медиаторы воспаления, такие как лейкотриены и простагландины, вызывают аллергические реакции и могут быть удалены путем промывания носа. Состав солевых растворов может повлиять на эффективность промывания носа, где использование более низкой концентрации соли и изотонических растворов немедленно значительно снизит микробные антигены.С другой стороны, показано, что используемые гипертонические растворы могут минимально влиять на концентрацию микробных антигенов.

Промывание носа с добавлением ионов, таких как натрий и хлорид, может способствовать целостности и функционированию эпителиальных клеток. Кроме того, добавление магния снижает метаболизм эйкозаноидов путем прямого ингибирования фермента 5-липоксигеназы, способствуя восстановлению клеток и ограничивая воспаление [55]. Магний также ингибирует экзоцитоз пермеабилизированных эозинофилов и снижает апоптоз респираторных клеток в сочетании с цинком [55].

5.2. Китайская медицина

В китайской медицине травяные составы создаются для уравновешивания «Инь-Ян», что основано на теории традиционной китайской медицины (ТКМ). Возникновение болезней считается результатом дисбаланса в теории. В азиатских странах, таких как Китай, назальные стероиды и пероральные антибиотики используются вместе с травами в качестве адъювантного лечения после ЭСС. Было проведено исследование для изучения безопасности и эффективности отвара Чжу-Юань (ZYD) в послеоперационном уходе за пациентами с FESS.Согласно теории традиционной китайской медицины, ZYD используется для лечения симптомов китайской медицины (мокрота и жар, препятствующие носовым пазухам). Исследование показало, что введение ZYD дало значительные результаты, которые имеют такую ​​​​же безопасность и эффективность, что и интраназальное введение кортизона. Однако исследование было краткосрочным (длилось 12 недель) и требовало изучения долгосрочных эффектов и дальнейшего изучения для выяснения основных механизмов ZYD [56].

5.3. Пчелиный прополис

Прополис — это материал, который пчелы используют для строительства своих ульев.Было показано, что он синтезирован пчелами из растительной смолы и обладает противовоспалительной активностью [57]. Исследование с крысиными моделями и повреждением носа выявило уменьшение воспаления и ускорение заживления ран слизистой оболочки носа [58]. В исследовании также было показано, что прополис уменьшает тяжесть воспаления и сохраняет как бокаловидные клетки, так и цилиарные клетки в слизистой оболочке носа [58]. Точные механизмы заживления ран слизистой оболочки носа прополисом требуют дальнейшего изучения, но было высказано предположение, что его заживляющие свойства связаны с его иммуностимулирующим эффектом, при котором способность к секреции цитокинов значительно увеличивается в течение периода лечения в зависимости от времени. Кроме того, прополис может стимулировать значительное увеличение компонентов ВКМ на начальном этапе заживления раны. Другое исследование, в котором изучается фениловый эфир кофейной кислоты, биоактивное соединение прополиса, также выявило ускорение заживления ран на слизистой оболочке носа [59].

5.4. Куркумин

Среди специй в значительной степени сообщалось о лечебных свойствах куркумы [60]. В кожных ранах куркумин продемонстрировал противовоспалительные и ранозаживляющие свойства [61].Используя модель повреждения носа у крыс, также сообщалось, что куркумин уменьшает воспаление и ускоряет заживление ран на слизистой оболочке носа [62]. Это связано со снижением воспалительной реакции слизистой оболочки носа за счет ингибирования продукции цитокинов для активации макрофагов и моноцитов [62]. С другой стороны, куркумин усиливает организацию грануляционной ткани, которая содержит большее количество мелких капилляров и миофибробластов в модели диабетической крысы [62].

6.

Тканевая инженерия и регенеративная медицина

Тканевая инженерия — это направление регенеративной медицины, в котором применяется междисциплинарный подход к восстановлению и регенерации тканей за счет комбинации трех элементов: стволовых клеток, биомиметических каркасов и биоактивных молекул. В контексте регенерации слизистой оболочки носа тканевая инженерия является многообещающей для достижения целей регенерации.

6.1. Клеточная и тканевая терапия

Стволовые клетки вызывают интерес в регенеративной медицине с начала 20-го века.Что касается заживления ран, то были сообщения о его эффективности при заживлении ран на коже [63] и эпителии роговицы [64]. Используя модель кролика с травмой носа, Kavuzlu et al. имплантировали лист мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани, в слизистую оболочку носа для ускорения ее заживления [65]. Имплантат привел к улучшению морфологии, количества и плотности реснитчатых эпителиальных клеток носа. Предполагается, что механизмы процесса заживления связаны с усилением реэпителизации и стимуляцией раневого ангиогенеза за счет секреции факторов роста, цитокинов и коллагеновой ткани, а также за счет антиоксидантного действия за счет нейтрализации активных форм кислорода [65].

В другом исследовании была предпринята попытка использовать метод доставки аэрозоля для доставки регенеративных клеток на поврежденную ткань, например, в работах Кардиа и его коллег [66]. Они успешно продемонстрировали улучшение регенерации и восстановления в дыхательных путях кролика при доставке аэрозольных аллогенных эпителиальных клеток дыхательных путей [66]. Процесс регенерации и восстановления включает быструю реэпителизацию оголенной области, где происходят дедифференцировка, миграция, пролиферация и редифференцировка клеток для репопуляции эпителия трахеи.Кроме того, было высказано предположение, что процесс репарации опосредуется секрецией таких соединений, как факторы роста, цитокины и хемокины, которые вызывают репарацию эпителия трахеи [67].

Во многих хирургических вмешательствах трансплантат аутологичной ткани считается золотым стандартом. Это можно наблюдать при ожоговых ранах [68], повреждении связок [69] и остеоартрозе [70]. Было показано, что использование аутологичных трансплантатов слизистой оболочки носа у кроликов улучшает реэпителизацию. Используя световую и сканирующую электронную микроскопию, Topdag et al.продемонстрировали, что цилиарный эпителий покрывает большую площадь, имеет более зрелые и сложные реснички и менее гипертрофированный эпителий в пересаженной ткани по сравнению с не пересаженной тканью [6].

6.2. Тканевые каркасы

Тканевые каркасы служат в качестве шаблона, который обеспечивает поддержку клеток в сконструированной ткани. Каркасы изготавливаются таким образом, чтобы они напоминали нативную ткань либо за счет структурных сетей и геометрии, либо за счет биохимического состава.

Биоматериал, используемый для изготовления каркаса, может быть природного или синтетического происхождения.Одним из видов естественных тканевых каркасов является децеллюляризированный матрикс нативной ткани. Было показано, что децеллюляризованный внеклеточный матрикс трахеи положительно влияет на миграцию, дифференцировку и функцию респираторного эпителия в мышиной модели ортотопической трансплантации трахеи [71].

Коллаген и гиалуронан являются двумя широко используемыми природными биоматериалами для цилиарной дифференцировки респираторных эпителиальных клеток человека [72]. Было показано, что в комбинации двухслойные каркасы из коллагена и гиалуроновой кислоты облегчают дифференцировку эпителиальных клеток легких и экспрессию муцина [73].

Тканеинженерные каркасы также могут быть синтетического происхождения. Изготовление двухслойной трахеи с использованием аутологичных клеток носового респираторного эпителия и фибробластов, посеянных на титановом каркасе, успешно индуцировало реэпителизацию в трахее овцы [74]. Вдобавок ко всему, многообещающие результаты показали работы по гибридной комбинации природного и синтетического биоматериала для инженерии тканей органов дыхания [75]. Рабиатул и др. использовали метод функционализации поверхности для электропрядения полиметилметакрилата (ПММА) синтетического происхождения с коллагеном типа 1, природным полимером.Результат показал, что гибридные каркасы способны поддерживать прикрепление респираторных эпителиальных клеток и способствовать пролиферации [75].

6.3. Клеточные секреторные белки, факторы роста и кондиционированная среда

В качестве альтернативы гипотезе о дифференцировке стволовых клеток было также высказано предположение, что влияние стволовых клеток на заживление ран связано с секрецией цитокинов и гормонов роста, которые активируют резидентные клетки в ткани. регенерировать. В лаборатории факторы, секретируемые клетками, можно обнаружить в среде, в которой культивируются стволовые клетки.Следовательно, после сбора эта среда называется кондиционированной средой.

В результате целебные свойства кондиционированной среды стволовых клеток также стали предметом интереса регенеративной медицины. Доказано, что доставка эпителия дыхательных путей в дыхательные пути улучшает его регенерацию [76]. Также было показано, что секретируемые факторы, происходящие из эпителия дыхательных путей, ускоряют раннее восстановление эпителия трахеи [77]. Раннее восстановление могло включать уменьшение воспаления, опосредованное секрецией факторов эпителием дыхательных путей, таких как ИЛ-10, который снижает уровни провоспалительных цитокинов (ИЛ-1β и ИЛ-6) в дополнение к секреции других факторов. такие как фактор роста эндотелия сосудов α и белки муцина [77].

Фибробласты – клетки соединительной ткани, играющие вспомогательную роль в ткани, в которой они находятся, одна из таких – синтез внеклеточного матрикса [76]. Также было доказано, что среда, кондиционированная фибробластами носа, усиливает пролиферацию и миграцию клеток респираторного эпителия за счет использования избыточных тканей после операций по удалению турбины [77].

Мезенхимальные стволовые клетки и их секреторные факторы также представляют интерес в контексте регенерации тканей.Было показано, что кондиционированная среда из мезенхимальных стволовых клеток, полученных из пуповины, улучшает заживление носового эпителия как in vivo, так и in vitro [78]. В исследовании с использованием секреции мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани, улучшенная регенерация ткани дыхательных путей была связана со стимуляцией перехода эпителия в мезенхиму [79].

В поддержку концепции клинического применения секретома мезенхимальных стволовых клеток (МСК) костного мозга человека в регенерации для лечения идиопатического легочного фиброза и других фиброзных заболеваний легких Akram et al.протестировали среду, кондиционированную МСК (MSC-CM), с клетками линии A549 альвеолярных эпителиальных клеток II типа человека (AEC) и первичными эпителиальными клетками малых дыхательных путей человека (SAEC) с использованием модели заживления царапин in vitro. Они обнаружили, что MSC-CM в их исследовании содержали фибронектин, люмикан, периостин и IGFBP-7. Они также продемонстрировали, что MSC-CM способствует заживлению ран AEC и SAEC за счет стимуляции миграции клеток [80].

Технология рекомбинантных белков позволила ученым синтезировать индивидуальные факторы роста.В результате стало возможным изучение влияния отдельных факторов роста на многие болезни человека. Фактор роста гепатоцитов (HGF), первоначально открытый как митоген для гепатоцитов, в основном продуцируется мезенхимальными клетками [81]. Также известно, что он стимулирует эпителиальную пролиферацию, подвижность, морфогенез и ангиогенез в различных органах посредством фосфорилирования тирозина его рецептора c-Met. Было показано, что в слизистой оболочке носа HGF ускоряет заживление ран за счет ускорения реэпителизации и усиления цилиогенеза [82].

Сообщалось также, что фактор роста нервов (NGF) усиливает заживление эпителия после операции [83]. Интерфейс воздух-жидкость с использованием назального эпителия использовали для проверки влияния NGF на скорость закрытия ран и экспрессию клеточной адгезии, образование плотных контактов, пролиферацию клеток и белок, связанный с цилиогенезом. Исследование успешно продемонстрировало ускорение закрытия эпителиальных ран с помощью NGF [84].

Инсулиноподобный фактор роста (IGF-I) представляет собой гормон, молекулярная структура которого аналогична инсулину.В основном секретируемый печенью ИФР-1 важен как для регуляции нормальной физиологии, так и для некоторых патологических состояний [85]. In vitro IGF-I продемонстрировал ускоренное заживление ран в эпителиальных клеточных линиях человека, полученных из назальной, бронхиальной и трахеальной областей [86]. Когда ИФР-I был включен в назальные тампоны на основе гиалуроновой кислоты, он продемонстрировал избирательное улучшение скорости заживления слизистой оболочки носа здоровых овец, но не овец с воспаленными тканями [87].

7. Плазмотерапия

Исследователи расширили свой интерес к изучению эффекта плазмы в медицине, так как в некоторых литературных источниках предполагалось ее благотворное воздействие, включая противовоспалительное, противораковое, противомикробное и даже регенерацию тканей. Плазма считается четвертым состоянием вещества, которое состоит из частично ионизированного газа, содержащего электроны, радикалы, энергичные фотоны и ионы.

Что еще более важно, применение плазмотерапии было недавно задокументировано Won et al.(2018) [88], изучая раствор, обработанный нетермической плазмой (NTS), и его терапевтические эффекты для регенерации слизистой оболочки носа in vitro и in vivo. В общем, НТС готовили обработкой растворов нетепловой плазмой через плазменное устройство. NTS не проявлял цитотоксичности по отношению к эпителиальным клеткам бронхов человека BEAS-2B, одновременно усиливая клеточную пролиферацию, миграцию и переход от эпителия к мезенхиме во время процесса заживления раны.

Кроме того, исследование in vitro показало, что NTS также усиливает активность матриксной металлопротеиназы (MMP)-2/MMP-9, которая индуцирует миграцию клеток во время заживления ран.Чтобы предоставить больше доказательств его эффективности, они протестировали NTS на крысах, выполнив промывание слизистой оболочки носа солевым раствором, обработанным NTS, после введения раны в правую слизистую оболочку носовой перегородки. Индекс толщины эпителия (ETI) и субэпителиальный индекс (STI) использовали для получения соотношения средней высоты вновь образованной ткани в группе, получавшей лечение, по сравнению с высотой в контрольной группе. Гистопатологический анализ показал, что NTS значительно увеличил ETI, предполагая повышенную пролиферацию эпителия при значительном снижении STI, что привело к уменьшению отечных изменений ткани.Кроме того, в группе, получавшей NTS, наблюдалась меньшая инфильтрация воспалительными клетками по сравнению с контрольной группой. В совокупности в этом отчете задокументирована потенциальная эффективность плазмотерапии в улучшении заживления ран слизистой оболочки носа [88].

8. Выводы

За последние десятилетия многие вмешательства в посттравматическое лечение заживления слизистой оболочки носа были усовершенствованы. С развитием медицины можно добиться благоприятного исхода заживления ран слизистой оболочки носовых пазух.Помимо консервативного лечения, стволовые клетки и другие стратегии регенеративной медицины предлагают большой потенциал в регенерации эпителия дыхательных путей. Тем не менее, необходимо провести тщательные клинические испытания, чтобы сделать их основными методами лечения.

Благодарности

Это исследование было поддержано исследовательским грантом Universiti Kebangsaan Malaysia (GUP-2017-007).

Сокращения

8
ECM внеклеточного матрикса
ESS эндоскопической хирургии
SNOT22 Sino-Носовые Результат испытания 22
TCM Традиционная китайская медицина
ZYD Чжу-Юань отвар
ПММА полиметилметакрилат-метакрилата
MSC мезенхимальных стволовых клеток
АЕС эпителиальных клеток альвеол
MSC-СМ MSC кондиционированной среды
SAEC SAEC Маленькая дыхательная эпителиальная ячейка
HGF Гепатоцит фактор роста
NGF фактор роста нерва
IGF-1 IGF-фактор роста 1
NTS Нетермическая плазменная обработка, т.е. Обсуждение
MMP MAMP Matrix-MetallOroteinase
ETI Толщина эпителиала
STI Sub-Epitleial Index

Взносы автора

J.С. составил и написал рукопись. АБС критически рассмотрел и оформил рукопись. РБХИ рецензировал и оформлял рукопись. Ю.Л. получил исследовательский грант, разработал и рассмотрел рукопись. Все авторы прочитали и согласились с опубликованной версией рукописи.

Финансирование

Финансовая поддержка в этом исследовании была предоставлена ​​Universiti Kebangsaan Malaysia через исследовательский грант (GUP-2017-007).

Конфликт интересов

Авторы подтверждают отсутствие финансовых, личных или профессиональных интересов, которые могли бы повлиять на статью.

Список литературы

1. Camelo-Nunes I.C., Solé D. Аллергический ринит: Показатели качества жизни. Дж. Брас. пневмол. 2010; 36: 124–133. doi: 10.1590/S1806-37132010000100017. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]2. Бахерт К., Паванкар Р., Чжан Л., Буннаг К., Фоккенс В.Дж., Хамилос Д.Л. ЗНАЧОК: Хронический риносинусит. World Allergy Organ, J. 2014;7:1–28. дои: 10.1186/1939-4551-7-25. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]3. Фоккенс В.Дж., Лунд В.Дж., Муллол Дж., Бахерт К., Алобид И., Baroody F., Georgalas C. EPOS 2012: Европейская позиция по риносинуситу и назальным полипам 2012. Резюме для оториноларингологов. Ринология. 2012; 50:1–12. doi: 10.4193/Rhino50E2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]4. Ширас Дж.А. Комплексное исследование осложнений эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Междунар. J. Оториноларингол. Хирургия головы и шеи. 2017;3:472. doi: 10.18203/issn.2454-5929.ijohns20172008. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]5. Топдаг М., Кара А., Конюк Э., Демир Н., Озтюрк М., Джалыскан С., Исери М.Заживляющие эффекты аутологичных слизистых трансплантатов при экспериментально поврежденных верхнечелюстных пазухах кроликов. клин. Эксп. Оториноларингол. 2016;9:44–50. doi: 10.21053/генеральный директор.2016.9.1.44. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]6. Сингх С., Янг А., Макнот К.-Э. Физиология заживления ран. Хирургия (Оксфорд) 2017; 35: 473–477. doi: 10.1016/j.mpsur.2017.06.004. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 7. Ян Ю., Гордон В.М., Ван Д.Ю. Восстановление и ремоделирование эпителия носа при физических травмах, инфекциях и воспалительных заболеваниях.Курс. мнение Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2013;21:263–270. doi: 10.1097/MOO.0b013e32835f80a0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]8. Watelet J.-B., Bachert C., Gevaert P., Van Cauwenberge P. Заживление ран слизистой оболочки носа и околоносовых пазух: обзор. Являюсь. Дж. Ринол. 2002; 16:77–84. doi: 10.1177/194589240201600202. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]9. Pajic-Penavi I. Эндоскопические наблюдения за заживлением ран. В: Янку С., редактор. Достижения в эндоскопической хирургии. ИнТех; Лондон, Великобритания: 2011. стр. 425–431.[Google Академия] 10. Чой К.Ю., Чо С.В., Чой Дж.Дж., Чжан Ю.Л., Ким Д.В., Хан Д.Х., Вон Т.Б. Заживление слизистой оболочки носовой перегородки в экспериментальной модели кролика с повреждением слизистой оболочки. Мировой Дж. Оториноларингол. Шея Surg. 2017;3:17–23. doi: 10.1016/j.wjorl.2017.02.004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]11. Халмуратова Р., Ким Д.В., Чон С.-Ю. Влияние дексаметазона на заживление ран слизистой оболочки перегородки у крыс. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2011;25:e112–e116. doi: 10.2500/ajra.2011.25.3595. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 12. Сюй Г., Цзян Х., Ли Х., Ши Дж., Чен Х. Стадии переходного течения слизистой оболочки носа после функциональной эндоскопической хирургии околоносовых пазух и их клинические показания. J. Оториноларингол. Относ. Спец. 2008; 70: 118–123. doi: 10.1159/000114535. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 13. Пант Х. Гемостаз в эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Отоларингол. клин. Север Ам. 2016; 49: 655–676. doi: 10.1016/j.otc.2016.03.011. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 14. Джэ Ю.Л., Сын В.L. Профилактика образования латеральных синехий после эндоскопической хирургии пазух с применением силастика. Арка Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2007; 133: 776–779. [PubMed] [Google Scholar] 15. Бхандаркар Н.Д., Саттер Н.Б., Кеннеди Д.В., Смит Т.Л. Остеит при хроническом риносинусите: обзор литературы. Междунар. Форум. Аллергия Ринол. 2012;3:355–363. doi: 10.1002/alr.21118. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 16. Пандир В., Пандир Дж., Ланкастер Г., Баер С., Киркланд П., Корнет М., Фоккенс В. Дж. Роль кортикостероидов в функциональной эндоскопической хирургии носовых пазух: систематический обзор и метаанализ.Ринология. 2016; 54:3–19. doi: 10.4193/Rhin15.079. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 17. Джориссен М., Бахерт К. Влияние кортикостероидов на заживление ран после эндоскопической хирургии пазух. Ринология. 2009;47:280. doi: 10.4193/Rhin08.227. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 18. Райт Э.Д., Агравал С. Влияние периоперационных системных стероидов на хирургические результаты у пациентов с хроническим риносинуситом с полипозом: оценка с помощью новой системы оценки периоперационной эндоскопии пазух (POSE). Ларингоскоп.2007; 117:1–28. doi: 10.1097/MLG.0b013e31814842f8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 19. Роджита М., Самал С., Прадхан П., Венкатачалам В.П. Сравнение стероидов и итраконазола для предотвращения рецидивов аллергического грибкового риносинусита: рандомизированное контролируемое исследование. Дж. Клин. Диагн. Рез. 2017; 11: MC01–MC03. doi: 10.7860/JCDR/2017/23488.9610. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]20. Савацубаси М., Мураками Д., Комунэ С. Антибиотикотерапия хронического риносинусита после эндоскопической операции: как долго следует назначать макролидные антибиотики? Междунар.Дж. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2014;4:44. [Google Академия] 21. Jiang R.S., Liang K.L., Yang K.Y., Shiao J.Y., Su M.C., Hsin CH, Lin J.F. Послеоперационная антибиотикотерапия после функциональной эндоскопической хирургии пазух. Являюсь. Дж. Ринол. 2008; 22: 608–612. doi: 10.2500/ajr.2008.22.3241. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 22. Лян К.Л., Су Ю.С., Цай С.С., Линь Дж.С., Цзян Р.С., Су М.С., Лян К.Л., Су Ю.С., Цай С.С., Лин Дж.С. и др. Послеоперационный уход с использованием китайской фитотерапии или амоксициллина после функциональной эндоскопической хирургии носовых пазух: рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование.Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2011;25:170–175. doi: 10.2500/ajra.2011.25.3610. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 23. Албу С., Лукачу Р. Профилактическое назначение антибиотиков при эндоскопической хирургии околоносовых пазух: краткое последующее исследование. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2010; 24:306–309. doi: 10.2500/ajra.2010.24.3475. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 24. Лук Л.Дж., ДельГаудио Дж.М. Местная лекарственная терапия хронического риносинусита. Отоларингол. клин. Н. Ам. 2017; 50: 533–543. doi: 10.1016/j.otc.2017.01.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 25.Снидвонгс К., Калиш Л., Сакс Р., Крейг Дж. К., Харви Р. Дж. Топический стероид при хроническом риносинусите без полипов. В: Калиш Л., изд. Кокрановская база данных систематических обзоров. Джон Уайли и сыновья, ООО; Чичестер, Великобритания: 2011. [PubMed] [Google Scholar]26. Нойбауэр П.Д., Швам З.Г., Манес Р.П. Сравнение интраназального спрея флутиказона, распылителя будесонида и будесонида респул у пациентов с хроническим риносинуситом с полипозом после эндоскопической операции на пазухах. Междунар. Форум Аллергия Ринол.2016;6:233–237. doi: 10.1002/alr.21688. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 27. Найман Э., Хусс Ф., Найман Т., Юнкер Дж., Крац Г. Гиалуроновая кислота, важный фактор ранозаживляющих свойств амниотической жидкости: исследования in vitro реэпителизации кожных ран человека. Дж. Пласт. Surg. Ручной сург. 2013;47:89–92. doi: 10.3109/2000656X.2012.733169. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 28. Казале М. Новые перспективы применения гиалуроновой кислоты при хронических воспалительных заболеваниях верхних дыхательных путей. Глоб. Дж.Отоларингол. 2015;1:555558. [Google Академия] 29. Эркан А.Н., Чакмак О., Кочер Н.Е., Ылмаз И. Влияние фибринового клея на ткани носовой перегородки. Ларингоскоп. 2007; 117: 491–496. doi: 10.1097/MLG.0b013e31802dc5bc. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 30. Ю М.С., Кан С.-Х., Ким Б.-Х., Лим Д.Дж. Влияние аэрозольного фибринового герметика на гемостаз и заживление ран после эндоскопической хирургии носовых пазух: проспективное рандомизированное исследование. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2014;28:335–340. doi: 10.2500/ajra.2014.28.4047. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 31.Мэсси С.Дж., Сингх А. Достижения в области рассасывающихся биоматериалов и назальных тампонов. Отоларингол. клин. Север Ам. 2017;50:545–563. doi: 10.1016/j.otc.2017.01.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 32. Wang J., Cai C., Wang S. Merocel в сравнении с Nasopore для тампонирования носа: метаанализ рандомизированных контролируемых исследований. ПЛОС ОДИН. 2014;9:e93959. doi: 10.1371/journal.pone.0093959. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]33. Tom L.W.C., Palasti S., Potsic W.P., Handler S.D., Wetmore R.F. Влияние стентов из желатиновой пленки на средний носовой ход.Являюсь. Дж. Ринол. 1997; 11: 229–232. doi: 10.2500/105065897781751884. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 34. Ви Дж. Х., Ли Ч. Х., Ри К. С., Ким Дж.-В. Сравнение тампонирования гелевой пеной и без тампонирования после эндоскопической операции на пазухах у одних и тех же пациентов. Евро. Арка Ото Рино Ларингол. 2012; 269:897–903. doi: 10.1007/s00405-011-1768-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 35. Berlucchi M., Castelnuovo P., Vincenzi A., Morra B., Pasquini E. Эндоскопические результаты резорбируемого тампонирования носа после функциональной эндоскопической хирургии околоносовых пазух: многоцентровое проспективное рандомизированное контролируемое исследование.Евро. Арка Ото Рино Ларингол. 2009; 266: 839–845. doi: 10.1007/s00405-008-0841-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 36. Миллер Р.С., Стюард Д.Л., Тами Т.А., Силларс М.Дж., Сейден А.М., Шете М., Велге Дж. Клинические эффекты назальной повязки на основе эфира гиалуроновой кислоты (мерогель) на интраназальное заживление ран после функциональной эндоскопической хирургии пазух. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2003; 128: 862–869. doi: 10.1016/S0194-5998(03)00460-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 37. Вормолд П.Дж., Бустред Р.Н., Ле Т., Hawke L., Sacks R. Проспективное слепое рандомизированное контролируемое исследование использования назальных тампонов с гиалуроновой кислотой у пациентов после эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Являюсь. Дж. Ринол. 2006; 20:7–10. doi: 10.1177/194589240602000102. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 38. Франклин Дж. Х., Райт Э. Д. Рандомизированное контролируемое исследование рассасывающейся назальной тампоны на результаты хирургического лечения риносинусита с полипозом. Являюсь. Дж. Ринол. 2007; 21: 214–217. doi: 10.2500/ajr.2007.21.3011. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 39.Киммельман С. П., Эдельштейн Д. Р., Ченг Х. Дж. Синус сепрагеля (Hylan B) в качестве послеоперационной повязки для эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2001; 125: 603–608. doi: 10.1067/mhn.2001.120229. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]40. Ши Р., Чжоу Дж., Ван Б., Ву Ц., Шен Ю., Ван П., Шу X.Z. Клинические результаты новой назальной повязки с гиалуроновой кислотой: проспективное рандомизированное контролируемое исследование. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2013; 27:71–76. doi: 10.2500/ajra.2013.27.3833. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]41.Вайман М., Шламкович Н., Эвиатар Э., Сегал С. Использование фибринового клея в качестве кровоостанавливающего средства в эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Аня. Отол. Ринол. Ларингол. 2005; 114: 237–241. doi: 10.1177/000348940511400313. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]42. Нгок Ха Т., Валентайн Р., Моратти С., Робинсон С., Хэнтон Л., Вормолд П.-Дж. Слепое рандомизированное контролируемое исследование по оценке эффективности геля хитозана при устьевом стенозе после эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Междунар. Форум. Аллергия Ринол. 2013;3:573–580. doi: 10.1002/алр.21136. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]43. Валентайн Р., Атанасиадис Т., Моратти С., Хэнтон Л., Робинсон С., Вормолд П.-Дж. Эффективность нового геля хитозана в отношении гемостаза и заживления ран после эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Являюсь. Дж. Ринол. Аллергия. 2010;24:70–75. doi: 10.2500/ajra.2010.24.3422. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]44. Аль-Шейх С., Муддайя А., Ли Р.Дж., Бхутта М.Ф. Порошок окисленной целлюлозы для гемостаза после операции на пазухах: экспериментальное рандомизированное исследование. Дж. Ларингол. Отол. 2014; 128:709–713.doi: 10.1017/S0022215114001303. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]45. Бейя Дж.А., Ротенберг Б.В. Сравнение очищенного растительного полисахарида (HemoStase) с желатин-тромбиновой матрицей (FloSeal) при остановке кровотечения во время операции на околоносовых пазухах: рандомизированное контролируемое исследование. Аня. Отол. Ринол. Ларингол. 2011; 120:495–498. doi: 10.1177/000348941112000801. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]46. Антисдел Дж.Л., Мейер А., Комер Б., Джанг Д., Гуррола Дж., Хаббаз Э., Коунтакис С. Модель сравнения продуктов в отоларингологии: анализ эквивалентности рассасывающихся гемостатических средств после эндоскопической хирургии пазух.Ларингоскоп. 2016;126:S5–S13. doi: 10.1002/lary.25678. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]47. Kastl K.G., Reichert M., Scheithauer M.O., Sommer F., Kisser U., Braun T., Leunig A. Комфорт пациента после FESS и упаковки Nasopore ® , двойное слепое, проспективное, рандомизированное исследование. Ринология. 2014;52:60–65. doi: 10.4193/Rhin13.020. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]48. Сонг К.Дж., Ли Х.М., Ли Э.Дж., Квон Дж.Х., Джо К.Х., Ким К.-С. Антиадгезионный эффект термочувствительного полоксамера, применяемого после удаления тампона из носа при эндоскопической хирургии околоносовых пазух: рандомизированное многоцентровое клиническое исследование.клин. Отоларингол. 2013; 38: 225–230. doi: 10.1111/coa.12117. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]49. Оттавиано Г., Бландамура С., Фасанаро Э., Фаваретто Н., Андреа Л., Джакомелли Л., Бартолини А., Стафьери А. Назальные аппликации сахарозы октасульфата серебра и заживление ран после эндоскопической хирургии носовых пазух: проспективный, рандомизированный, двойной -слепое плацебо-контролируемое исследование. Являюсь. Дж. Отоларингол. Голова Шея Мед. Surg. 2015; 36: 625–631. doi: 10.1016/j.amjoto.2015.02.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]50.Адриансен Г.Ф.Дж.П.М., Лим К.Х., Фоккенс В.Дж. Безопасность и эффективность биорассасывающейся повязки с флутиказона пропионатом, выделяющей пазухи, в послеоперационном ведении эндоскопической хирургии пазух: рандомизированное клиническое исследование. Междунар. Форум. Аллергия Ринол. 2017;7:813–820. doi: 10.1002/alr.21963. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]51. Гжесковяк Б., Вержовска М., Валорек Р., Середика-Бурдук М., Вавжиняк К., Бурдук П.К. Рассасывающаяся назальная тампона, пропитанная стероидами и антибиотиками, для заживления ран после эндоскопической хирургии носовых пазух: рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование.Браз. J. Оториноларингол. 2018; 85: 473–480. doi: 10.1016/j.bjorl.2018.04.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]52. Guo R., Cantery PH, Ernst E. Травяные лекарственные средства для лечения риносинусита: систематический обзор. Отоларингол. Шея Surg. 2006; 135: 496–506. doi: 10.1016/j.otohns.2006.06.1254. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]53. Хо Э.Ю., Кэди К.А., Роблес Дж.С. Тематическое исследование подъема, американизации и распада Нети Пот как интегративной медицины в дискурсе американских СМИ. Община здоровья.2016;31:1181–1192. doi: 10.1080/10410236.2015.1047145. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]54. Растоги С., Растоги Р., Растоги Р. Применение Джаланети при остром риносинусите. Индийский Дж. Традит. Знай. 2007; 6: 324–327. [Google Академия]55. Гиотакис А.И., Кароу Э.М., Шайтхауэр М.О., Вебер Р., Рихельманн Х. Промывания солевым раствором после операции на носовых пазухах: контролируемое однократное слепое рандомизированное исследование. Ринология. 2016;54:302–310. doi: 10.4193/Rhin16.026. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]56. Цзин Л., Chunquan Z., Hai L., Chen Y., Siyuan G., Yi W., Honggang D. Эффект отвара Zhu-yuan у пациентов с хроническим риносинуситом после функциональной эндоскопической хирургии пазух. Дж. Традит. Подбородок. Мед. 2018; 38:83–88. doi: 10.1016/j.jtcm.2018.02.003. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 57. Хенач Д., Весселинг Ф., Кросс К.В., Стокроос Р.Дж. Мед и продукты пчеловодства в оториноларингологии: описательный обзор. клин. Отоларингол. 2016;41:519–531. doi: 10.1111/coa.12557. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]58. Эль-Анвар М.В., Абдельмонем С., Абдельсамеа А.А., Альшавадфи М., Эль-Кашиши К. Влияние прополиса на заживление поврежденной слизистой оболочки носа: экспериментальное исследование. Междунар. Арка Оториноларингол. 2016;20:222–225. doi: 10.1055/s-0036-1579664. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]59. Кинис В., Озбай М., Акдаг М., Алабалик У., Гул А., Йылмаз Б., Топчу И. Влияние фенетилового эфира кофейной кислоты на заживление ран слизистой оболочки носа у крыс: экспериментальное исследование. Являюсь. Дж. Отоларингол. 2014; 35: 482–486. дои: 10.1016/j.amjoto.2014.02.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 61. Моханти С., Саху С.К. Куркумин и его препараты для местного применения для заживления ран. Препарат Дисков. Сегодня. 2017; 22:1582–1592. doi: 10.1016/j.drudis.2017.07.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]62. Эмироглу Г., Озергин Джошкун З., Калкан Ю., Челеби Эрдиванлы О., Тумкая Л., Терзи С., Дурсун Э. Влияние куркумина на заживление ран в крысиной модели травмы слизистой оболочки носа. Эвид. Дополнение на основе. Альтерн. Мед. 2017;2017:9452392.doi: 10.1155/2017/9452392. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]63. Лин Ю.-К., Граховац Т., О С.Дж., Иерачи М., Рубин Д.П., Марра К.Г. Оценка многослойного листа стволовых клеток, полученных из жировой ткани, в модели заживления ран на всю толщину. Акта Биоматер. 2013;9:5243–5250. doi: 10.1016/j.actbio.2012.09.028. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]64. Нисида К., Ямато М., Хаясида Ю., Ватанабэ К., Маэда Н., Ватанабэ Х., Окано Т. Функциональные биоинженерные листовые трансплантаты эпителия роговицы из стволовых клеток роговицы, выращенных ex vivo на поверхности чувствительных к температуре клеточных культур.Трансплантация. 2004; 77: 379–385. doi: 10.1097/01.TP.0000110320.45678.30. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 65. Кавузлу А., Татар Э., Карагёз Т., Пынарлы Ф.А., Татар И., Байыр О., Коркмаз М.Х. Влияние стволовых клеток на регенерацию ресничек поврежденного синоназального эпителия кролика. Евро. Арка Ото Рино Ларингол. 2017; 274:3057–3064. doi: 10.1007/s00405-017-4595-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]66. Кардия Э., Чинг Э.С., Яхая Б.Х. Доставка эпителиальных клеток дыхательных путей на основе аэрозоля улучшает регенерацию и восстановление дыхательных путей.Дж. Тиссью Инж. Реген. Мед. 2018;12:e995–e1007. doi: 10.1002/term.2421. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]67. Кардиа Э., Мохамед Р., Яхая Б.Х. Стимулирующие выделения эпителиальных клеток дыхательных путей ускоряют раннее восстановление эпителия трахеи. науч. Отчет 2017; 7:11732. doi: 10.1038/s41598-017-11992-6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]68. Китала Д., Кавецки М., Клама-Барыла А., Лабусь В., Краут М., Глик Дж., Новак М. Аллогенные и аутологические кожные трансплантаты в лечении пациентов с ожоговыми травмами: ретроспективный открытый анализ клиническое исследование с сопоставлением пар.Доп. клин. Эксп. Мед. 2016;25:923–929. doi: 10.17219/acem/61961. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]70. Флинн С., Росс К.А., Хэннон С.П., Ясуи Ю., Ньюман Х., Муравски К.Д., Кеннеди Дж.Г. Аутологичная костно-хрящевая трансплантация при костно-хрящевых поражениях таранной кости. Стопа лодыжки Int. 2016; 37: 363–372. doi: 10.1177/1071100715620423. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]71. Куттен Дж.К., Макговерн Д., Хобсон С.М., Луффи С.А., Ниепонис А., Тобита К., Гилберт Т.В. Децеллюляризованный внеклеточный матрикс трахеи поддерживает миграцию, дифференцировку и функцию эпителия.Ткань англ. Часть А. 2015; 21:75–84. doi: 10.1089/ten.tea.2014.0089. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]72. Кумар П., Врана Н.Э., Гаеммагами А.М. Перспективы и проблемы инженерии функционального респираторного эпителия для приложений in vitro и in vivo. Микрофиз. Сист. 2017; 1:1–20. doi: 10.21037/mps.2017.09.01. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 73. О’Лири С., Кавана Б., Унгер Р.Э., Киркпатрик С.Дж., О’Ди С., О’Брайен Ф.Дж., Крайан С.А. Разработка тканеинженерной модели трахеобронхиального эпителия с использованием двухслойного коллагеново-гиалуронатного каркаса.Биоматериалы. 2016; 85: 111–127. doi: 10.1016/j.biomaterials.2016.01.065. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]74. Идрус Р.Б.Х., Норуддин Н.А.А., Ченг Ч.Х., Локанатан Ю., Саим А.Б. Титановая сетка с расширенными клетками респираторного эпителия при реконструкции трахеи. Дж. Биоматер. Ткань англ. 2014; 4: 367–372. doi: 10.1166/jbt.2014.1177. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 75. Рабиатул А.Р., Локанатан Ю., Рохайна С.М., Чоудхури С.Р., Аминуддин Б.С., Рузима Б.Х.И. Модификация поверхности нановолокон из электроформованного полиметилметакрилата (ПММА) для разработки модели респираторного эпителия in vitro.Дж. Биоматер. науч. Полим. Эд. 2015;26:1297–1311. doi: 10.1080/09205063.2015.1088183. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]76. Чоудхури С.Р., Аминуддин Б.С., Рузима Б.Х.И. Влияние добавления среды, кондиционирующей дермальные фибробласты, на размножение кератиноцитов за счет усиления прикрепления. Индийский J. Exp. биол. 2012;50:332–339. [PubMed] [Google Scholar]77. Рохайна С., Йогесваран Л., Рабиатул Адавия Р., Чоудхури С., Аминуддин Б., Русзимах Б. Влияние среды, кондиционированной носовыми фибробластами, на рану in vitro.Реген. Рез. 2014;3:88–89. [Google Академия] 78. Duan H.-G., Ji F., Zheng C.-Q., Li J., Wang J. Кондиционированная среда из мезенхимальных стволовых клеток пуповины улучшает повреждение слизистой оболочки носа радиацией. Биотехнолог. лат. 2018;40:999–1007. doi: 10.1007/s10529-018-2553-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]79. Халим Н.С., Айзат В.М., Яхая Б.Х. Влияние факторов, секретируемых мезенхимальными стволовыми клетками, на восстановление эпителия дыхательных путей. Реген. Мед. 2019;14:15–31. doi: 10.2217/rme-2018-0020. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]80.Акрам К.М., Самад С., Спитери М.А., Форсайт Н.Р. Мезенхимальные стволовые клетки способствуют репарации ран альвеолярными эпителиальными клетками in vitro посредством различных миграционных и паракринных механизмов. Дыхание Рез. 2013;14:9. дои: 10.1186/1465-9921-14-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]81. Накамура Т., Мидзуно С. Открытие фактора роста гепатоцитов (HGF) и его значение для клеточной биологии, наук о жизни и клинической медицины. проц. Япония. акад. сер. Б физ. биол. науч. 2010; 86: 588–610. дои: 10.2183/пяб.86.588. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]82. Чен М., Гуан М., Ли Дж., Ван Х., Ян Б. Влияние фактора роста гепатоцитов на заживление ран слизистой оболочки верхнечелюстной пазухи кролика. Дж. Отоларингол. Хирургия головы и шеи. 2012; 41: 253–258. [PubMed] [Google Scholar]83. Нитья М., Сугуна Л., Роуз К. Влияние фактора роста нервов на ранние реакции в процессе заживления ран. Биохим. Биофиз. Акта. 2003; 1620: 25–31. doi: 10.1016/S0304-4165(02)00501-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]84.Тан Л., Хациродос Н., Вормолд П. Влияние фактора роста нервов и фактора роста кератиноцитов на заживление ран слизистой оболочки пазух. Восстановление ран. 2008; 16: 108–116. doi: 10.1111/j.1524-475X.2007.00323.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]85. Puche JE, Castilla-Cortázar I. Условия дефицита инсулиноподобного фактора роста-I (IGF-I) человека. Дж. Пер. Мед. 2012;10:224. doi: 10.1186/1479-5876-10-224. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]86. Адамс Д.Х., Макинтош Д., Вормолд П.Дж., Коуин А.Дж. Дифференциальные эффекты инсулиноподобных факторов роста на заживление царапин в клетках респираторного эпителия. Являюсь. Дж. Ринол. 2006; 20: 652–657. doi: 10.2500/ajr.2006.20.2916. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]87. Раджапакса С.П., Коуин А., Адамс Д., Вормолд П.-Дж. Влияние назального тампона на основе гиалуроновой кислоты на заживление слизистой в модели синусита у овец. Являюсь. Дж. Ринол. 2005; 19: 572–576. doi: 10.1177/194589240501

7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]88. Вон Х.Р., Кан С.У., Ким Х.J., Jang J.Y., Shin Y.S., Kim C.H. Раствор, обработанный нетермической плазмой, с потенциалом в качестве нового терапевтического средства для регенерации слизистой оболочки носа. науч. Отчет 2018; 8: 1–11. doi: 10.1038/s41598-018-32077-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Лечение хронического синусита | informhealth.org

Чонг Л.И., Хед К., Хопкинс С., Филпотт С., Бертон М.Дж., Шильдер А.Г. Различные виды интраназальных стероидов при хроническом риносинусите. Кокрановская система базы данных, ред. 2016 г.; (4): CD011993.

Chong LY, Head K, Hopkins C, Philpott C, Glew S, Scadding G et al. Орошение солевым раствором при хроническом риносинусите. Кокрановская система базы данных, ред. 2016 г.; (4): CD011995.

Чонг Л.И., Хед К., Хопкинс С., Филпотт С., Шилдер А.Г., Бертон М.Дж. Интраназальные стероиды по сравнению с плацебо или отсутствием вмешательства при хроническом риносинусите. Кокрановская система базы данных, ред. 2016 г.; (4): CD011996.

Чонг Л.И., Пиромчай П., Шарп С., Снидвонгс К., Филпотт С., Хопкинс С. и другие. Биопрепараты при хроническом риносинусите.Кокрановская система базы данных, ред. 2020; (2): CD013513.

Немецкое общество по оказанию медицинской помощи и медицинской помощи (DEGAM). Риносинусит (S2k-Leitlinie). Регистрационный номер AWMF: 017-049 и 053-012. 2017.

Head K, Chong LY, Hopkins C, Philpott C, Burton MJ, Schilder AG. Кратковременный курс пероральных стероидов при хроническом риносинусите. Кокрановская система базы данных, ред. 2016 г.; (4): CD011991.

Head K, Chong LY, Hopkins C, Philpott C, Schilder AG, Burton MJ.Короткий курс пероральных стероидов в качестве дополнительной терапии хронического риносинусита. Кокрановская система базы данных, ред. 2016 г.; (4): CD011992.

Head K, Chong LY, Piromchai P, Hopkins C, Philpott C, Schilder AG et al. Системные и местные антибиотики при хроническом риносинусите. Кокрановская система базы данных, ред. 2016 г.; (4): CD011994.

Хонг С.Дж., Цанг А.С., Куинн Дж.Г., Бонапарт Дж.П., Стивенс А., Килти С.Дж. Терапия моноклональными антителами против IgE для лечения хронического риносинусита: систематический обзор. системная версия 2015; 4: 166.

Институт качества и эффективности в здравоохранении (IQWiG, Германия). Дупилумаб при хроническом риносинусите с полипозом носа – оценка эффективности в соответствии с § 35a SGB V. Оценка досье; Комиссия А19-96.

Kanjanawasee D, Seresirikachorn K, Chitsuthipakorn W, Snidvongs K. Промывание носа гипертоническим солевым раствором по сравнению с изотоническим солевым раствором: систематический обзор и метаанализ. Am J Rhinol Allergy 2018; 32(4): 269-279.

Лассо А., Масудиан П., Куинн Дж. Г., Коуэн Дж., Лабаджян В., Бонапарт Дж. П. и др.Длительное применение низких доз макролидов при хроническом риносинусите у взрослых — систематический обзор литературы. Клин Отоларингол 2017; 42(3): 637-650.

Liu L, Pan M, Li Y, Tan G, Yang Y. Эффективность промывания носа гипертоническим раствором при хроническом риносинусите: систематический обзор и метаанализ. Браз Дж. Оториноларингол 2020; 86(5): 639-646.

Rimmer J, Fokkens W, Chong LY, Hopkins C. Сравнение хирургических и медицинских вмешательств при хроническом риносинусите с полипами носа. Кокрановская система базы данных, ред. 2014 г.; (12): CD006991.

Zhang Y, Wang C, Huang Y, Lou H, Zhang L. Эффективность краткосрочной системной терапии кортикостероидами при хроническом риносинусите с назальными полипами: метаанализ рандомизированных контролируемых испытаний и систематический обзор. Am J Rhinol Allergy 2019; 33(5): 567-576.

Медицинская информация IQWiG написана с целью помочь людям понять преимущества и недостатки основных вариантов лечения и медицинских услуг.

Поскольку IQWiG является немецким институтом, часть представленной здесь информации относится к системе здравоохранения Германии.Пригодность любого из описанных вариантов в индивидуальном случае можно определить, поговорив с врачом. informhealth.org может оказать поддержку в беседах с врачами и другими медицинскими работниками, но не может заменить их. Мы не предлагаем индивидуальные консультации.

Наша информация основана на результатах высококачественных исследований. Он написан группой специалистов в области здравоохранения, ученых и редакторов и проверен внешними экспертами. Вы можете найти подробное описание того, как наша медицинская информация создается и обновляется в наших методах.

Эритромицин уменьшает воспаление носа, ингибируя выработку иммуноглобулина, ослабляя секрецию слизи и модулируя экспрессию цитокинов

Субъекты с риносинуситом

Ткани придаточных пазух носа были получены от пациентов после эндоскопической хирургии околоносовых пазух. Контрольные ткани были взяты у пациентов без риносинусита, но перенесших операцию на носовой перегородке или носовых раковинах. Диагноз СВК был основан на типичных симптомах в течение 12 недель, а также результатах эндоскопии и компьютерной томографии (КТ) в соответствии с критериями Европейского позиционного документа по риносинуситу и полипам носа 2020 1 .Зарегистрированные субъекты перенесли операцию на носовых пазухах из-за неэффективности лечения. Все пациенты с ХРС перед операцией получали КТ. КТ-изображения были классифицированы в соответствии с системой стадирования Лунда и Маккея с общим диапазоном баллов от 0 до 24 24 . Диагноз АР устанавливался у пациентов на основании специфических тестов IgE и анамнеза не менее 2 лет на наличие аллергических симптомов при контакте с аллергенами и раздражителями. Зарегистрированные субъекты были разделены на три группы: контрольная, группы CRS без аллергического ринита (CRSwoAR) и группы CRS с аллергическим ринитом (CRSwAR).В этом исследовании мы не набирали пациентов с астмой.

Гистологическая характеристика синоназальных тканей человека

Ткани фиксировали забуференным формалином, заливали в парафин и разрезали на срезы. Окрашивание гематоксилином и эозином (H&E) и иммунохимическое (IHC) окрашивание проводили для оценки гистологических особенностей, изменений в экспрессии белка в плотных и слипчивых контактах и ​​продукции слизи. Первичными антителами для оценки межклеточного соединения эпителия были клаудин-1 (каталожный №51–9000, поликлональное антитело, Thermo Fisher, IL, USA) и е-кадгерин (каталожный номер GTX100443, GeneTex, Irvine, CA, USA). Окрашивание периодической кислотой по Шиффу (PAS) (ScyTek Laboratories, Inc., Логан, Юта, США) использовали для оценки продукции слизи.

Экспрессия воспалительных цитокинов/хемокинов в тканях синоназа человека

Ткани слизистой оболочки носа (100 мг/образец) измельчали ​​и гомогенизировали с буфером для экстракции белка (Thermo Scientific, Рокфорд, Иллинойс, США). Экспрессию цитокинов IL-4, IL-5, IL-6, IL-10, IL-17A и IFN-γ в гомогенатах тканей носа (50 мкл, концентрация белка 5 мг/мл) определяли с использованием Bio-Plex. ®.

Вестерн-блоттинг тканей придаточных пазух носа человека

Равные количества белков слизистой оболочки носа (40 мкг), экстрагированных вышеупомянутым методом, подвергали электрическому разделению в 10% полиакриламидном геле, а затем переносили на поливинилидендифторидную мембрану. Из-за ограниченного количества носовой ткани, полученной от экспериментальных мышей, мы разрезали поливинилидендифторидную мембрану перед блокированием и инкубацией с индивидуальными первичными антителами. Мембрану инкубировали со следующими первичными антителами: клаудином-1 (1:1000, каталожный №E-AB-30939, Elabscience, Хьюстон, США), e-кадгерин (1:2000, каталожный № GTX100443, GeneTex, Ирвин, Калифорния, США), MAC5AC (1:100, клон № 2-11M1, abcam, Кембридж, Великобритания) и GAPDH (1:5000, каталожный № 60004-1-1 g, Proteintech, Розмонт, США). На следующий день мембраны инкубировали со вторичным антителом, конъюгированным с HRP, с последующим электрохемилюминесцентным обнаружением (Millipore Billerica, MA, USA). Плотность каждой белковой полосы сканировали с использованием программного обеспечения ImageJ, версия 1.46r (Национальный институт здоровья, Бетесда, Мэриленд) и сравнивали с помощью денситометрии.

Мышиные модели аллергического ринита и хронического риносинусита

Самок мышей BALB/c в возрасте 6–8 недель разделили на 3 группы: контроль, CRSwoAR и CRSwAR. В дни 0, 7 и 14 мышей AR сенсибилизировали внутрибрюшинной инъекцией 4 мкг клеща домашней пыли (HDM, Indoor Biotechnologies Ltd, Кардифф, Великобритания), смешанного с 40 мкг гелевого адъюванта гидроксида алюминия (Invitrogen, Сан-Диего, Калифорния). ). С 22 по 26 день животным вводили интраназальное введение 4 мкг HDM. Мыши без AR получали фиктивную сенсибилизацию.Мышам сделали операцию на носу, чтобы вызвать хронический риносинусит. Вкратце, под анестезией над головой мыши сделали 1-сантиметровый разрез, а в черепе просверлили 3-миллиметровое отверстие, чтобы добраться до носовой полости с одной стороны. Тампоны Gelfoam (Johnson & Johnson, Gargrave, Skipton, UK) вводили в полость носа, чтобы вызвать местное воспаление. В конце процедуры раны скальпа аппроксимировали швами. С помощью протоколов экспериментальные AR и CRS можно было надежно индуцировать с помощью гистологических данных и биомаркеров в нашем предыдущем исследовании 25 .Мышей умерщвляли на 27-й день. Мышиный риносинусит, продолжающийся  > 4 недель, рассматривался в литературе как модель хронического заболевания 26 .

Образцы крови, слизистой оболочки носа и назальной лимфоидной ткани (NALT) были взяты для анализа. Сыворотки использовали для измерения уровней IgE и IgG с использованием коммерческих наборов ELISA IgE и IgG мыши в соответствии с инструкциями производителя (BD Pharmingen, Сан-Диего, Калифорния, США). Срезы ткани носа мышей исследовали после окрашивания H&E и IHC, включая следующие: PAS (ScyTek Laboratories, Inc., Логан, Юта, США), клаудин-1 (51-9000, Thermo Fisher Scientific Inc., Иллинойс, США) и е-кадгерин (каталожный номер GTX100443, GeneTex, Ирвин, Калифорния, США). Тканевую эозинофилию определяли путем подсчета количества эозинофилов в 5 полях зрения с большим увеличением (увеличение × 400) 27 . Затем слизистую оболочку носа и NALT измельчали ​​и гомогенизировали с буфером для экстракции белка (Thermo Scientific, Уолтем, Массачусетс, США). Белковые экстракты слизистой оболочки носа использовали для определения экспрессии белков клаудина-1, е-кадгерина, MUC5AC и GAPDH (первичные антитела, поставляемые Elabscience, Хьюстон, США; BD Pharmingen, Сан-Диего, Калифорния, США; GeneTex, Ирвин, Калифорния). , США; abcam, Кембридж, Великобритания, и Proteintech, Роузмонт, США).Белки, извлеченные из NALT (50 мкг, концентрация 1 мг/мл), использовали для определения с помощью Bio-Plex® (Bio-Rad, Hercules, CA, USA) локальных уровней цитокинов (IL-4, IL-5, IL-5). 6, IL-10, IL-17A и IFN-γ).

Лечение эритромицином и дексаметазоном мышей CRS

Мыши CRSsAR (N = 43) и мыши CRSwAR (N = 58) получали с 23 по 25 день внутрибрюшинные инъекции либо дексаметазона 1 мг/кг (Dex), либо эритромицина (EM, 0,75 7,5 или 75 мг/кг).

Статистический анализ

Критерий хи-квадрат использовался для сравнения категорийных данных.U-критерий Манна-Уитни использовался для сравнения непрерывных данных между двумя группами. Критерий Крускала-Уоллиса использовался для сравнения 3 и более групп. Затем тест множественных сравнений Данна был использован для ретроспективного изучения различий между группами. Статистическая значимость была установлена ​​на уровне P < 0,05. Статистический анализ проводили с использованием GraphPad Prism 9.2.0 для Mac (GraphPad Software, Сан-Диего, Калифорния, США) и IBM SPSS 20.0 (IBM Corp. Armonk, NY, USA).

Этика

Наблюдательный совет Тайчжунского госпиталя для ветеранов одобрил настоящее исследование на людях (CE17143A).Исследование проводилось в соответствии с соответствующими руководящими принципами и правилами исследований на людях. Информационное согласие было получено от каждого субъекта исследования.

Протокол использования животных и экспериментальные процедуры были рассмотрены и одобрены Институциональным комитетом по уходу и использованию животных Главного госпиталя для ветеранов Тайчжуна (La-1071579). Все эксперименты проводились в соответствии с рекомендациями руководства. О текущем исследовании сообщается в соответствии с рекомендациями ARRIVE 28 .

Ринит, назальная аллергия, сенная лихорадка | AAFA.org

Ринит (носовая аллергия)

Что такое ринит?

Слово ринит означает «воспаление носа». Нос производит жидкость, называемую слизью. Обычно эта жидкость жидкая и прозрачная. Это помогает предотвратить попадание пыли, мусора и аллергенов в легкие. Слизь задерживает такие частицы, как пыль и пыльца, а также бактерии и вирусы.

Слизь обычно стекает по задней стенке горла.Вы не знаете об этом большую часть времени, потому что это небольшое количество и тонкое. При раздражении носа может выделяться больше слизи, которая становится густой и бледно-желтой. Слизь может начать течь как из передней, так и из задней части носа. Вещества в слизи могут раздражать заднюю стенку горла и вызывать кашель. Постназальное затекание возникает, когда больше слизи стекает по задней стенке глотки.

Что вызывает ринит?

Раздражители или аллергены (вещества, вызывающие аллергическую реакцию) могут вызывать ринит.Клетки вашего тела реагируют на эти раздражители или аллергены, высвобождая гистамин  и другие химические вещества. Ринит часто является временным состоянием. У многих людей он проходит сам по себе через несколько дней. У других, особенно у аллергиков, ринит может стать хронической проблемой. Хронический означает, что он почти всегда присутствует или часто рецидивирует. Ринит может длиться от нескольких недель до нескольких месяцев при воздействии аллергена.

Какие бывают виды ринита?

Различают несколько видов ринита:

  • Аллергический ринит вызывается аллергией на вещества, называемые аллергенами.
  • Сезонный аллергический ринит иногда называют «сенной лихорадкой». Но у людей с сезонным аллергическим ринитом не обязательно должна быть лихорадка и контакт с сеном, чтобы развить это состояние. Это аллергическая реакция на пыльцу деревьев, трав и сорняков. Этот вид насморка возникает в основном весной и осенью, когда в воздухе находится пыльца деревьев, трав и сорняков.
  • Круглогодичный аллергический ринит вызывается аллергенами, присутствующими круглый год.Основными причинами этого типа ринита являются аллергии на пылевых клещей, плесень, перхоть животных и остатки тараканов.
  • Неаллергический ринит не вызывается аллергенами. Дым, химические вещества или другие раздражающие условия окружающей среды могут спровоцировать неаллергический ринит. Гормональные изменения, физические дефекты носа (например, искривление носовой перегородки) и чрезмерное использование спреев для носа также могут вызывать его. Иногда его вызывают лекарства. Часто причина этого вида ринита недостаточно изучена.Но это часто встречается у пациентов с неаллергической астмой. Симптомы схожи с симптомами аллергии.
  • Инфекционный ринит , возможно, является наиболее распространенным типом ринита. Он также известен как обычная простуда или инфекция верхних дыхательных путей (URI). Простуда возникает, когда вирус простуды оседает на слизистых оболочках носа и придаточных пазух носа и вызывает инфекцию.

Каковы симптомы ринита?

Симптомы ринита включают:

  • Зуд в носу и глазах
  • Чихание
  • Заложенность носа (застой)
  • Насморк
  • Слизь (мокрота) в горле (постназальный затек)

Это аллергия или простуда?

Иногда бывает трудно отличить аллергию от простуды.Существует более ста штаммов вирусов простуды. Каждый из них имеет тенденцию распространяться в определенное время года, поэтому вы можете принять простуду за сезонную аллергию. Аллергии возникают в одно и то же время каждый год и длятся до тех пор, пока аллерген находится в воздухе (обычно 2-3 недели на аллерген). Аллергия вызывает зуд в носу и глазах наряду с другими назальными симптомами. Простуда длится около одной недели и сопровождается меньшим зудом в носу и глазах.

Каковы методы лечения аллергического ринита?

Первый и лучший вариант – избегать контакта с веществами, вызывающими назальную аллергию (аллергены).Когда профилактики недостаточно, рассмотрите возможность использования безрецептурных или рецептурных лекарств:

  • Антигистаминные препараты принимаются внутрь или в виде назального спрея. Они могут облегчить чихание и зуд в носу и глазах. Они также уменьшают насморк и, в меньшей степени, заложенность носа.
  • Деконгестанты принимаются внутрь или в виде назального спрея или капель. Они помогают уменьшить слизистую оболочку носовых ходов, что уменьшает заложенность носа. Эти капли для носа и спреи следует принимать кратковременно.
  • Назальные кортикостероиды используются в форме назального спрея. Они уменьшают воспаление в носу и блокируют аллергические реакции. Они являются наиболее эффективным типом лекарств от аллергического ринита, поскольку они могут уменьшить все симптомы, включая заложенность носа. Назальные кортикостероиды имеют мало побочных эффектов.
  • Антагонисты лейкотриеновых рецепторов блокируют действие важных химических мессенджеров, отличных от гистамина, которые участвуют в аллергических реакциях.
  • Кромолин натрия — назальный спрей, который блокирует высвобождение химических веществ, вызывающих симптомы аллергии, включая гистамин и лейкотриены. Это лекарство имеет мало побочных эффектов, но вы должны принимать его четыре раза в день.

Симптомы назальной аллергии могут полностью исчезнуть при удалении аллергена или после лечения аллергии. Поговорите со своим фармацевтом и поставщиком медицинских услуг о том, что лучше для вас.

Многие люди, страдающие аллергией, не получают полного облегчения от лекарств.Они могут быть кандидатами на иммунотерапию. Иммунотерапия — это долгосрочное лечение, которое может помочь предотвратить или уменьшить тяжесть аллергических реакций и изменить течение аллергического заболевания путем изменения иммунного ответа организма на аллергены.

Как предотвратить аллергический ринит?

Первый и лучший вариант – избегать контакта с аллергенами. Другие советы по профилактике:

  • Не трогайте и не трите нос.
  • Чаще мойте руки водой с мылом.
  • Используйте пылесос с СЕРТИФИЦИРОВАННЫМ фильтром® для защиты от астмы и аллергии, чтобы уменьшить воздействие аллергенов во время уборки.
  • Стирайте постельное белье и наволочки в горячей воде с моющим средством, чтобы уменьшить количество аллергенов.
  • Используйте чехлы, защищающие от пылевых клещей, для подушек, одеял, одеял, матрасов и пружинных блоков.
  • Не допускайте домашних животных в спальню, чтобы уменьшить количество аллергенов перхоти домашних животных в ваших постельных принадлежностях.
  • Носите солнцезащитные очки и шляпу с широкими полями, чтобы уменьшить попадание пыльцы в глаза.
  • Держите окна закрытыми в сезоны высокой пыльцы и плесени. Используйте кондиционер в автомобиле и дома (СЕРТИФИЦИРОВАННЫЙ фильтр для астмы и аллергии®).

Медицинское обозрение, октябрь 2015 г.

 

 

Современные концепции лечения острого риносинусита у взрослых

1. Розенфельд Р.М., Пиччирильо Дж. Ф., Чандрасекар С.С., и другие. Клиническое практическое руководство (обновление): синусит у взрослых. Отоларингол Head Neck Surg . 2015;152(2 приложения):S1–S39….

2. Fokkens WJ, Лунд В.Дж., Муллол Дж., и другие. Европейский документ с изложением позиции в отношении риносинусита и полипов носа, 2012 г. Rhinol Suppl . 2012;(23):1–298.

3. Чоу А.В., Беннингер М.С., Брук я, и другие.; Американское общество инфекционистов. Руководство IDSA по клинической практике острого бактериального риносинусита у детей и взрослых. Клин Инфекция Дис . 2012;54(8):e72–e112.

4. Ланца, округ Колумбия, Кеннеди Д.У. Определен взрослый риносинусит. Отоларингол Head Neck Surg . 1997; 117 (3 pt 2): S1–S7.

5. Санде М.А., Гуолтни Дж. М. Острый внебольничный бактериальный синусит: постоянные проблемы и текущее лечение. Клин Инфекция Дис . 2004; 39 (дополнение 3): S151–S158.

6. Ах-Си КВ, Эванс АС. Синусит и его лечение. БМЖ . 2007;334(7589):358–361.

7. Мельцер Е.О., Хамилос ДЛ. Диагностика и лечение риносинусита для клинициста: краткий обзор недавних согласованных рекомендаций. Mayo Clin Proc . 2011;86(5):427–443.

8. Хансен Дж. Г., Шмидт Х, Росборг Дж, Лунд Э. Прогнозирование острого гайморита у населения общей практики. БМЖ . 1995;311(6999):233–236.

9. Ван Бухем Л., Питерс М, Бомонт Дж, Ноттнерус Дж.А.Острый гайморит в общей практике: связь между клинической картиной и объективными данными. Европейская J Gen Pract . 1995;1(4):155–160.

10. Пиччирильо Дж.Ф. Клиническая практика. Острый бактериальный синусит. N Английский J Med . 2004;351(9):902–910.

11. Хван ПХ. 51-летняя женщина с острым началом лицевого давления, ринореей и зубной болью: обзор острого риносинусита. ДЖАМА . 2009;301(17):1798–1807.

12. Уильямс Дж. В. мл., Симел ДЛ, Робертс Л, Самса ГП. Клиническая оценка синусита. Постановка диагноза на основании анамнеза и физического осмотра. Энн Интерн Мед . 1992;117(9):705–710.

13. Берг О, Каренфельт С. Анализ симптомов и клинических признаков эмпиемы верхнечелюстной пазухи. Акта Отоларингол . 1988; 105 (3–4): 343–349.

14. Линдбек М., Хьортдал П., Джонсен УЛ.Использование симптомов, признаков и анализов крови для диагностики острых инфекций носовых пазух в первичной медико-санитарной помощи: сравнение с компьютерной томографией. Фам Мед . 1996;28(3):183–188.

15. ван ден Брук М.Ф., Гудден С, Клюйфхаут ВП, и другие. Нет данных для различения бактериального и вирусного острого риносинусита по длительности симптомов и гнойной ринорее: систематический обзор доказательной базы. Отоларингол Head Neck Surg .2014;150(4):533–537.

16. Славин Р.Г., Спектор С.Л., Бернштейн И.Л., и другие.; Американская академия аллергии, астмы и иммунологии; Американский колледж аллергии, астмы и иммунологии; Объединенный совет по аллергии, астме и иммунологии. Диагностика и лечение синусита: обновление параметров практики. J Allergy Clin Immunol . 2005;116(6):S13–S47.

17. Мельцер Е.О., Хамилос Д.Л., Хэдли Дж. А., и другие.; Американская академия аллергии, астмы и иммунологии; Американская академия отоларингической аллергии; Американская академия отоларингологии — Хирургия головы и шеи; Американский колледж аллергии, астмы и иммунологии; Американское ринологическое общество. Риносинусит: определение определений для клинических исследований и ухода за пациентами. J Allergy Clin Immunol . 2004; 114 (6 дополнений): 155–212.

18. Хэдли Дж. А., Шефер С.Д. Клиническая оценка риносинусита: анамнез и физикальное обследование. Отоларингол Head Neck Surg . 1997; 117 (3 pt 2): S8–S11.

19. Корнелиус Р.С., Мартин Дж, Виппольд FJ II, и другие.; Американский колледж радиологии. Критерии соответствия ACR синоназальной болезни. J Am Coll Radiol . 2013;10(4):241–246.

20. Саволайнен С, Пьетола М, Киукаанниеми Х, Лаппалайнен Э., Салминен М, Микконен П. Ультразвуковой прибор в диагностике острого гайморита. Acta Otolaryngol Suppl . 1997; 529: 148–152.

21. Мельцер Е.О., Хамилос ДЛ. Диагностика и лечение риносинусита для клинициста: краткий обзор недавних согласованных рекомендаций. Mayo Clin Proc . 2011;86(5):427–443.

22. Янг Дж., Де Саттер А, Меренштейн Д, и другие. Антибиотики для взрослых с клинически диагностированным острым риносинуситом: метаанализ данных отдельных пациентов. Ланцет . 2008;371(9616):908–914.

23. Фалагас М.Е., Яннопулу КП, Вардакас КЗ, Димопулос Г, Карагеоргопулос ДЭ. Сравнение антибиотиков с плацебо для лечения острого синусита: метаанализ рандомизированных контролируемых исследований. Ланцет Infect Dis . 2008;8(9):543–552.

24. Лемиенгр МБ, ван Дриэль МЛ, Меренштейн Д, Янг Дж, Де Саттер А.И. Антибиотики при клинически диагностированном остром риносинусите у взрослых. Кокрановская база данных Syst Rev . 2012;(10):CD006089.

25. Дерозье М, Эванс Г.А., Кит П.К., и другие. Канадские клинические рекомендации по острому и хроническому риносинуситу. J Отоларингол Head Neck Surg . 2011; 40 (прил. 2): S99–S193.

26. Розенфельд Р.М., Певица М, Джонс С. Систематический обзор антимикробной терапии больных острым риносинуситом. Отоларингол Head Neck Surg .2007; 137 (3 приложения): S32–S45.

27. Анон Дж.Б., Джейкобс М.Р., Пул, доктор медицины, и другие.; Партнерство по здоровью пазух и аллергии. Руководство по антимикробной терапии острого бактериального риносинусита [опубликовано исправление в Otolaryngol Head Neck Surg. 2004 г.; 130(6):794–796]. Отоларингол Head Neck Surg . 2004; 130 (1 приложение): 1–45.

28. Карагеоргопулос DE, Яннопулу КП, Грамматикос АП, Димопулос Г, Фалагас МЭ.Фторхинолоны по сравнению с бета-лактамными антибиотиками для лечения острого бактериального синусита: метаанализ рандомизированных контролируемых исследований. CMAJ . 2008;178(7):845–854.

29. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США. Сообщение FDA о безопасности лекарственных средств: FDA рекомендует ограничить использование фторхинолоновых антибиотиков при некоторых неосложненных инфекциях; предупреждает об отключении побочных эффектов, которые могут возникать вместе. http://www.fda.gov/Drugs/DrugSafety/ucm500143.htm. По состоянию на 27 мая 2016 г.

30. Фалагас М.Е., Карагеоргопулос DE, Грамматикос АП, Маттау ДК. Эффективность и безопасность краткосрочной и длительной антибиотикотерапии острого бактериального синусита: метаанализ рандомизированных исследований. Br J Clin Pharmacol . 2009;67(2):161–171.

31. Мельцер Е.О., Ратнер ПХ, Макгроу Т. Пероральный фенилэфрин гидрохлорид при заложенности носа при сезонном аллергическом рините: рандомизированное открытое плацебо-контролируемое исследование. J Allergy Clin Immunol Pract . 2015;3(5):702–708.

32. Хейворд Г., Хенеган С, Перера Р, Томпсон М. Интраназальные кортикостероиды при лечении острого синусита: систематический обзор и метаанализ. Энн Фам Мед . 2012;10(3):241–249.

33. Залмановичи Трестиореану А, Яфе Дж. Интраназальные стероиды при остром синусите. Кокрановская база данных Syst Rev . 2013;(12):CD005149.

34. Инанли С., Озтюрк О, Коркмаз М, Туткун А, Бэтмен С. Влияние местных средств флутиказона пропионата, оксиметазолина и 3% и 0,9% растворов натрия хлорида на мукоцилиарный клиренс при терапии острого бактериального риносинусита in vivo. Ларингоскоп . 2002;112(2):320–325.

35. Рабаго Д, Згерская А, Мундт М, Баррет Б, Бобула Ж, Маберри Р. Эффективность ежедневного орошения носа гипертоническим солевым раствором у пациентов с синуситом: рандомизированное контролируемое исследование. J Fam Pract . 2002;51(12):1049–1055.

36. Мельцер Е.О., Оргель Х.А., Бакхаус Дж.В., и другие. Интраназальный спрей флунизолида в качестве дополнения к пероральной антибиотикотерапии синусита. J Allergy Clin Immunol . 1993;92(6):812–823.

37. Барлан И.Б., Эркан Э, Бакир М, Беррак С, Башаран ММ. Интраназальный спрей будесонид в качестве дополнения к пероральной антибиотикотерапии острого синусита у детей. Энн Аллергия Астма Иммунол . 1997;78(6):598–601.

38. Мельцер Е.О., Чарус БЛ, Буссе ВВ, Цинрайх С.Дж., Лорбер Р.Р., Данциг МР; Группа Назонекс Синусит. Добавлено облегчение при лечении острого рецидивирующего синусита дополнительным назальным спреем мометазона фуроата. J Allergy Clin Immunol . 2000;106(4):630–637.

39. Йылмаз Г., Варан Б, Йылмаз Т, Гуракан Б.Интраназальный спрей будесонид в качестве дополнения к пероральной антибиотикотерапии острого синусита у детей. Eur Arch Оториноларингол . 2000;257(5):256–259.

40. Долор Р.Ж., Витселл Д.Л., Хеллкамп АС, Уильямс Дж. В. младший, Калифф РМ, Симел ДЛ; Ceftin and Flonase for Sinusitis (CAFFS) Исследователи. Сравнение цефуроксима с интраназальным флутиказоном или без него для лечения риносинусита. Исследование CAFFS: рандомизированное контролируемое исследование [опубликованное исправление появляется в JAMA.2004;292(14):1686]. ДЖАМА . 2001;286(24):3097–3105.

41. Наяк А.С., Сеттипан Г.А., Пединов А, и другие.; Группа Назонекс Синусит. Диапазон эффективных доз назального спрея мометазона фуроата при лечении острого риносинусита. Энн Аллергия Астма Иммунол . 2002;89(3):271–278.

42. Мельцер Е.О., Бахерт С, Штаудингер Х. Лечение острого риносинусита: сравнение эффективности и безопасности назального спрея мометазона фуроата, амоксициллина и плацебо. J Allergy Clin Immunol . 2005;116(6):1289–1295.

43. Уильямсон И.Г., Рамсби К., Бенге С, и другие. Антибиотики и местные назальные стероиды для лечения острого гайморита: рандомизированное контролируемое исследование. ДЖАМА . 2007;298(21):2487–2496.

44. Кеожампа Б.К., Нгуен М.Х., Райан М.В. Влияние забуференного солевого раствора на слизисто-цилиарный клиренс носа и проходимость носовых дыхательных путей. Отоларингол Head Neck Surg . 2004;131(5):679–682.

45. Гауптман Г., Райан М.В. Влияние солевых растворов на проходимость носа и мукоцилиарный клиренс у больных риносинуситом. Отоларингол Head Neck Surg . 2007;137(5):815–821.

46. Кинг Д, Митчелл Б, Уильямс КП, Сперлинг Г.К. Промывание носа солевым раствором при острых инфекциях верхних дыхательных путей. Кокрановская база данных Syst Rev .2015;(4):CD006821.

47. Йодер Дж.С., Страйф-Буржуа С, Рой С.Л., и другие. Смерть от первичного амебного менингоэнцефалита, связанного с промыванием носовых пазух загрязненной водопроводной водой. Клин Инфекция Дис . 2012;55(9):e79–e85.

48. Коуп Дж. Р., Ратард РЦ, Хилл ВР, и другие. Первая ассоциация смерти от первичного амебного менингоэнцефалита с культивируемой Naegleria fowleri в водопроводной воде из системы общественного водоснабжения, обработанной в США. Клин Инфекция Дис . 2015;60(8):e36–e42.

49. Тавернер Д, Данц С, Экономос Д. Влияние перорального псевдоэфедрина на проходимость носа при простуде: двойное слепое плацебо-контролируемое исследование однократной дозы. Clin Otolaryngol Allied Sci . 1999;24(1):47–51.

50. Канен М., Хэмелс К, Дерон П, Клемент П. Сравнение противоотечной способности ксилометазолина и псевдоэфедрина с риноманометрией и МРТ. Ринология . 2005;43(3):205–209.

51. Браун Дж.Дж., Альберт Дж.П., Мишель ФБ, и другие. Дополнительный эффект лоратадина при лечении острого синусита у пациентов с аллергическим ринитом. Аллергия . 1997;52(6):650–655.

52. Тернер Дж. Х., Рех ДД. Заболеваемость и выживаемость у пациентов с синоназальным раком: исторический анализ популяционных данных. Голова Шея . 2012;34(6):877–885.

53. Аринг А.М., Чан ММ. Острый риносинусит у взрослых. Семейный врач . 2011;83(9):1057–1063.

Правда о заложенности носа

Учитывая количество тканей, через которые вы проходите во время болезни, можно предположить, что заложенность носа вызвана избытком слизи. Однако это еще не все. Заложенность носа часто является результатом воспаления. Когда вы больны, кровеносные сосуды, выстилающие полость носа, опухают и воспаляются.Это может вызвать заложенность носа.

 

Причины воспаления носа

Воспаление носа часто вызывается реакцией организма на то, что он идентифицирует как чужеродный агент. Например, когда тело распознает инородное присутствие, которое оно считает опасным (например, вирус простуды), оно начинает действовать, оно начинает действовать. Клетки начинают передавать друг другу сообщения, чтобы увеличить приток крови к проблемному участку, неся клетки, способные атаковать захватчиков.Эти клетки выделяют вещества для борьбы с атакой, вызывающей воспаление.

 

«когда организм распознает инородное присутствие, которое он считает опасным (например, вирус простуды), он начинает действовать»

 

В результате кровеносные сосуды в тканях, выстилающих нос и носовые пазухи, буквально опухают из-за воспаления. Воспаление в носу и пазухах, как и в любом другом месте в организме, является частью иммунных усилий здорового организма, а не работой вредоносных патогенов или инфекции.

При этом многие угрозы, на которые реагирует организм, могут быть безвредными. Например, многие вирусы, вызывающие синдром простуды, не причинят особого вреда, если оставить их в покое. Тем не менее, наши тела были спроектированы таким образом, чтобы всегда оставаться в состоянии повышенной готовности. Это одна из причин, по которой заложенность носа так распространена, потому что это защита от множества вещей, которые организм считает опасными.

 

Лечение заложенности носа

В то время как ваше тело занято борьбой с вирусом, вызвавшим заложенность носа, противоотечные средства сосредоточены на лечении опухших тканей или воспалений, чтобы помочь бороться с заложенностью носа, помогая вам чувствовать себя лучше.

.
Снять воспаление слизистой носа: Отек слизистой оболочки пазух носа

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.