Содержание

Ингаляции с прополисом - рецепты

Ингаляции с прополисом

Ингаляции с прополисом снимают воспаление нижних дыхательных путей, способствуют разжижению вязкой мокроты, избавляют от хрипов.

Прополис широко применяется в мазях, настойках, свечах. Но для лечения заболеваний бронхолегочной системы прополис следует применять именно в виде ингаляций. Тогда его эфирные масла и смолистые вещества находятся в самом мелком дисперсном состоянии и глубже проникают в патологические очаги воспаления.

Показания

  • острый затяжной бронхит
  • хронический рецидивирующий бронхит
  • астматический бронхит и бронхиальная астма
  • обструктивный и необструктивный бронхиты
  • Доказано что ингаляции с прополисом и прием его препаратов внутрь оказывают целебное действие при туберкулезе.

Действие прополиса на верхние и нижние дыхательные пути

  1. Прополис обладает свойством сильного антибиотика, снимает воспаление и стимулирует иммунитет бронхов и слизистой оболочки рта и носа.
  2. Улучшает эвакуацию мокроты, снижает ее вязкость.
  3. Уменьшает застой слизи и гноя при гайморите и синуситах.
  4. Восстанавливает повреждения слизистой при заболеваниях горла, облегчает боль.
  5. Снимает раздражение и першение при сухом кашле.

Предупреждение! Для «качественной» процедуры следует при вдыхании паров прополиса задерживать дыхание на 15 секунд. Тогда летучие лечебные вещества будут на полную мощность работать в бронхах и легких. Поэтому первые ингаляции должны быть непродолжительными 0,5-1 минуту. С каждым днем время увеличивается на один вдох и одну задержку дыхания. Постепенно довести до 6 задержек дыхания. При первых ингаляциях возможен спастический кашель и першение в горле – этого не надо пугаться, следующие процедуры переносятся лучше!

Рецепт с чистым прополисом

Измельчить 3 г прополиса, залить водой в эмалированной кастрюле (примерно 200 мл), нагреть. Вдыхать пары 5-6 раз за одну ингаляцию, задерживая дыхание. Курс ингаляций 10 дней.

Рецепт с прополисной настойкой

Настойка берется из расчета 1 ст. л. на стакан кипятка. Способ ингаляции такой же, как и с чистым веществом. Настойка обладает более раздражающим действием, чем чистый прополис. Поэтому людям с сухим и раздражающим кашлем лучше использовать водный экстракт или чистое вещество.

Ингаляции с прополисом и маточным молочком

На 30 мл прополисной настойки берут 10 г маточного молочка(адсорбированного) и 300 мл воды. Такие ингаляции проявляют поистине волшебные свойства у ослабленных больных. Технология проведения, как и у простых ингаляций с прополисом.

Рецепт для улучшения отхаркивания

Приготовить отвар мать-и-мачехи, багульника, девясила, шалфея, календулы и ромашки (по 1 фильтр-пакету трав на 300 мл воды), добавить 20 капель настойки прополиса. Ингалировать обычным способом. Таким раствором можно полоскать горло при фарингите и промывать нос при гайморитах.

Небулайзер

Прибор позволяет распылять мелкодисперсные частицы лекарственного вещества. Мелкий размер частиц, вырабатываемых небулайзером, позволяет им проникать глубоко в органы дыхания и оказывать терапевтический эффект. С помощью паровых процедур такого эффекта не достичь.

Ингаляции с прополисом в небулайзере требуют соблюдения определенных правил:

  1. Положение при проведении процедур – сидячее.
  2. Во время процедуры нельзя разговаривать.
  3. При воспалении горла используется маска (в каждом комплекте есть взрослая и детская маска). Воздух из небулайзера втягивается и выпускается через рот.
  4. При заболеваниях бронхов (в том числе альвеол и бронхиол), трахеи и легких используется мундштук, воздух втягивается через рот.
  5. При насморке в комплекте небулайзера есть специальные канюли, для ингалирования лекарства через нос.
    6. После процедур нельзя есть, курить и выходить на улицу не менее 1,5 часов.

Методика проведения

В качестве раствора используют 0,9% натрия хлорид (физ. раствор). Перед процедурой нужно развести 1 мл настойки прополиса на 20 мл физ. раствора. Затем на одну ингаляцию берут 3 мл раствора. В зависимости от локализации заболевания используют маску, мундштук или канюлю.
Раствор заливают в небулайзер и ингалируют до его испарения (примерно 10 минут).

Ингаляции с прополисом в небулайзере эффективны не только от кашля, насморка, боли в горле, они успешно применяются для такого серьезного заболевания как хроническая обструктивная болезнь легких. Помогут купировать бронхит курильщика и укрепить иммунитет дыхательных путей.

Ингаляции с прополисом могут применяться в комплексе с антибиотикотерапией. Пчелиный клей в несколько раз увеличивает интенсивность антибактериальных средств и сульфаниламидов. Он снижает их негативное действие на организм больного.

Хорошие результаты показывают ингаляции и при монотерапии сухого и влажного кашля, насморка. В любом случае – с прополисом выздоровление наступит в разы быстрей.

Источник: bolshemeda.ru

Можно ли настойку прополиса использовать в небулайзере

Для ингаляций используют разные медикаменты, которые положительно влияют на состояние дыхательной системы. Выбирать народное средство или препарат необходимо вместе с врачом. Доктор оценит самочувствие пациента и примет решение по поводу выбора медикамента. Популярностью пользуются продукты пчеловодства, так как они полезны для здоровья. Возникает вопрос, можно ли дышать настойкой прополиса через небулайзер. Стоит разобраться в особенностях применения данного компонента, чтобы принять правильное решение.

Можно ли делать ингаляции с прополисом?

Прополис полезен для здоровья, в том числе для дыхательной системы. Продукты пчеловодства часто рекомендуют врачи для терапии кашля и болезней горла. В них содержатся эфирные масла, а также смолистые вещества. Все они оказывают лечебный эффект и укрепляют иммунную систему. За счёт этого удаётся добиться положительных результатов и избавиться от проблем со здоровьем.

Настойка попадает в дыхательные пути, поэтому её следует с осторожностью использовать. Перед применением придётся убедиться в отсутствии аллергической реакции. При иммунопатологическом ответе процедура будет опасна для организма. Только врач однозначно скажет, можно ли делать ингаляции с прополисом. Он учтёт показания и противопоказания, после чего примет решение.

Обычно продукты пчеловодства оказывают следующие эффекты:

  • Устранение воспалительного процесса.
  • Разжижение накопившейся мокроты.
  • Устранение хрипов при дыхании.
  • Ослабление кашля.

Следует отметить, что компонент даже убирает насморк и снимает раздражение в горле. По этой причине он часто применяется для лечения различных заболеваний. Нужно лишь вовремя принять меры и начать применять небулайзер.

Рекомендации по поводу лечения

Настойку можно применять для ингаляций. Дома лучше всего использовать компрессорный ингалятор. Он будет распылять компонент, чтобы тот быстро проникал к очагу воспаления. Процедура проводится в сидячем положении. Больной должен дышать через небулайзер и не разговаривать.

Проводить процедуру можно через час после еды и за два часа до следующего приёма пищи. Натощак лучше не проводить процедуру, чтобы не спровоцировать тошноту и боли в желудке.

Настойку следует использовать в течение недели. Манипуляция осуществляется 2-3 раза в день. Если Вы предварительно проконсультируетесь с врачом, можно ли использовать настойку прополиса в небулайзере в вашем случае, тогда положительные изменения не заставят себя долго ждать.

Внимание! Ингаляции могут быть опасны для здоровья. Рекомендуем внимательно ознакомиться со статьей: Опасность и вред ингаляций.

ингаляции с настойкой прополиса — 25 рекомендаций на Babyblog.ru

Никому не навязываю, чтобы не потерять....

Один из главных видов лечения воспалительных заболеваний дыхательных путей. Ингаляции имеют целый ряд преимуществ перед другими способами доставки лекарственных препаратов:
- возможность непосредственного и быстрого воздействия на зону воспаления в слизистых оболочках
- ингалируемое вещество практически не всасывается в кровь и не оказывает побочных действий на другие органы и системы, как это бывает при приеме таблеток или инъекциях.
- это более дешевый способ добиться быстрого смягчения симптомов и выздоровления.
- небулайзер является единственным средством доставки лекарственного препарата в альвеолы
- ингаляции через небулайзер - единственно возможный метод аэрозольной терапии у детей до 5 лет, а также у многих пожилых пациентов
- небулайзер производит аэрозоль, 70% частиц которого имеют размер менее 5 мкм (до 0,8 мкм)
- в небулайзерной терапии не используется фреон
- есть возможность комбинирования лекарственных препаратов
- возможна одновременная ингаляция кислорода
- возможность подключения в контур искусственной вентиляции легких (ИВЛ)

Какие заболевания можно лечить при помощи ингаляций?
В первую очередь - острые респираторные заболевания, сопровождающиеся такими симптомами как кашель, сухость, першение или боли в горле, выделение мокроты. Все знают, что довольно легко можно подавить температуру, приняв парацетамол или аспирин, но оставшийся 'хвост' перечисленных катаральных явлений будет еще долго тянуться, доставляя неудобства больному и его окружению. Если же использовать ингаляции, то, по целому ряду данных, выздоровление наступит в 1,5-2 раза быстрее.
Другая группа заболеваний, при которых ингаляции просто незаменимы - хронические воспалительные процессы дыхательных путей (такие как хронический бронхит, бронхиальная астма, хронический фарингит). В странах с высоким уровнем развития медицины большинство больных астмой и бронхитом имеют домашние ингаляторы и постоянно ими пользуются. Существуют лекарства, которые позволяют таким пациентам снять приступ одышки или удушья, не прибегая к услугам скорой помощи.

В настоящее время в медицинской практике используются четыре основных типа ингаляторов:
- паровые
- ультразвуковые
- компрессорные (струйные)
- электронно-сетчатые
Последние три объединены термином 'небулайзеры' от латинского слова 'nebula'- туман, облако. Они генерируют не пары, а аэрозольное облако, состоящее из микрочастиц ингалируемого раствора.
Действие паровых ингаляторов основано на эффекте испарения лекарственного вещества. Понятно, что использоваться в них могут лишь летучие растворы, имеющие точку кипения ниже 100 градусов, чаще всего - эфирные масла. Это значительно сужает спектр возможных компонентов для ингаляции. Но самый большой недостаток паровых ингаляторов в низкой концентрации ингалируемого вещества. Как правило, она меньше порога лечебного воздействия.
Ультразвуковые небулайзеры распыляют раствор колебаниями ультразвука. Они компактны, бесшумны и надежны, но ряд препаратов (такие как антибиотики и средства, разжижающие мокроту) разрушаются в ультразвуковой среде и не могут применяться в данном типе ингаляторов.
Компрессорные небулайзеры формируют аэрозольное облако за счет продавливания через узкое отверстие в камере, содержащей лечебный раствор, мощного потока воздуха, нагнетаемого компрессором. Данные небулайзеры позволяют регулировать размеры частиц аэрозоля, что позволяет использовать небулайзер для лечения как нижних и глубоких отделов дыхательных путей так, где требуется мелкодисперсная аэрозоль, так и верхних отделов, где требуется более крупная дисперсия. Таким образом достигаются необходимые терапевтические концентрации. Все стандартные растворы для ингаляций, выпускаемые фармацевтическими компаниями в готовом виде и рекомендуемые нами, могут быть использованы в компрессорных (иначе - струйных) небулайзерах.
Электронно-сетчатые небулайзеры представляют собой разновидность ультразвуковых небулайзеров, но лишены их недостатков. Именно потому, что в обычных ультразвуковых небулайзерах нельзя использовать многие ингаляционные препараты, была разработана mesh-технология. Благодаря новому методу распыления можно использовать расширенный список лекарственных препаратов. Например, недоступные в ультразвуковых ингаляторах антибиотики, муколитики и гормональные препараты. Но при всех своих достоинствах (бесшумность, компактность и универсальность), электронно-сетчатые ингаляторы все-таки имееют один существенный недостаток - они требуют очень тщательного ухода и чистки после кажой процедуры с использованием чистейшего этилового спирта (который практически не возможно найти в свободной продаже).
К тому же ресурс сетчатой мембраны в распылительной камере составляет не более 500 процедур при условии правильной эксплуатации

ПОМНИТЕ - АБСОЛЮТНО БЕЗОПАСНЫХ ЛЕКАРСТВ НЕ БЫВАЕТ!

ПРЕЖДЕ, ЧЕМ НАЧАТЬ ВЫПОЛНЯТЬ ПРОЦЕДУРЫ, ОБЯЗАТЕЛЬНО ПРОКОНСУЛЬТИРУЙТЕСЬ С ЛЕЧАЩИМ ВРАЧОМ ПО ПОВОДУ ПРЕПАРАТОВ И ДОЗИРОВОК!
ВНИМАТЕЛЬНО ЧИТАЙТЕ ИНСТРУКЦИИ К ПРЕПАРАТАМ, ОБРАЩАЙТЕ ВНИМАНИЕ НА ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ, ПОБОЧНЫЕ ДЕЙСТВИЯ И ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ С ДРУГИМИ ЛЕКАРСТВЕННЫМИ СРЕДСТВАМИ!
УБЕДИТЕСЬ В ТОМ, ЧТО ДАННЫЙ ЛЕКАРСТВЕННЫЙ ПРЕПАРАТ МОЖНО ИСПОЛЬЗОВАТЬ В ВАШЕМ ПРИБОРЕ
РАСТВОРЫ ДЛЯ ИНГАЛЯТОРОВ (НЕБУЛАЙЗЕРОВ)
1. Препараты, расширяющие бронхи (Бронхолитики)
Беродуал, действующее вещество: фенотерол и бромид ипратропиума (раствор для ингаляций) - Предупреждение и лечение удушья при хронических обструктивных заболеваниях дыхательных путей. Наиболее эффективный из бронхорасширяющих препаратов, обладает наименьшими побочными действиями.
Взрослым и детям старше 12 лет - 2 мл (40 капель) препарата на 1 ингаляцию, до 4 раз в день
Детям от 6 до 12 лет - 1 мл (20 капель) препарата на 1 ингаляцию, до 4 раз в день
Детям до 6 лет - 0,5 мл (10 капель) препарата на 1 ингаляцию, до 3 раз в день
Для приготовления ингаляционного раствора следует к рекомендуемой дозе препарата добавить 3 мл физраствора

Беротек, действующее вещество: фенотерол (0,1%-ный раствор для ингаляций) -
Для купирования приступа бронхиальной астмы:
Взрослым и детям старше 12 лет - 0,5 мл (0,5 мг - 10 капель), в тяжелых случаях - 1 мл (1 мг - 20 капель)
Детям 6-12 лет (масса тела 22-36 кг) - 0,25-0,5 мл (0,25-0,5 мг - 5-10 капель), в тяжелых случаях - 1 мл (1 мг - 20 капель)
Профилактика и симптоматическое лечение бронхиальной астмы и хронической обструктивной болезни легких:
Взрослым и детям старше 6 лет - 0,5 мл (0,5 мг - 10 капель) на 1 ингаляцию, до 4 раз в день
Детям до 6 лет (масса тела менее 22 кг) - 0,25-1 мл (0,25-1 мг - 5-20 капель), до 3 раз в день
Рекомендованную дозу непосредственно перед применением разводят физраствором до объема 3-4 мл. Интервал между ингаляциями не должен быть менее 4 часов.

Сальгим, Вентолин Небулы, действующее вещество: сальбутамол (0,1%-ный раствор для ингаляций) - Купирование приступов удушья, профилактика и симптоматическое лечение бронхиальной астмы и хронической обструктивной болезни легких. По эффекту значительно уступает Беротеку
Взрослым и детям - 2,5 мл (2,5 мг) на 1 ингаляцию, до 4 раз в день с интервалом между ингаляциями не менее 6 часов
Предназначен для использования в неразведенном виде

Атровент, действующее вещество: бромид ипратропиума (0,025%-ный раствор для ингаляций) - Купирование приступов удушья, профилактика и симптоматическое лечение бронхиальной астмы и хронической обструктивной болезни легких. По эффекту несколько уступает Беротеку и препаратам сальбутамола, но основным достоинством является безопасность применения
Взрослым и детям старше 12 лет - 0,5 мг (40 капель) на 1 ингаляцию, 3-4 раза в день
Детям 6-12 лет - 0,25 мг (20 капель) на 1 ингаляцию, 3-4 раза в день
Детям до 6 лет - по 0,1-0,25 мг (8-20 капель) на 1 ингаляцию, 3-4 раза в день (под наблюдением врача).
Рекомендованную дозу непосредственно перед применением разводят физраствором до объема 3-4 мл. Интервал между ингаляциями не менее 2 часов

2. Препараты, разжижающие мокроту (Муколитики) и выводящие мокроту (Секретолитики, отхаркивающие)

Флуимуцил, АЦЦ Инъект, действующее вещество: ацетилцистеин (10%-ный раствор для инъекций) - Нарушение отхождения мокроты из нижних дыхательных путей, облегчение отхождения слизистого секрета в верхних дыхательных путях
Взрослым и детям старше 12 лет - 3 мл препарата на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Детям от 6 до 12 лет - 2 мл препарата на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Детям от 2 до 6 лет - 1-2 мл препарата на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Рекомендуемую дозу препарата следует развести с физраствором в соотношении 1:1
Курс лечения - не более 10 дней
Препараты ацетилцистеина не следует применять одновременно с приемом антибиотиков, т.к. они снижают всасываемость антибиотиков. В случаях, когда требуется одновременное введение ацетилцистеина и антибиотика, используют либо другую форму препарата: 'Флуимуцил-антибиотик', либо применяют иные муколитические препараты, совместимые с антибиотиками (к примеру, на основе амброксола). Следует отметить, что применение препаратов ацетилцистеина снижает токсическое действие парацетамола на печень.

Лазолван, Абмробене, действующее вещество: амброксол (раствор для ингаляций и приема внутрь) - Острые и хронические заболевания дыхательных путей с выделением вязкой мокроты
Взрослым и детям старше 6 лет - 2-3 мл раствора на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Детям от 2 до 6 лет - 2 мл раствора на 1 ингаляцию 1-2 раза в день
Детям до 2 лет - 1 мл раствора на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Для приготовления ингаляционного раствора следует рекомендуемую дозу препарата развести с физраствором в соотношении 1:1
Курс лечения - не более 5 дней
Препараты на основе амбоксола не следует применять одновременно с противокашлевыми препаратами (например: кодеин, либексин, фалиминт, бронхолитин, пектуссин, синекод и др.). Применение препаратов амброксола способствует хорошему всасыванию антибиотиков.

Нарзан, Боржоми (слабощелочные минеральные воды) - Увлажнение слизистой дыхательных путей
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл минеральной воды, 2-4 раза в день.
Перед ингаляцией минеральную воду следует отстоять до дегазации.

Синупрет, гомеопатический фитопрепарат (капли на основе экстрактов растений: корень генциана (горечавки), щавель, первоцвет, бузина, вербена) - Восстанавливает защитные свойства и уменьшает отек слизистой оболочки дыхательных путей при острых и хронических синуситах. Способствует оттоку экссудата из придаточных пазух носа
Для приготовления ингаляционного раствора препарат необходимо предварительно развести в физрастворе:
Для взрослых и детей старше 16 лет - в соотношении 1:1 (на 1 мл препарата 1 мл физраствора)
Для детей от 6 до 16 лет - в соотношении 1:2 (на 1 мл препарата 2 мл физраствора)
Для детей от 2 до 6 лет - в соотношении 1:3 (на 1 мл препарата 3 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

Геделикс, фитопрепарат (капли на основе экстракта плюща) - Заболевания верхних дыхательных путей и бронхов с трудноотделяемой мокротой, кашель (в т.ч. сухой)
Для приготовления ингаляционного раствора препарат необходимо предварительно развести в физрастворе:
Для взрослых и детей старше 10 лет - в соотношении 1:1 (на 1 мл препарата 1 мл физраствора)
Для детей до 10 лет - в соотношении 1:2 (на 1 мл препарата 2 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

Микстура от кашля, фитопрепарат (порошок (детский и взрослый) для приготовления раствора на основе экстрактов растений: анис, корень солодки, корень алтея, термопсис) - Заболевания дыхательных путей, сопровождающиеся кашлем, особенно при затрудненном отхождении мокроты
Для приготовления ингаляционного раствора следует содержимое 1 упаковки растворить в 15 мл физраствора до полного рстворения без осадка
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

Мукалтин, фитопрепарат (таблетки на основе экстракта корня алтея) - Отхаркивающее средство при заболеваниях дыхательных путей и легких
Для приготовления ингаляционного раствора следует 1 таблетку растворить в 80 мл физраствора до полного растворения без осадка
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

Пертуссин, фитопрепарат (раствор на основе экстракта растений: чабрец, тимьян) - Отхаркивающее средство при трахеите, бронхите, коклюше
Для приготовления ингаляционного раствора препарат необходимо предварительно развести в физрастворе:
Для взрослых и детей старше 12 лет - в соотношении 1:1 (на 1 мл препарата 1 мл физраствора)
Для детей до 12 лет - в соотношении 1:2 (на 1 мл препарата 2 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

3. Противовоспалительные препараты

Ротокан, фитопрепарат (спиртовой настой экстарактов растений: календула, ромашка, тысячелистник) - Острые воспалительные заболевания верхних и средних дыхательных путей
Раствор для ингаляции готовят путем разведения препарата в физрастворе в отношении 1:40 (1 мл препарата на 40 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

Прополис, фитопрепарат (настойка) - Воспалительные процессы, боль и травмы верхних и средних дыхательных путей
Раствор для ингаляции готовят путем разведения препарата в физрастворе в отношении 1:20 (1 мл препарата на 20 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3 мл полученного раствора, 3 раза в день.
Противопоказания - аллергия к продуктам пчеловодства

Эвкалипт, фитопрепарат (спиртовая настойка) - Воспалительные заболевания верхних и средних дыхательных путей
Раствор для ингаляции готовят путем разведения 10-15 капель препарата в 200 мл физраствора
На 1 ингаляцию используют 3 мл полученного раствора, 3-4 раза в день
Противопоказания - бронхиальная астма, бронхоспазм (удушье)

Малавит, биологически активная добавка (спиртовая настойка на основе минеральных веществ и экстрактов растений) - Острые воспалительные заболевания и боль верхних и средних дыхательных путей
Раствор для ингаляции готовят путем разведения препарата в физрастворе в отношении 1:30 (1 мл препарата на 30 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

Тонзилгон Н, гомеопатический фитопрепарат (капли на основе экстрактов растений: корень алтея, листья грецкого ореха, хвощ, ромашка, тысячелистник, кора дуба, одуванчик) - Острые и хронические заболевания верхних отделов дыхательных путей (тонзиллит, фарингит, ларингит)
Для приготовления ингаляционного раствора препарат необходимо предварительно развести в физрастворе:
Для взрослых и детей старше 7 лет - в соотношении 1:1 (на 1 мл препарата 1 мл физраствора)
Для детей от 1 до 7 лет - в соотношении 1:2 (на 1 мл препарата 2 мл физраствора)
Для детей до 1 года - в соотношении 1:3 (на 1 мл препарата 3 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.

Календула, фитопрепарат (спиртовой настой экстаракта календулы) - Острые воспалительные заболевания верхних отделов дыхательных путей
Раствор для ингаляции готовят путем разведения препарата в физрастворе в отношении 1:40 (1 мл препарата на 40 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 4 мл полученного раствора, 3 раза в день

4. Противовоспалительные гормональные препараты (Глюкокортикостероиды) и противоаллергические препараты (Антигистамины)

Пульмикорт, действующее вещество: будесонид (суспензия для ингаляций, выпускается в «детской» (0,25 мг/мл) и «взрослой» (0,5 мг/мл) дозировках) - Острые воспалительные заболевания нижних дыхательных путей (бронхиальная астма, хроническая болезнь легких), требующие лечения гормональными препаратами. Обладает противовоспалительным и противоаллергическим действием.
Взрослые/пожилые и дети старше 12 лет - 1 мг на 1 ингаляцию, 1-3 раза в день
Дети от 6 мес. и до 12 лет - 0,25 мг на 1 ингаляцию, 1-3 раза в день
Данный препарат не применяют в ультразвуковых небулайзерах. Если разовая доза препарата менее 2 мл, то следует добавить физраствор для увеличения объема ингалируемого раствора до 2 мл. В остальных случаях препарат ингалируют в чистом виде (без разведения в физрастворе).
Суточная доза препарата:
0,25 мг/мл - 1 мл по 0,25 мг/мл
0,5 мг/мл - 2 мл по 0,25 мг/мл
0,75 мг/мл - 3 мл по 0,25 мг/мл
1 мг/мл - 4 мл по 0,25 мл/мг или 2 мл по 0,5 мг/мл
1,5 мг/мл - 3 мл по 0,5 мг/мл
2 мг/мл - 4 мл по 0,5 мг/мл

Дексаметазон, (0,4%-ный раствор для инъекций, 4 мг/мл) - Острые воспалительные заболевания дыхательных путей, требующие лечения гормональными препаратами
На 1 ингаляцию используют 0,5 мл (2 мг) препарата, до 4 раз в день.
Курс лечения не более 7 дней
Для приготовления ингаляционного раствора к рекомендуемой дозе препарата следует добавить 3 мл физраствора.
Также можно ампулы с препаратом предварительно развести в физрастворе в соотношении 1:6 (на 1 мл препарата 6 мл физраствора) и ингалировать по 3-4 мл полученного раствора на 1 ингаляцию.

Кромогексал, действующее вещество: кромоглициевая кислота (раствор для ингаляций, 20 мг / 2 мл) - Обладает антиаллергическим, противовоспалительным, антиастматическим действием.
Взрослым и детям старше 2 лет ингалировать по содержимому 1 флакона (без разведения с физраствором) 4 раза в день, по возможности, в равные временные интервалы.
При необходимости рекомендованная доза может быть увеличена в 2 раза, а частота применения может быть увеличена до 6 раз.

5. Противомикробные и антибактериальные препараты (Антибиотики и Антисептики)

Флуимуцил-антибиотик, действующее вещество: ацетилцистеин и тиамфеникол (порошок для инъекций и ингаляций в комплекте с растворителем) - Необходимость одновременного введения антибиотка и препарата разжижающего и выводящего мокроту и слизь из нижних и верхних дыхательных путей
Для приготовления препарата следует добавить 5 мл растворителя (1 ампулу) во флакон с порошком. Полученный препарат следует хранить в холодильнике не более суток, перед использованием подогреть до комнатной температуры
Взрослым и детям старше 12 лет - ? флакона (250 мг) на 1 ингаляцию 1-2 раза в день
Детям до 12 лет - ? флакона (125 мг) на 1 ингаляцию 1-2 раза в день
Для приготовления ингаляционного раствора следует к рекомендуемой дозе препарата добавить 2 мл физраствора

Фурацилин, действующее вещество: нитрофурал (0,024%-ный водный раствор, 1:5000) - Обладает дезинфицирующими свойствами. Лечение ОРВИ, предупреждение проникновения инфекции в более глубокие отделы бронхиального дерева
Для ингаляции используют готовый раствор фурацилина (в чистом виде, без разведения в физрастворе) по 4 мл на 1 ингаляцию 2 раза в день. Данный раствор необходимо заказывать в производственном отделе аптеки
Можно приготовить раствор самостоятельно, растворив 1 таблетку фурацилина в 100 мл физраствора до полного растворения без осадка. Ингалировать по 4 мл полученного раствора 2 раза в день.

Диоксидин, (0,5%-ный или 1%-ный раствор для инъекций) - Обладает дезинфицирующими свойствами широкого спектра действия.
Для приготовления ингаляционного раствора препарат следует развести физраствором в соотношении 1:4 для 1%-ного препарата или в отношении 1:2 для 0,5%-ного препарата.
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 2 раза в день.

Хлорофиллипт, фитопрепарат (1%-ный спиртовой настой на основе хлорофилла листьев эвкалипта) - Стафилококковая инфекция дыхательных путей
Раствор для ингаляции готовят путем разведения препарата в физрастворе в отношении 1:10 (1 мл препарата на 10 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3 мл полученного раствора, 3 раза в день.
Препарат очень сильно окрашивается и не отмывается!

Гентамицин, (4%-ный раствор сульфата гентамицина для инъекций, 40 мг/мл) - Инфекции дыхательных путей
Взрослым и детям старше 12 лет - 0,5 мл (20 мг) препарата на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Детям от 2 до 12 лет - 0,25 мл (10 мг) препарата на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Для приготовления ингаляционного раствора к рекомендуемой дозе препарата следует добавить 3 мл физраствора. Также можно ампулы с препаратом предварительно развести в физрастворе:
Для взрослых и детей старше 12 лет - в соотношении 1:6 (на 1 мл препарата 6 мл физраствора) и ингалировать по 3-4 мл полученного раствора на 1 ингаляцию.
Для детей от 2 до 12 лет - в соотношении 1:12 (на 1 мл препарата 12 мл физраствора) и ингалировать по 3 мл полученного раствора на 1 ингаляцию.

Мирамистин, (0,01%-ный раствор) - Антисептик широкого спектра действия. Лечение инфекций дыхательных путей, в том числе сопровождающиеся гнойными выделениями
Взрослым и детям старше 12 лет для ингаляции используют готовый 0,01%-ный раствор мирамистина (в чистом виде, без разведения в физрастворе) по 4 мл на 1 ингаляцию 3 раза в день.
Детям до 12 лет для приготовления ингаляционного раствора препарат следует развести физраствором в соотношении 1:2 (на 1 мл препарата 2 мл физраствора) и ингалировать по 3-4 мл на 1 ингаляцию 3 раза в день.

6. Иммуномодуляторы

Интерферон, (порошок для приготовления капель для носа) - Профилактика и лечение гриппа, а также других ОРВИ.
Для приготовления препарата следует вскрыть ампулу с порошком, влить в нее кипяченую или дистиллированную воду комнатной температуры до отметки 2 мл, аккуратно встряхнуть.
На 1 ингаляцию используют 2 мл полученного раствора, 2 раза в день.
Для приготовления ингаляционного раствора к рекомендуемой дозе препарата следует добавить 1 мл физраствора

Деринат, действующее вещество: дизорибонуклеат натрия (0,25%-ный раствор для наружного применения) - Профилактика и лечение гриппа, ОРВИ и других вирусных инфекций верхних дыхательных путей и их осложнений
На 1 ингаляцию используют 2 мл препарата, 2 раза в день.
Для приготовления ингаляционного раствора к рекомендуемой дозе препарата следует добавить 2 мл физраствора

7. Сосудосуживающие (противоотечные) препараты

Адреналин (Эпинефрин), действующее вещество: эпинефрин (0,1%-ный раствор гидрохлорида адреналина для наружного применения или инъекций) - Бронхоспазм (приступ удушья), аллергический отек гортани, отек гортани при ларингите, ларинготрахеите и крупе
Взрослым и детям старше 2 лет - 0,5 мл препарата однократно, при необходимости процедуру повторяют
Детям до 2 лет - 0,25 мл препарата однократно, при необходимости процедуру повторяют
Для приготовления ингаляционного раствора следует к рекомендуемой дозе препарата добавить 3 мл физраствора.
Также можно препаратпредварительно развести в физрастворе:
Для взрослых и детей старше 2 лет - в соотношении 1:6 (на 1 мл препарата 6 мл физраствора) и ингалировать по 3 мл полученного раствора на 1 ингаляцию.
Для детей до 2 лет - в соотношении 1:12 (на 1 мл препарата 12 мл физраствора) и ингалиро-вать по 3 мл полученного раствора на 1 ингаляцию.
Применять с осторожностью, увеличивает частоту сердечных сокращений! Не применять без консультации врача!

Нафтизин, действующее вещество: нафазолин (капли назальные, 0,05%-ный и 0,1%-ный раствор) - Аллергический стеноз (отек) гортани, стеноз (отек) гортани при ларингите, ларинготрахеите и крупе
Для приготовления ингаляционного раствора следует 0,05%-ный препарат развести с физраствором в соотношении 1:5 (на 1 мл препарата 5 мл физраствора) или 0,1%-ный препарат развести в соотношении 1:10 (на 1 мл препарата 10 мл физраствора).
Для снятия отека однократно ингалируют 3 мл полученного раствора, при необходимости процедуру повторяют.

8. Противокашлевые средства

Лидокаин, (2%-ный раствор гидрохлорида лидокаина) - Навязчивый сухой кашель. Местное анестезирующее действие
Взрослым и детям старше 12 лет - 2 мл препарата на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Детям от 2 до 12 лет - 1 мл препарата на 1 ингаляцию, 1-2 раза в день
Для приготовления ингаляционного раствора следует к рекомендуемой дозе препарата добавить 2 мл физраствора.
Применять с осторожностью, имеются очень серьезные противопоказания! Не применять без консультации врача!

Туссамаг, фитопрепарат (капли на основе экстракта тимьяна) - Заболевания верхних дыхательных путей, сопровождающиеся непродуктивным кашлем
Для приготовления ингаляционного раствора препарат необходимо предварительно развести в физрастворе:
Для взрослых и детей старше 17 лет - в соотношении 1:1 (на 1 мл препарата 1 мл физраствора)
Для детей от 6 до 16 лет - в соотношении 1:2 (на 1 мл препарата 2 мл физраствора)
Для детей от 1 до 5 лет - в соотношении 1:3 (на 1 мл препарата 3 мл физраствора)
На 1 ингаляцию используют 3-4 мл полученного раствора, 3 раза в день.
Нарзан не подогретый и с газиками заливали и распыляли рядом с ребенком(ребёнок аллергик) врач, сказала даже если сидеть в радиусе 1 метра все попадает , а муж себе заливает раствор от кашля Амбробене.. пару дней делает и кашель проходит
Натрия хлорид (Физраствор)

Фармдействие.
Хлористый натрий содержится в плазме крови и тканевых жидкостях организма (концентрация около 0,9%), являясь важнейшим неорганическим компонентом, поддерживающим соответствующее осмотическое давление плазмы крови и внеклеточной жидкости. В организм натрия хлорид поступает в необходимых количествах с пищей. Дефицит может возникать при различных патологических состояниях, сопровождающихся повышенным выделением, при отсутствии компенсирующего поступления с пищей. Усиленная потеря ионов калия и хлора имеет место при длительном сильном холероподобном поносе, неукротимой рвоте, обширных ожогах, гипофункции коры надпочечников. При снижении концентрации натрия хлорида в плазме крови, вода переходит из сосудистого русла в межтканевую жидкость и развивается сгущение крови. При значительном дефиците спазмируются гладкие мышцы и появляются судорожные сокращения скелетной мускулатуры, нарушаются функции нервной и сердечно-сосудистой систем.
Растворы натрия хлорида широко используются в медицинской практике и в зависимости от концентрации разделяются на изотонический (0,9%) и гипертоничекий. Раствор (0,9%) натрия хлорида изотоничен плазме крови человека и поэтому быстро выводится из сосудистого русла, лишь временно увеличивая объем циркулирующей жидкости, поэтому его эффективность при кровопотерях и шоке недостаточна. Гипертонические растворы (3-5-10%) применяются внутривенно и наружно. При наружной аппликации они способствуют выделению гноя, проявляют антимикробную активность, при внутривенном введении усиливают диурез и восполняют дефицит ионов натрия и хлора.

Показания.
Раствор 0,9% применяется в качестве дезинтоксикационного средства, для коррекции состояния при обезвоживании, для растворения других лекарственных препаратов.

Ограничения.
При нарушениях функции почек и сердечной недостаточности большие объемы назначают с осторожностью. физ раствор, даже если лишний кубик дольешь к лекарству - хуже не будет...
обычно минимально разводится один к одному.. тоесть кубик лекаства + кубик физраствора... (я добавляю 2... хорошо увдажняет слизистую...)
к с тати.. если нет физраствора можно его запросто заменить боржоми без газа )

Обязательно проконсультируйтесь с врачом об использовании приведенных ниже рецептов для ингаляций и длительности их приема.
Антисептические сборы

Выраженным антисептическим действием (при острых респираторных и простудных заболеваниях) обладают настои зверобоя и эвкалипта:

1. Листьев эвкалипта 10 г .
Цветков ромашки аптечной 12 г .
Залить 200 мл кипятка, настоять 1 час, процедить; по 10 мл на ингаляцию.

2. Листьев эвкалипта 6 г .
Цветков календулы 10г.
Травы зверобоя продырявленного 10 г .
Залить 250 мл кипятка, настоять 1 час, процедить; по 10 мл на ингаляцию.

3. Настоя листьев эвкалипта 10,0:200 мл
Водного раствора меда 3-5% 100 мл
Смешать; по 10 мл на ингаляцию.

4. Листья малины 10 г .
Травы мать-и-мачехи 10 г .
Цветки липы 10 г .
20 г. сбора залить 200 мл. кипятка, настаивать 1 час. По 10мл. отвара на ингаляцию.

5. Листьев багульника болотного 10 г .
Травы душицы обыкновенной 20 г .
Травы мать-и-мачехи 20 г .
20 г. сбора залить 200 мл кипятка, настаивать 1 час. По 10 мл. на 1 ингаляцию.

6. Отвара череды трехраздельной 10г : 200 мл воды
Настоя травы зверобой 15г : 200 мл воды
Настоя цветов душицы 15г : 200 мл воды
Смешать по 10 мл на 1 ингаляцию.

Антисептические растворы

Хорошими антисептическими свойствами обладает сок каланхоэ или сок алоэ, смешанный с 5-10% раствором натурального меда.
Для профилактики обострений инфекционно-воспалительного процесса в периоды эпидемий ОРВИ безопасным, полезным и эффективным средством являются ингаляции фитонцидов - «натуральных антибиотиков», приготовленных самой природой. Наиболее доступны для лечения фитонциды лука, чеснока, эвкалипта. Свежеприготовленный сок лука или чеснока, разведенный в 20-40 раз водой, - отличное средство для лечения и профилактики любой инфекции.

1. Сок лука и чеснока
Содержит фитонциды и обладает противомикробным действием.
На одну ингаляцию растворяют 3 капли свежеприготовленного сока лука или чеснока в 5мл физиологического раствора или кипяченой воды.

2. Сок каланхое
Обладает противовирусным и противовоспалительным действием.
Для ингаляций готовят 30 % раствор - 1 мл сока разбавить в 5 мл изотонического раствора натрия или кипяченой воды.

3. Мед натуральный цветочный
Мед натуральный цветочный содержит витамины, фолевую и пантотеновую кислоту, ферменты и минеральные вещества, обладает противовоспалительным действием. Для ингаляций ежедневно приготовляют свежий раствор меда, 1-2 чайные ложки меда растворить в кипяченой воде (100 мл).
Для аэрозоля используют 5 мл раствора.
Ингаляции проводят ежедневно по 2 раза.

4. Раствор фурацилина
Раствор фурацилина обладает дезинфицирующими свойствами, ингаляции с этим раствором предупреждают проникновение воспаление в более глубокие отделы бронхиального дерева, помогают избавиться от катаральных явлений слизистой оболочки дыхательных путей. Для ингаляции используют готовый 0,024% раствор фурацилина по 4-5 мл на одну ингаляцию 2 раза в день.

5. Ротокан
Представляет собой экстракт из растений, обладающих противовоспалительными свойствами и традиционно использующихся в фитотерапии - ромашки, календулы и тысячелистника. Показан для лечения острых воспалительных заболеваний верхних и средних дыхательных путей. Раствор для ингаляций готовят путем разведения ? чайной ложки ротокана в 100мл физиологического раствора хлористого натрия. Лечебная доза: 3-4 мл 2-3 раза в день. В случаях навязчивого сухого кашля как симптоматическое средство можно использовать ингаляции Лидокаина через ингалятор.

Отхаркивающие сборы
При кашле с вязкой трудноотделяемой мокротой рекомендуются ингаляции следующих сборов:

1. Листьев мать-и-мачехи 15 г .
Цветков коровяка скипетровидного 15 г .
Цветков бузины 15 г .
Залить 0,5 л кипятка, настоять 1 час, процедить; по 10 мл на ингаляцию.

2. Листьев первоцвета 20 г .
Травы термопсиса 0,6 г .
Залить 200 мл кипятка, настоять 1 час, процедить; по 10 мл на ингаляцию.

3. Листьев подорожника большого 10г.
Листьев мать-и-мачехи 10 г .
Листьев багульника 10 г .
Залить 300 мл кипятка, настоять 1 час; процедить; по 10 мл на ингаляцию.

4. Почек сосны 25 г .
Цветков ромашки аптечной 25 г .
Залить 0,5 л кипятка, настоять 1 час, процедить; по 10 мл на ингаляцию.

5. Солодка 10 г .
Шалфей 10 г .
Ромашка аптечная 5 г .
Череда трехраздельная 5 г .
Лист эвкалипта 10 г .
Цветки календулы 10 г .
10 г. смеси залить 200 мл. кипятка, заварить в термосе на 2-3 часа. По 10 мл. на ингаляцию, длительность 5-7 минут.

Противогрибковые сборы

Умеренное противогрибковое действие оказывают следующие сборы лекарственных растений:
1. Листьев брусники
Травы зверобоя продырявленного по 15 г .
Залить 300 мл кипятка, настоять 1 час, процедить; по 10 мл на ингаляцию.

2. Отвара листьев и стеблей березы 10:200 мл
Настоя цветков черемухи 15:200 мл.
Смешать; по 10 мл на ингаляцию.

Вяжущие и противовоспалительные сборы

Вяжущие и противовоспалительные смеси лекарственных растений способствуют более полному очищению дыхательных путей, устранению неприятного запаха и регенерации слизистой при большинстве хронических заболеваний.

1. Отвара коры дуба 20:200 мл
Настоя листьев шалфея
Настоя травы зверобоя
Настоя цветков календулы
Настоя цветков ромашки
по 15:200 мл
Смешать; по 10 мл на ингаляцию.

2. Цветков ромашки аптечной 20 г .
Листьев черной смородины 20 г .
Травы череды 8 г .
Залить 200 мл кипятка, настоять 1 час,
процедить; по 10 мл на ингаляцию.

3. Настоя листьев и стеблей ежевики 20:200 мл
Настоя листьев мать-и-мачехи 15:100 мл
Отвара коры дуба 10:100 мл
Смешать; по 10 мл на ингаляцию.

4. Настоя травы мяты перечной
Настоя травы тысячелистника
по 10:200 мл
Отвара коры калины 15:200 мл
Смешать; по 10 мл на ингаляцию.

5. Травы тысячелистника 10 г .
Листьев подорожника большого 10 г .
Цветков бессмертника песчаного 10 г .
Залить 200 мл кипятка, настоять 1 час, процедить; по 10 мл на ингаляцию.
При атрофических процессах слизистой оболочки дыхательных путей рекомендуются следующее:
Лекарственные растительные средства:
1. Листья эвкалипта 10 г .
Листья мяты перечной 15 г .
Цветков календулы лекарственной 15 г .
Цветков ромашки аптечной 15 г .
Корневища герани луговой 15 г .
20 г. сбора залить 200 мл кипятка, настаивать 1 час 10 мл отвара на 1 ингаляцию.
2. Настоя листьев подорожника большого 5г.: 200 мл. воды
Настоя травы зверобоя по 10 г .: 200 мл воды
Настоя листьев эвкалипта 5г.: 200 мл воды
Смешать настои, использовать 10 мл смеси настоев на 1 ингаляцию.

Водные растворы

1. Сок виноградный натуральный
Сок виноградный содержит большое количество витаминов и минеральных веществ, курс лечения 10-15 процедур.

2. Изотонический раствор хлорида натрия
Изотонический раствор хлорида натрия увлажняет слизистую оболочку на всем ее протяжении от ротоглотки до мелких бронхов и уменьшает катаральные явления. Для одной процедуры необходимо взять 5 мл раствора 1-2 раза в день.

3. Водный раствор прополиса
Водный раствор прополиса обладает иммуностимулирующим и противовоспалительным действием. 1 каплю раствора разбавить в 5 мл физиологического раствора хлорида натрия (NaCl 0.9%) или фурацилина. Проводят 1-2 ингаляции в день.
4. Физиологический 0,9% раствор хлорида натрия или слабощелочные минеральные воды типа «Боржоми», «Нарзан». Хорошие средства при любых простудных заболеваниях и лёгких формах бронхита и астмы. Увлажняют слизистую оболочку на всём её протяжении от ротоглотки до мелких бронхов, смягчая катаральные явления, и увеличивают жидкую часть бронхиального секрета. Берётся 3 мл раствора на ингаляцию (минеральную воду необходимо отстоять до дегазации). Применять 3-4 раза в день.
5. Гипертонический раствор Натрия Хлорида (3 или 4%). Главное показание к применению - вязкая мокрота в бронхах с невозможностью откашляться. Обладает мягким дезинфицирующим действием. Можно использовать при малом количестве секрета с целью получения мокроты для анализа, так называемая «индуцированная мокрота». С осторожностью следует применять у пациентов с бронхиальной астмой, так как часто провоцируется бронхоспазм. На ингаляцию используется 4-5 мл раствора 1-2 раза в день.

Масляные растворы
При атрофических процессах целесообразно использовать растительное масло (предпочтительнее оливковое) 1-2 капли масла разбавить в 5мл. физиологического раствора хлорида натрия (NaCl) 1-2 ингаляции в день .

Правила проведения ингаляций
1. Ингаляции следует принимать не ранее чем через 1-1,5 часа после еды, при этом не следует отвлекаться разговором. После ингаляций в течение 1 часа не рекомендуется разговаривать, принимать пищу, выходить на улицу (в прохладную погоду).
2. При заболеваниях верхних дыхательных путей (носа, околоносовых пазух и носоглотки) вдох и выдох необходимо делать через нос, используя маску. Дышать спокойно, без напряжения.

Ингаляции прополисом: избавляемся от бронхита | Кубанский пчеловод

Сейчас не самый сезон для различных простудных заболеваний, но летом люди тоже болеют. Поэтому решил поделиться с вами действенным методом, который будет спасением для многих - прополисные ингаляции.

Оригинал фото с сайта dp3vlg.ru

Оригинал фото с сайта dp3vlg.ru

С чем помогут справиться прополисные ингаляции?

Первое и основное - это бронхит. Ингаляции вообще хорошо помогают при бронхите, а прополисные тем более. Хотя я сталкивался с расхожим мнением врачей. Современные терапевты не назначают уже ингаляции. Я считаю, что зря. Но им виднее.

В 14-16 лет у дочки часто был бронхит. Спасались именно ингаляциями, но, к сожалению, травяными, а не прополисными.

С чем еще могут справиться ингаляции прополисом? С ринитом, синуситом, бронхиальной астмой. Спектр не такой широкий, действительно. Но это именно целенаправленное избавление и профилактика от таких болячек.

Фото с сайта dommeda.ru

Фото с сайта dommeda.ru

Как использовать прополис для ингаляций?

Можно через небулайзер, а можно и дедовским способом - через кастрюлю. Небулайзер, конечно, лучше, так как он крошечные частицы раствора распыляет прямо в носоглотку. Но если у вас его нет и покупать вы не собираете, то кастрюля и полотенце подойдут.

Можно использовать водный экстракт или настойку прополиса, а можно и спиртовой. Главное - учитывать пропорции. Насчет водного экстракта - не знаю, так как не пробовал. Если спиртовой, то 1-2 мл на 30 мл физраствора. В небулайзер необходимо капать всего пару капель (зависит от типа вашего небулайзера). Мой курс был - 10 дней. Делал ингаляции 1 раз в день, почти всегда вечером перед сном.

Помните, что необходимо проконсультироваться с врачом! Если у вас аллергия на пчелопродукты, то такой способ лечения вам не подойдет.

Для того, чтобы дышать парами прополиса над кастрюлей, надо 700 мл или 1 л (зависит от размера кастрюли) воды довести до кипения, дать совсем немного остыть и влить туда примерно 1 чайную ложку спиртовой настойки. Только будьте осторожны, не наклоняйтесь слишком низко над кастрюлей.

Напоминаю, что я не апитерапевт и не врач. Ничего никому не рекомендую. Просто пишу про свой опыт. Я делал ингаляции с такими пропорциями.

Если вам было интересно, ставьте лайки и подписывайтесь на канал, чтобы не пропустить мои публикации в вашей ленте Яндекс.Дзена.

спиртовая настойка прополиса, прополисная мазь, ингаляции

Прополис – вещество, собираемое медоносными пчелами в природе. Исследователи пока не могут точно определить ни полный состав этого вещества, ни растения, с которых пчелы его получают. Одни склоняются к тому, что источником прополиса являются те или иные виды деревьев, другие отдают предпочтение травам и кустарникам. Скорее всего, правы и те и другие. В лесной местности прополис выделяют некоторые виды деревьев, а в степной – травы и кустарники. Пчелы северных видов собирают намного больше прополиса, чем южные пчелы.

 

В пчелиных ульях и лесных дуплах прополис служит для дезинфекции всего внутреннего пространства. Обладая ярко выраженными бактерицидными свойствами, прополис спасает пчелиные семьи от многих болезней, которым они подвержены. Внутри своего жилища пчелы стремятся заделать все трещины и щели этим веществом. Порой они приносят в ульи так много прополиса, что он стекает волнами по стенкам. В теплое время прополис очень пластичен, обладает хорошими клеящими свойствами. В охлажденном виде он становится хрупким. Цвет прополиса бывает различным, от светло-серого до темно-красного. Но цвет не влияет на его физические и целебные свойства.

Прополисные  мазь и спиртовая настойка

 

Для людей прополис оказался даже более полезным, чем для самих пчел. Трудно найти такую болезнь, которую прополис не мог бы или исцелить быстро и полностью, или заметно облегчить ее течение. Например, прополисная мазь служит одним из самых мощных средств против разного вида ожогов, разнообразных кожных болезней, порезов и ссадин. Обладая сильными ранозаживляющими, обезболивающими и регенерирующими свойствами, прополисная мазь не только исцеляет травматические повреждения кожи и снимает боль во время лечения, но и не позволяет образовываться рубцам.

Разумеется, это относится к настоящей прополисной мази, а не к гомеопатической, польза от которой вызывает серьезные сомнения. Кстати, анестезирующее действие прополиса в три раза сильнее, чем у кокаина, и в пять раз – чем у новокаина. К буквально чудесным свойствам прополиса можно отнести еще то, что он имеет не меньшие антимикробные свойства, чем антибиотики. В отличие от последних, прополис действует избирательно. Безжалостно истребляя вредоносную микрофлору, он щадит полезную.

 

Спиртовая настойка прополиса используется как для наружного, так и для внутреннего употребления. С ее помощью можно исцелить многие болезни, даже столь сложные и опасные, как язва желудка. Обычно, при любом виде использования, спиртовую настойку разводят до нужных пропорций кипяченой водой комнатной температуры.

 

Самый простой и распространенный способ использования спиртовой настойки прополиса.

В стакан со 150-200 мл воды наливают 1-2 столовых ложки настойки и перемешивают, до образования однородной и непрозрачной светлой эмульсии. Принимают 1-2 раза в сутки натощак, и после приема не рекомендуется есть или пить хотя бы 15-30 минут. Концентрация и количество раствора зависят от заболевания, возраста человека и индивидуальной переносимости пчелопродуктов. Скажем, при небольшом желудочно-кишечном расстройстве или легком отравлении некачественными продуктами питания требуется меньшее количество, чем при язвенной болезни.

 

В домашних условиях приготовить настойку довольно несложно. Для этого в емкость с 96%-ным спиртом добавляют 10% измельченного прополиса. Настаивают в плотно закрытой посуде, в темном месте, при комнатной температуре, в течение 21 дня. Состав нужно перемешивать 1-2 раза в сутки. После окончания процесса экстракции настойку фильтруют, затем хранят до употребления в темном месте. Можно использовать и готовую настойку из любой аптеки, чтобы не возиться с приготовлением лекарства. Аптечная настойка действует тоже хорошо, это подтверждается практикой.

 

Например, когда у меня самого случилась язвенная болезнь желудка, то к врачам за лечением обращаться не стал. Решил попробовать вылечиться самостоятельно, при помощи спиртовой настойки прополиса. Рекомендованное в этом случае лечение — прием настойки в течение 18 дней подряд, затем перерыв на 25-30 дней, и еще один 18-дневный курс. Несколько раз я принимался за лечение, но когда, после 2-4 дней переставал чувствовать болезнь, то переключался на насущные дела, и болезнь вскоре о себе напоминала. Наконец, я все же сумел, без перерывов, принимать настойку прополиса в течение 8 дней подряд, но затем опять забросил лечение. Думал, что болезнь снова вернется, но вот уже более 20 лет с того времени язва молчит.

Я никого не призываю заниматься самолечением, особенно при таком серьезном диагнозе, как язвенная болезнь желудка. Возможно, мне просто повезло. Однако, этот случай может, думается, служить доказательством лечебной силы прополиса. Кстати, спиртовая настойка прополиса, которая меня исцелила, покупалась просто в аптеке. Несмотря на то, что на этикетках пузырьков было написано «для наружного употребления», она отлично сработала при употреблении внутреннем. И сейчас, несмотря на то, что прополиса у меня постоянно имеется немалое количество, полученное от собственных пчел, я вполне доверяю аптечной настойке, и она меня многократно выручала в разных случаях жизни, от легкого расстройства желудка до серьезных травм.

 

В чистом виде прополисом нужно пользоваться осторожно. Это вещество настолько активно, что прямой контакт с ним может приводить к нежелательным последствиям. Например, пчеловоды знают, что при обращении с ульями, рамками и другим инвентарем на кожу пальцев неизбежно налипает прополис. Собственно говоря, вреда для здоровья это никакого не приносит, но кожа на пальцах может неоднократно заменяться новой. Кроме того, прополис с кожи плохо отмывается.

 

Ингаляция прополисом и воском.

 

Один из видов лечебного использования прополиса – применение его в ингаляции, то есть при вдыхании выделяемых им полезных веществ. С помощью прополисной ингаляции излечивается большое число заболеваний уха, горла и носа, а также легких и верхних дыхательных путей. Встречаются сведения, что прополисные ингаляции способны излечить даже такое опасное заболевание, как туберкулез легких. А при лечении этим способом столь неприятной и распространенной болезни, как гайморит, быстро снимается сильная боль.

 

Много лет назад один мой знакомый заболел раком легких. Его оперировали, но безуспешно. Врачи сказали родным, что надежды нет, время упущено. Человек сильно мучился, инъекции наркотиков больше не помогали. Я принес прополис и воск, с женой этого знакомого мы соорудили ингалятор из простого чайника, и через резиновую трубку давали ему дышать. Боль быстро исчезала, и больной человек мог, наконец получить передышку, нормально поесть и поспать. В этой истории нет счастливого конца, и мой знакомый умер, но меня утешает то, что я смог все-таки облегчить его страдания. Как мы видим, обезболивающие свойства прополиса очень высоки. Могу даже допустить мысль, что в случае своевременного применения ингаляция прополисом и воском способна излечивать серьезные болезни.

 

Для ингаляций требуется кастрюля, наполовину заполненная водой, и небольшая емкость с воском и прополисом (например, плоская банка из-под консервов). Когда вода в стоящей на огне кастрюле закипает, температуру нагрева надо уменьшить и поставить на воду емкость с воском и прополисом. Примерное соотношение воска к прополису 2:1 или 3:1, а количество зависит от размера банки, с учетом того, что та должна плавать по поверхности воды. Кастрюлю закрывают крышкой и держат на малом огне, пока воск и прополис не расплавятся полностью. Нужно следить, чтобы вода не бурлила и не заливалась в емкость с воском и прополисом.

 

После расплавления лечебного состава кастрюлю можно снять с огня на подставку. Дышать горячим паром от воско-прополисной смеси требуется примерно по 10-15 минут за одну процедуру, накрывая голову и кастрюлю куском материи (например, большим полотенцем).  Количество процедур в сутки может составлять от одной до трех, в зависимости от вида и тяжести протекания болезни. Состав можно использовать многократно, до его полного зачерствения.

 

Другие виды лечения прополисом

 

Самый простой способ лечения прополисом – его прием внутрь в виде небольших шариков, размером со среднюю таблетку. За один прием используют по 2-3 шарика. Этот способ лечения прополисом применяют, если нет под рукой специальных препаратов с прополисом. Таким образом можно ускорить излечение при желудочно-кишечных расстройствах и других заболеваниях желудочно-кишечного тракта. Но нужно помнить, что суточная доза приема внутрь прополиса, в любых видах, не должна для взрослого человека превышать 8 граммов. Иначе может оказаться перегруженной печень. Поэтому лечение прополисом для людей  с заболеваниями печени не рекомендуется.

 

При заболеваниях ушей (например, воспалениях среднего уха) рекомендуется вводить в них на несколько часов турундочки, пропитанные водно-спиртовой эмульсией прополиса. Чистой настойкой прополиса пропитывать нельзя, нужно разводить ее водой, чтобы не получить ожога.

 

При  лечении насморка или заложенности носа отлично помогает прополисная мазь. Ей смазывают внутреннюю полость носа (с помощью, например, ваты, намотанной на простую спичку).

 

Лечение прополисом настолько разнообразно, а список болезней, которые излечиваются с его помощью, столь велик, что дать исчерпывающие рекомендации по использованию этого чудесного творения Природы и пчел довольно затруднительно. Надеюсь, что даже небольшие рекомендации, которые здесь мной приведены, могут быть полезными для Вас и Ваших знакомых и близких. Но сам я желаю, чтобы все были здоровы и счастливы!

Посмотрите также видео о пользе прополиса:

Еще статьи раздела народный целитель:
















</p> <div><img src=»//mc.yandex.ru/watch/12101677″ style=»position:absolute; left:-9999px;» alt=»» /></div> <p>

Ингаляции при ангине: небулайзер для детей, ингаляции при гнойной ангине

Можно ли делать ингаляцию при ангине? Этот метод лечения оправдан, поскольку помогает быстрее избавиться от налета и снять воспаление. Применять его следует в составе комплексной терапии, то есть вместе с антибиотиками и полосканиями.


Преимуществом ингаляции является то, что больной может провести процедуру самостоятельно в домашних условиях. Однако без назначения врача прибегать к данному методу не следует.

Способы проведения процедуры

Ингаляции при ангине делают разными методами, самый простой из которых — дышать паром, накрыв голову полотенцем. Заваренные лекарственные растения при этом помещаются в обычную кастрюлю.

Можно использовать и специальный ингалятор при ангине. С ним процедура становится более комфортной.

Небулайзер при ангине

Небулайзер представляет собой специальный аппарат для вдыхания лекарственных средств. Он позволяет делать так называемые влажные ингаляции, которые, в отличие от прочих (паровых, сухих, масляных), абсолютно безопасны. Можно ли при ангине делать ингаляцию небулайзером? Бесспорно, да, кроме того, при правильном использовании этот аппарат подходит даже для лечения грудничков. Небулайзер действует следующим образом: в него засыпается сухая лекарственная смесь, заливается физиологический раствор, далее прибор преобразует эту жидкость в аэрозоль.

При ангине можно дышать данным ингалятором при помощи трубки или мундштука. Раствор распыляется непосредственно на очаг инфекции и охватывает все пораженные болезнью участки. Есть несколько видов небулайзеров:

  • компрессорный;
  • ультразвуковой;
  • меш-небулайзер.

Средства для ингаляций

Лучше дышать над свежеприготовленным лечебным средством, поскольку его активные вещества в этом случае будут действовать более эффективно. Ингаляции при тонзиллите можно делать с использованием шалфея, ромашки, зверобоя, мази «Звездочка», а также эфирных масел.

Смягчить боли в горле позволит и простая вода с добавлением соды. Традиционный способ лечения при ангине — дышать над вареной картошкой. Ее варить нужно до тех пор, пока вода не приобретет характерный картофельный запах. Для усиления эффекта можно добавить корицу или пихтовое масло.

При ангине хороший эффект дают ингаляции с луковым соком. Его необходимо развести раствором хлорида натрия в пропорции 1:2.

Для ингаляций с помощью небулайзера следует использовать медикаментозные средства — антибиотики, антисептики, препараты для укрепления иммунитета. Они при этом дают не менее выраженный эффект, чем при традиционных полосканиях. Если лечащий врач назначил определенные препараты из этой группы, проверить наличие лекарств в аптеках Киева можно через наш ресурс. 

Ингаляции при гнойной ангине

Обычно именно данная форма заболевания причиняет наибольшее беспокойство. Ингаляции при гнойной ангине в острой форме делать нельзя. Направленный тепловой поток может спровоцировать прорыв гнойного содержимого, которое в результате разнесется по кровотоку. В результате патогенная флора способна вызвать опасный патологический процесс в любом участке организма.

Лучшее средство от гнойной ангины — это антибиотики, которые воздействуют непосредственно на причину болезни. Они уничтожают патогенные микроорганизмы и предотвращают осложнения.

Хорошо использовать лекарство от гнойной ангины, которое действует местно, но в острый период это могут быть полоскания либо таблетки для рассасывания. Если гнойники прорвались либо их рост остановился, что сопровождается снижением температуры, то ингаляции уже безопасны. И все же лучше проконсультироваться с врачом прежде, чем начинать их применять.

Ингаляции при ангине у детей

Горячий пар маленьким детям противопоказан, так как он может травмировать нежные ткани слизистой оболочки. Лучше всего делать ингаляции при ангине у детей небулайзером.

Растворы с антибиотиками или гормональными средствами при лечении ребенка следует применять осторожно. Можно использовать для ингаляции при ангине небулайзером препараты Ротокан и Тонзилгон-Н, а также календулу, настойку эвкалипта или прополиса. Ингаляции с обычной минеральной водой очень хорошо увлажняют и убирают воспаление.

Ингаляции небулайзером при ангине у детей до 6 месяцев без контроля специалиста применять нельзя. Для ребенка постарше длительность процедуры не должна превышать 5 минут.

Препараты для небулайзера при насморке для эффективной терапии

Чем мельче частицы, которые при вдыхании поступают в организм человека, страдающего от насморка, тем большего и скорейшего лечебного эффекта можно ожидать. Всасывание происходит локально, вещество достигает определенного участка и моментально всасывается, облегчая состояние пациента. При выборе лекарственных средств нужно учитывать большое число факторов – важен детальный подход.

Какие используют препараты для небулайзера при насморке

Ингаляционная терапия при помощи небулайзеров является не только наиболее действенной, но и щадящей – число возможных побочных эффектов снижено до минимума. Дозировка лекарства, которое подается больному, рассчитана с большой точностью, по этой причине отсутствует возможность передозировки препаратом. Тем не менее проводить ингаляции небулайзером маленьким детям нужно строго с разрешения лечащего врача.

Ознакомьтесь со следующим списком – это препараты применимые для небулайзера при насморке (проводить лечение лучше, выбрав из самых популярных небулайзеров, которые присутствуют в продаже):

  • Средства на основе лекарственных растений – они должны быть непременно из аптеки, домашнее изготовление не приемлемо для данных приборов;
  • Антибактериальные средства, которые будут освобождать носовые пазухи и пути от инфекционных очагов;
  • Средства для разжижжения мокроты и ее вывода;
  • Солевые растворы;
  • Растворы щелочной природы.

Обращайте внимание на то, с какими типами аппаратов могут взаимодействовать данные лекарственные группы. Можно сказать, что компрессионный небулайзер в этом плане отличается универсальностью – то есть ограничений у него минимальное количество.

Рецепты для ингаляций

Начнем с того, что любое лекарство для небулайзерной терапии может разбавляться только при помощи физиологического раствора, никогда не допускается использование обычной воды. Это меньше всего касается парового небулайзера – здесь ее применение необходимо. Плюсы лечения насморка этим прибором в том, что не страдает слизистая оболочка, кроме того, всегда можно проводить профилактику.

Итак, вот несколько рецептов, которые помогут справиться с насморком:

  • Раствор фурацилина поможет при острой инфекции – количество процедур должно быть не менее двух в сутки;
  • При этой же проблеме хорошо помогает спиртовая настойка календулы, разбавленная физраствором в соотношении 1:40;
  • При воспалительных процессах в слизистой носа применяется спиртовая настойка прополиса с физраствором в соотношении 1:20. С осторожностью применяется при аллергии, не стоит назначать маленьким детям;
  • Хлорофиллипт в отношении 1:10 применяется при насморке, спровоцированном стафилококком;
  • Для профилактики насморка, вызванного вирусом, рекомендуется использовать интерферон – одна ампула растворяется в 3 мл физраствора.

При лечении нужно четко следовать рекомендациям и противопоказаниям, используйте только те препараты для небулайзера при насморке, которые назначит специалист. Благодаря грамотному подходу можно за считанные дни избавиться от насморка, не провоцируя каких-либо нежелательных последствий.

Может ли вдыхание аэрозольного меда и настойки прополиса защитить от пандемии COVID-19?

Гипотеза - Апитерапевтический журнал (2021)

Назад к древнему средству: можно вдыхать аэрозольный мед и настойку прополиса Защититься от пандемии COVID-19?

Яхья Аль Наггар 1 * , Яхья Аль Наггар 2 , Галал Яхья 3 , Галал Яхья 4 , Саад Аль-Кахтани 5 и Стефан Стангачиу

1 Зоологический факультет, Университет Танта, Танта, Египет
2 Зоологический факультет, Галле-Виттенбергский университет Мартина Лютера, Галле, Германия
3 Кафедра микробиологии и иммунологии, Загазигский университет, Эль-Шаркия, Египет
4 Кафедра молекулярной G-энетики, Технический университет Кайзерслаутерна, Кайзерслаутерн, Германия
5 Департамент сельского хозяйства засушливых земель, Университет короля Фейсала, Аль-Ахса, Саудовская Аравия
6 Apitherapy Consulting and Trading International SRL, Сат Мерени, Дамбовита, Румыния

* Автор для переписки:
Яхья Аль Наггар, факультет зоологии, Университет Танта, Египет, Эл. Почта: [адрес электронной почты защищен]

Дата публикации: 01 марта 2021 г.

Абстрактные

Вторая волна пандемии COVID-19 обостряется в большинстве стран, создавая состояние международной готовности.Спустя год после появления COVID-19, хотя некоторые вакцины COVID-19 в настоящее время производятся и доступны, возникают новые опасения относительно их безопасности и эффективности, особенно в связи с появлением мутировавших штаммов вируса SARS-CoV-2. Здесь мы предлагаем альтернативный, недорогой и естественный подход, который может ослабить или / или устранить респираторные симптомы COVID-19 путем вдыхания аэрозольного меда и настойки прополиса с температурой тела, особенно в развивающихся странах. Вдыхание паров этой смеси также может бороться с вирусом, модулировать иммунную систему и ослаблять чрезмерную воспалительную реакцию COVID-19 до, во время или после ее возникновения.Эта стратегия также может быть важна как домашнее средство и для медицинских работников, поскольку им необходимо принимать профилактические меры в любое время.

Ключевые слова

Мед; Прополис; COVID-19 респираторные симптомы; Апитерапия; Домашнее средство; Разработка страны

Введение

Пандемия COVID-19 вызывает глобальную тревогу из-за его разрушительного воздействия на здоровье человека и мировая экономика. Это гораздо более смертоносно, чем грипп и другие виды заболеваний, у которых всемирное влияние в последнее время [1].Пациенты инфицированы SARS-CoV-2 развиваются различные симптомы, такие как сухость кашель, лихорадка, головная боль, утомляемость, одышка, и диарея, и некоторые из них не проявляют никаких симптомов вообще. В 5% случаев болезнь прогрессирует и может привести к острому повреждению легких (ОПЛ), которое проявляется в острый респираторный дистресс-синдром (ОРДС), респираторный недостаточность, сердечная недостаточность, сепсис и внезапная сердечная недостаточность арест в течение нескольких дней [2,3]. Различное общественное здравоохранение были реализованы инициативы по снижению последствий вспышки, но с ограниченным успехом, поскольку вирус продолжает распространяться.Итак, нам все еще интересно, если худшее еще впереди. По крайней мере, это опасение, что пандемия нового коронавируса SARS-CoV-2 пойдет по пути испанского грипп в 1917 и 1918 годах. Тогда вторая волна была крупнее и смертоноснее, чем первая волна [4].

В то время как некоторые вакцины против COVID-19, такие как BNT162b2 мРНК и Sinopharm в настоящее время распространяются и доступны в некоторых развитых странах, они очень дороги и не будут доступны для разработки страны в ближайшие месяцы, более новые опасения относительно безопасности и эффективности нового разрабатываются и одобряются вакцины [5–9], другой проблемой является появление мутировавших штаммы вируса SARS-CoV-2 [10].Натуральные продукты с доказанной терапевтической и противовирусной активностью может поэтому предоставьте доступный и безопасный способ лечения болезнь [11–14]. Продукты пчеловодства хорошо известны своей пищевой и лечебной ценностью и десятилетиями использовались для различных терапевтических целей [15–19]. Многие исследования предполагают многообещающие эффекты пчеловодческой аптеки против COVID-19 либо прямым противовирусные эффекты их биоактивных пероксидов, пептидов, флавоноиды и фенолы или косвенные эффекты из-за к их иммуномодулирующему действию на иммунную систему хозяина. система и вмешательство в воспалительный процесс хозяина ответ, вызванный инфекцией COVID-19 [20–24].

Кашель обычно связан с поражением верхних дыхательных путей. инфекции и один из основных симптомов COVID-19. Сравнение эффективности гречишного меда к декстрометорфану для лечения детей с ночной кашель и проблемы со сном из-за верхних Задокументирована инфекция дыхательных путей [25]. Кроме того, важность меда Туаланг (TH) в уменьшение острых респираторных симптомов, таких как кашель, ринит и боль в горле оценивались в 2007 г. [26]. Малайзийские паломники хаджа, которые обычно были связаны с этими симптомами при проведении хаджа были исследуемым населением.Пероральный прием меда два раза в день помогли облегчить респираторные симптомы среди паломников. Ингаляции с медом в педиатрии было показано, что он эффективен при лечении острого бронхиального астма [27].

Гипотеза

Мы предполагаем, что вдыхание аэрозольного меда и настойку прополиса можно использовать как профилактическое средство измерить и / или облегчить респираторные симптомы COVID-19. Мед рекомендован как средство первой линии лечение кашля верхних дыхательных путей инфекция Национальным институтом здравоохранения и ухода Excellence (NICE) и Общественное здравоохранение Англии (PHE), что является основным хорошо известным симптомом COVID-19 [28], различные концентрации меда манука, на с другой стороны, неожиданно модулируйте выпуск цитокинов, хемокинов и ферментов, разрушающих матрикс которые контролируют воспалительные и иммунные реакции [29].В настоящее время препараты, регулирующие цитокины штормы и смягчают гипервоспаление, такие как дексаметазон [30] обычно считаются защищающими против острого респираторного дистресс-синдрома (ОРДС) как основная причина смерти из-за тяжелой формы COVID-19 инфекция [31]. Прополис также обеспечивает концентрированный дозировка терапевтических флавоноидов и фенольных соединений [18], которые, с одной стороны, взаимодействуют с механизм созревания и репликации вируса и на с другой стороны, смягчить возможное преувеличенное воспалительное ответ COVID-19.

Перед первым сеансом лечения пациент пройти обследование у врача или практикующего врача. На основании истории болезни пациента будет определено количество сеансов лечения. Доктор или натуропат выполнит 10-минутный тест на вдыхание беспыльного аэрозольного меда и прополиса настойка вместе с больным. Тест жизненно важен для исключение любых аллергических или анафилактических реакций на эта смесь. Двадцать четыре часа спустя первая терапия приложение для пациента может быть выполнено.В концентрации, приготовление аэрозольного меда и настойка прополиса показана на (Рисунок 1).

Для уменьшения потерь прополисных веществ, которые прилипают к внутренним стенкам емкости небулайзера, 10 капли настойки прополиса 20-30% добавляют к 0,5 мл. меда, а затем хорошо перемешать (гомогенизировать). После это первая гомогенизация, 3 мл. физиологического раствора раствор добавляется, и вторая гомогенизация перед внесением конечной смеси в небулайзер [32].

Обсуждение

Лечение заболеваний легких требует внешнего вмешательства для улучшения функций дыхательной системы, особенно при сложных заболевания, такие как вирусные инфекции легких, где механические вентиляция и экстракорпоральная мембранная оксигенация бок о бок с противовирусными препаратами спасают жизнь для предотвращения развития острого респираторного заболевания Отказ (ARF) [33–36]. Проявления инфекции COVID-19 как легкие симптомы, затем прогрессируют в сильно пораженных пациенты с пневмонией и дыхательной недостаточностью или даже полиорганная недостаточность [37–39].Паровые ингаляции традиционно используется как домашнее средство от распространенных простуды и инфекции верхних дыхательных путей [40] с некоторыми ограничениями его безопасности для детей [41]. Дополнительно множество исследований и публикаций. показали важность вдыхания алкоголя в лечение легочного отека и адресное его возможная функция как дезинфицирующее средство от SARS-CoV-2 (COVID-19) в дыхательных путях человека [42,43]. Алкоголь однако вдыхание может вызвать воспалительный процесс. и вредное воздействие на пациентов [44].

Апитерапия (фр. Apithérapie, ср. Лат. Apis - пчела, Ngr. therapeia - лечение) основывается на использовании основных продукты пчеловодства (мед, пыльца, перга, пчелиный воск, маточное молочко, прополис и пчелиный яд) для предотвращения и лечение различных заболеваний, а также в увеличении сопротивление человеческого тела [11,45,46]. Лекарственное использование продуктов пчеловодства известно с незапамятных времен времени, но его академическое и научное измерение появился в Европе около 70 лет назад. В нашем исследовании рекомендуем широкое применение сеансов апитерапии, поскольку апитерапия повышает эффективность дыхательной система [46,47].Апитерапия может применяться от внутриутробного периода до последнего дня жизни и редко развиваются побочные эффекты, приводящие к значительному улучшению клинических параметров. Обычно он нацелен на причины болезни и, таким образом, облегчает симптомы например, насморк, чихание, кашель, рвота и понос. Кроме того, так называемые функциональные заболевания лучше всего реагируют на апитерапию, когда изменения в строении органов не такие глубокие. Большинство воспалений лучше всего поддаются апитерапии. [45].

Мед и прополис в аэрозольной форме и / или на основе паров смесь апитерапевтов, может бороться с вирусом и модулировать иммунную систему с одной стороны и ослабить преувеличенную воспалительную реакцию COVID-19 с другой стороны. Дорогая могла приносят энергию вибрирующим клеткам, которые перемещают реснички которые перемещают слизь изнутри наружу легкое, делает слизь в легких более жидкой и таким образом, он помогает отхаркиванию [48]. Было также обнаружено, что превосходит обычный уход для улучшения симптомов инфекций верхних дыхательных путей [ 49].С другой стороны, прополис помогает клеткам лучше выжить в условиях гипоксемии за счет лучшее функционирование митохондрий [50]. Что еще интереснее, это было обнаружено молекулярным стыковкой глубокое сродство к связыванию 14 выбранных фенольных соединений и терпены, присутствующие в меде и прополисе, против основная протеаза (Mpro) и РНК-зависимая РНК полимеразные (RdRp) ферменты нового 2019-nCoV коронавирус. Из этих соединений п-кумаровая кислота, эллаговая кислота, кемферол и кверцетин обладают сильнейшими взаимодействие с целевыми ферментами 2019-nCoV, и их можно рассматривать как эффективные 2019- Ингибиторы нКоВ [51].

Заключение

Таким образом, предлагаемое приложение может помочь в профилактика сезонной аллергии и астмы; Продукты для ульев также могут предотвращать и / или лечить многие сопутствующие инфекции и сопутствующие заболевания, такие как диабет, сердечно-сосудистые заболевания и ожирение, которые являются состояниями которые приводят к более серьезным осложнениям при заражении COVID-19. Это также может быть необходимо для медицинскому персоналу, так как им может потребоваться немедленная профилактическое действие в любое время.

Ссылки
  1. Вардени О., Маджид М., Соломон С.Д.Применение уроков гриппа к covid-19 во время неопределенности. Тираж. 2020; 141 (21): 1667-9.
  2. Хуанг Ц., Ван И, Ли Х, Рен Л., Чжао Дж, Ху И и др. Клинические особенности пациентов, инфицированных новым коронавирусом 2019 г., в Ухане, Китай. Ланцет. 2020; 395 (10223): 497-506.
  3. Прескорн Ш. 5% населения, подверженного высокому риску тяжелой инфекции COVID-19, поддаются идентификации и должны быть приняты во внимание при возобновлении экономики. J Psychiatr Pract. 2020; 26 (3): 219-27.
  4. Garcia S. Пандемии и традиционные средства на растительной основе. Историко-ботанический обзор в эпоху Covid19. Фронтальный завод им. 2020; 11.
  5. Polack FP, Thomas SJ, Kitchin N, Absalon J, Gurtman A. Безопасность и эффективность вакцины Covid-19 мРНК BNT162b2. N Engl J Med. 2020; NEJMoa2034577.
  6. Folegatti PM, Ewer KJ, Aley PK, Angus B, Becker S. Безопасность и иммуногенность вакцины ChAdOx1 nCoV-19 против SARS-CoV-2: предварительный отчет фазы 1/2, одинарного слепого, рандомизированного контролируемого испытание.Ланцет. 2020; 396 (10249): 467-78.
  7. Knoll MD, Wonodi C. Oxford - Эффективность вакцины AstraZeneca COVID-19. Ланцет. 2020.
  8. Рамасами М.Н., Минасян А.М., Эвер К.Дж., Флаксман А.Л., Фолегатти П.М. Безопасность и иммуногенность вакцины ChAdOx1 nCoV-19, вводимой в режиме первичной бустерной вакцинации у молодых и пожилых людей (COV002): одинарное слепое рандомизированное контролируемое исследование фазы 2/3. Ланцет. 2020; 396 (10267): 1979-93.
  9. Voysey M, Clemens SAC, Madhi SA, Weckx LY, Folegatti PM. Безопасность и эффективность вакцины ChAdOx1 nCoV-19 (AZD1222) против SARS-CoV-2: промежуточный анализ четырех рандомизированных контролируемых испытаний в Бразилии, Южной Африке и Великобритании.Ланцет. 2020.
  10. Brainard J. Опросы экспертов по инфекционным заболеваниям направлены на прогнозирование числа жертв COVID-19. Наука (80). 2020.
  11. Гупта Р.К., Стангачиу С. Апитерапия: комплексное исцеление с помощью пчел и продуктов пчеловодства в странах с плохой системой здравоохранения. В: Пчеловодство для борьбы с бедностью и обеспечения средств к существованию. Дордрехт: Шпрингер Нидерланды; 2014; 413-46.
  12. Chinsembu KC. Коронавирусы и природная аптека для лечения коронавирусной болезни 2019. Рев Бра Фармакогн.2020; 30 (5): 603-21.
  13. Lin LT, Hsu WC, Lin CC. Натуральные противовирусные препараты и лекарственные травы. J Tradit Complement Med. 2014; 4 (1): 24-35.
  14. Ньюман DJ, Крэгг GM. Натуральные продукты как источники новых лекарств за почти четыре десятилетия с 01/1981 по 09/2019. J Nat Prod. 2020; 83 (3): 770-803.
  15. Патель С., Чичелло С. Мед Манука: новая натуральная пища с лечебным применением. Нат Продукты Биопроспект. 2013; 3 (4): 121-8.
  16. Schnitzler P, Neuner A, Nolkemper S, Zundel C, Nowack H.Противовирусная активность и механизм действия экстрактов прополиса и некоторых соединений. Phyther Res. 2010; 24: 20-8.
  17. Ли Дж. А., Ким Ю. М., Хён ПМ, Чон Дж. У., Пак Дж. Яд медоносной пчелы (Apis mellifera) усиливает выведение вируса на ранней стадии заражения вирусом репродуктивного и респираторного синдрома свиней за счет усиления Th2-специфических иммунных ответов. Токсины (Базель). 2015; 7 (5): 1837-53.
  18. Al Naggar Y, Sun J, Robertson A, Giesy JP, Wiseman S. Химическая характеристика и антиоксидантные свойства канадского прополиса.J Apic Res. 2016; 55 (4): 305-14.
  19. Socarras KM, Theophilus PAS, Torres JP, Gupta K, Sapi E. Антимикробная активность пчелиного яда и мелиттина против Borrelia burgdorferi. Антибиотик (Базель, Швейцария). 2017; 6 (4).
  20. Berretta AA, Silveira MAD, Cóndor Capcha JM, De Jong D. Прополис и его потенциал против механизмов заражения SARS-CoV-2 и болезни COVID-19. Biomed Pharmacother. 2020; 131: 110622.
  21. Ян В., Ху Ф, Сюй Х. Пчелиный яд и SARS-CoV-2. Токсикон. 2020; 181: 69-70.
  22. Кумар В., Дханджал Дж. К., Каул С.К., Вадхва Р., Сундар Д. Витанон и фенэтиловый эфир кофейной кислоты, как предполагается, взаимодействуют с основной протеазой (M pro) SARS-CoV-2 и подавляют ее активность. J Biomol Struct Dyn. 2020; 1-13.
  23. Lima WG, Brito JCM, Cruz Nizer WS. Продукты пчеловодства как источник многообещающих стратегий лечения и химиопрофилактики против COVID19 (SARS-CoV). Phyther Res. 2020; ptr.6872.
  24. Al Naggar Y, Giesy JP, Abdel-Daim MM, Javed Ansari M, Al-Kahtani SN.Борьба со второй волной COVID-19: могут ли продукты пчеловодства помочь защитить от пандемии? Saudi J Biol Sci. 2020.
  25. Павел ИМ. Влияние меда, декстрометорфана и отсутствия лечения на ночной кашель и качество сна кашляющих детей и их родителей. Arch Pediatr Adolesc Med. 2007; 161 (12): 1140.
  26. Сулейман С.А., Хасан Х., Дерис З.З., Вахад МСА, Юсоф Р.К. Польза туаланского меда в уменьшении острых респираторных симптомов у малазийских паломников в хадж: предварительное исследование.J ApiProduct ApiMedical Sci. 2011; 3 (1): 38-44.
  27. Камарузаман Н.А., Сулейман С.А., Каур Г., Яхая Б. Вдыхание меда снижает воспаление дыхательных путей и гистопатологические изменения на кроличьей модели хронической астмы, вызванной овальбумином. BMC Complement Altern Med. 2014; 14 (1): 176.
  28. Wölfel R, Corman VM, Guggemos W, Seilmaier M, Zange S. Вирусологическая оценка госпитализированных пациентов с COVID-2019. Природа. 2020.
  29. Влияние меда манука на высвобождение цитокинов, хемокинов dHL-60 и разрушающих матрицу ферментов в условиях воспаления.Med One. 2019.
  30. Дексаметазон у госпитализированных пациентов с Covid-19 Предварительный отчет. N Engl J Med. 2020.
  31. Mehta P, McAuley DF, Brown M, Sanchez E, Tattersall RS, Manson JJ. COVID-19: подумайте о синдромах цитокинового шторма и иммуносупрессии. Ланцет. 2020; 395 (10229): 1033-4.
  32. Донья К. X-й. Румынский конгресс по апитерапии, Сибиу, Румыния. В 2017 г.
  33. Гриффитс М.Д., Маколи Д.Ф., Перкинс Г.Д., Барретт Н., Блэквуд Б. и др. Руководство по ведению острого респираторного дистресс-синдрома.BMJ Open Respir Res. 2019; 6 (1): e000420.
  34. Марини Дж. Дж., Гаттинони Л. Управление респираторным дистресс-синдромом COVID-19. J American Med Asso. 2020; 323 (22): 2329.
  35. Lepper PM, Muellenbach RM. Искусственная вентиляция легких при раннем ОРДС COVID-19. EClinicalMedicine. 2020; 28: 100616.
  36. Fan E, Beitler JR, Brochard L, Calfee CS, Ferguson ND. COVID-19-ассоциированный острый респираторный дистресс-синдром: оправдан ли другой подход к лечению? Ланцет Респир Мед. 2020; 8 (8): 816-21.
  37. Ван Т., Ду Зи, Чжу Ф, Цао З, Ань И, Гао И и др. Сопутствующие заболевания и полиорганные травмы в лечении COVID-19. Ланцет. 2020; 395 (10228): e52.
  38. Мохтари Т., Хассани Ф., Гаффари Н., Эбрахими Б., Ярахмади А. COVID-19 и полиорганная недостаточность: обзор потенциальных механизмов. J Mol Histol. 2020; 51 (6): 613 ?? 28.
  39. Zaim S, Chong JH, Sankaranarayanan V, Harky A. COVID-19 и полиорганная реакция. Curr Probl Cardiol. 2020; 45 (8): 100618.
  40. Химдани С. Ал, Джавед М.Ю., Хьюз Дж., Фалконер О, участник торгов С.Домашнее средство или опасность? Лечение ожоговых травм у детей и их стоимость. Br J Gen Pract. 2016; 66 (644): е193 ?? 9.
  41. Брюстер К.Т., Чунг Дж., Томас К., Уилсон Д., Моймен Н. Вдыхание паром и детские ожоги во время пандемии COVID-19. Ланцет. 2020; 395 (10238): 1690.
  42. Шинтаке Т. Возможность дезинфекции SARS-CoV-2 (COVID-19) в дыхательных путях человека путем контролируемого вдыхания паров этанола. 2020.
  43. Харрис М. Срочный импульс к действиям: безопасные ингаляционные вмешательства для снижения риска передачи COVID-19 и летального исхода среди людей, курящих крэк-кокаин в Соединенном Королевстве.Int J Drug Policy. 2020; 83: 102829.
  44. Winstock AR, Winstock CJ, Дэвис EL. Вдыхание паров или тумана алкоголя: международное исследование использования, воздействия и вреда. Int J Drug Policy. 2020; 85: 102920.
  45. Стангачиу С. Что такое апитерапия? п. www.apitherapy.com.
  46. Хеллнер М., Винтер Д., фон Георги Р., Мюнштедт К. Апитерапия: использование и опыт немецких пчеловодов. Доказательное дополнение Altern Med. 2008; 5 (4): 475-9.
  47. Münstedt K, Männle H. Сезонный аллергический ринит и роль апитерапии.Allergol Immunopathol (Мадр). 2020; 48 (6): 582 ?? 8.
  48. Бустаманте-Марин XM, Островски LE. Реснички, мукоцилиарный зазор. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2017; 9 (4): a028241.
  49. Abuelgasim H, Albury C, Lee J. Эффективность меда для облегчения симптомов при инфекциях верхних дыхательных путей: систематический обзор и метаанализ. BMJ Evidence-Based Med. 2020; bmjebm-2020-111336.
  50. Фаруки Т. Благотворное влияние прополиса на здоровье человека и неврологические заболевания. Передние биоски.2012; E4 (1): 779.
  51. Shaldam, Moataz A, Yahya, Galal, Mohamed. In Silico скрининг сильнодействующих биологически активных соединений из продуктов пчеловодства против целевых ферментов covid-19.

Что лечит астму? Вот и решение от апитерапии: аэрозоли из улья!

Это называется Апитерапия аэрозолями.
Есть люди, которые говорят, что он лечит астму и ее уродливые симптомы.

Хотя этот метод не пользуется популярностью, он является реальной альтернативой нашей традиционной медицине.

Подведем итоги: из пчел мы используем:
- мед, пыльца, маточное молочко, перга - их пища (для взрослых и детей),
- прополис - их лекарство и защита,
- их собственные тела - из которых мы делаем апиларнил
- яд - это их оружие
- воск - вещество, из которого они строят свой дом

Что еще мы можем использовать от них? Что ж, мы используем воздух, который они производят!

Внутри улья всегда работают медоносные пчелы.Некоторые из них сушат нектар, помещенный в клетки, своими крыльями, чтобы мед созрел. Их называют вентиляторами. (подробнее о жизни и работе пчел см. здесь)
Эти пчелы вентилируют воздух, чтобы испарить воду из нектара. В этом воздухе будут присутствовать все эфирные масла, принесенные с нектаром цветов. Представьте себе все маленькие бутылочки, которые мы видим на продажу, красиво упакованные и маркированные, наполненные эфирными маслами, собранными с определенных цветов, которые находятся в воздухе внутри улья.

Эфирные масла очень быстро испаряются. Сначала они испаряются, когда пчелы проветривают улей. Затем они испаряются в процессе центрифугирования. Чтобы извлечь мед из ячеек сот, соты помещают в центробежную машину, которая вращается с очень высокой скоростью и заставляет мед выходить из ячеек.

Вероятно, поэтому говорят, что мед из соты лучше на вкус и имеет большую терапевтическую ценность, чем обычный мед. И, конечно, дороже.Сырой мед, как мы его знаем, уже прошел процесс центрифугирования, иначе его нельзя извлечь из сот.
Пчеловод знает специфический запах, исходящий от прядильной машины, теплый и полный ароматов. Вероятно, поэтому пчеловоды редко болеют астмой.

Здесь мы должны помнить о новой волне пчеловодства, Honey on tap , в которой используются рамки, называемые рамками Flow, которые можно перемещать и разрезать ячейки, позволяя меду растрескиваться. Этот мед можно собирать прямо в банку, без необходимости центрифугирования, даже не снимая рамок с ульев.
Мед, собранный таким образом, несомненно, будет вкуснее и полезнее (из-за всех эфирных масел, которые все еще будут в нем). Если вы не видели, как работает такой улей, вот пояснительный видеоролик:

Для чего полезно вдыхание аэрозолей изнутри улья?

В 2012 году доктор Петер Капс из Словении сообщил, что преимущества вдыхания воздуха изнутри улья были направлены на респираторные заболевания, такие как:

· боль в горле,
· хроническая обструктивная болезнь легких,
· хронический бронхит,
· эмфизема,
· Трахеобронхит,
· бронхиолит,
· бронхиальная астма
и др.

Есть ли специализированное устройство для вдыхания воздуха из улья?

Да, есть.
Пчеловоды замечают лечебный эффект, который оказывает воздух внутри улья. Особенно, когда центрифугировали мед. И поэтому они решили больше исследовать и рассказать миру. Они внесли в улей необходимую настройку и приступили к экспериментам.

Medikoel - компания из Словении, которая производит устройство и продает его по всему миру. На их веб-сайте нет интернет-магазина, но, отправив им электронное письмо, вы получите все, что вам нужно. Информация включена.

API-AEROSOL I, Вдыхание аэрозоля из улья
содержит следующее:
• Маска для апитерапии с запорным вентилем
• Гибкая трубка 120 см
• Адаптер для улья
• Загубник
Цена: 19,00 EUR

API-AEROSOL II, Вдыхание аэрозоля из улья с принудительной тягой

Вдыхание аэрозоля из улья с принудительной тягой позволяет увеличить поток аэрозоля из улья с помощью вентилятора (API AEROSOL I), чтобы питаться напрямую от адаптера 230 В / 12 В или аккумуляторов 12 В (ПОСТАВКА API).
В комплекте:
• Маска для апитерапии с запорным вентилем.
• Мундштук.
• Гибкая труба 120 см.
• Крепление к улью с принудительной тягой и регулировкой.
Цена: 64,90 EUR

Действительно хорошо, что любой пчеловод может приспособить свои ульи для вдыхания воздуха изнутри. На этих страницах вы также найдете бесплатные pfd-ы, в которых подробно объясняется, что необходимо и как собрать детали. Проверьте страницы и загрузите материалы.

Вот совершенно потрясающая статья Deutsche Welle об вдыхании аэрозолей из улья для лечения астмы:

Есть ли другие продукты, которые можно вдыхать с такими же результатами?


Да, есть.
Medikoel.com также предлагает другие революционные продукты, также используемые для ингаляций. Все мы знаем небулайзеры для лечения астмы. Вот тот, который продается на Amazon. Когда у наших детей очень сильная простуда, грипп, астма, аллергический ринит, бронхит и другие респираторные заболевания, наши врачи всегда рекомендуют их использовать. И прописать нам использовать этот небулайзер с соленой водой, адреналином или другими более сильными веществами.

Medikoel предлагает альтернативное решение, также из улья: смеси с медом, пыльцой, прополисом и некоторыми известными растениями.Эти продукты необходимо сначала развести в соленой воде, а затем использовать в небулайзере. Эффект виден сразу.

Вот их продукция:

1. Ингаляционная смесь против бронхита.
Содержит водный экстракт медуницы обыкновенной, прополиса, меда и эхинацеи (Echinacea purpurea L).

2. Противовоспалительная ингаляционная смесь верхних дыхательных путей.
Содержит прополис, мед, экстракт эхинацеи (Echinacea purpurea L.)

3. Ингаляционная смесь для помощи при аллергии или сезонном аллергическом рините
Содержит прополис, мед, пыльцу

4. Ингаляционная смесь против простуды и гриппа.
Содержит прополис, эхинацею (Echinacea purpurea L.), экстракт верхушек ели, эфирное масло эвкалипта, мед.

5. Смесь успокаивающая для ингаляций
Содержит: экстракт валерианы (Valeriana officinallis L.), прополис, мед.

Они действительно просты в использовании, и это видео показывает весь процесс.

Помните, что вы можете купить их, только отправив им электронное письмо. На [email protected] всегда рады что-нибудь продать. 🙂

Вот еще несколько альтернативных методов лечения респираторных заболеваний:

• Лучшие природные средства от простуды - сводка

• Прополис лечит оториноларингологические и респираторные заболевания

• Искать респираторные Прополис лечит оториноларингологические и респираторные заболевания Гречиха2015 / 04/20 мед - самый мощный антиоксидант! Мед! 2016/02/10 Январский рецепт здоровья.Лечите боль в горле естественным путем.

Ссылки:
http://www.medikoel.com/apitherapy.html?id=53
http://www.dw.com/en/rediscovered-apitherapy-for-asthma/av-18658979

Прополис Самый сокровенный секрет лучшего здоровья?

Сезон гриппа в самом разгаре, и сейчас самое время поговорить о мощном иммуностимулирующем средстве, которое можно добавить в ваш арсенал. Входят пчелы.

Пчелы - неотъемлемая часть жизни на Земле. Самая важная роль пчел - это процесс опыления, благодаря которому они помогают переносить пыльцу между растениями, позволяя растениям воспроизводиться.Небольшой размер этих особых насекомых противоречит их невероятной эффективности в качестве опылителей. Животные и насекомые, такие как пчелы, несут ответственность за опыление 30% мировых продовольственных культур и 90% дикорастущих растений! Медоносная пчела ( Apis mellifera ) была завезена европейскими поселенцами в Северную Америку. Этот вид пчел помогает в опылении множества цветковых растений, в том числе многих растений, которые люди используют в пищу. Участвуя в опылении, медоносные пчелы вносят свой вклад в биоразнообразие растений, а также в выживание человека.Без их усилий по опылению многие из наших основных продуктов питания просто не могли бы существовать!

Хотя претензии медоносных пчел на славу являются их решающей ролью в опылении, эти особые насекомые также производят определенные полезные для здоровья вещества, которые очень полезны для человека. Многие люди слышали о пользе для здоровья настоящего сырого меда - было обнаружено, что он укрепляет иммунную систему, ускоряет заживление ран при местном применении и борется с некоторыми инфекциями. Однако в этом посте я хотел бы поговорить о менее известном, но не менее полезном веществе, производимом пчелами, - прополисе.

Итак, что такое прополис? Прополис - это смолистое вещество, вырабатываемое медоносными пчелами, когда они смешивают свою слюну и пчелиный воск с нектаром или соком из растительных источников, таких как цветы и почки деревьев. Полученная смесь служит своего рода «клеем», которым пчелы запечатывают открытые пространства в своем улье. Химический анализ прополиса показал, что он состоит из более чем 300 различных химических соединений, ряд из которых оказался полезным для здоровья человека. Флавоноиды, терпены и эфирные масла - это несколько примеров соединений в прополисе, которые могут оказывать значительное оздоровительное действие.

В совокупности различные соединения в прополисе обладают большим преимуществом, когда дело доходит до укрепления здоровья. Прополис обладает антибактериальной активностью против Staphylococcus aureus , бактерии, вызывающей стафилококковые инфекции, а также против E. coli и Pseudomonas aeruginosa , которые могут вызывать заболевания у людей. Помимо антибактериального действия, прополис также обладает противовирусными, противовоспалительными, противоопухолевыми, противоязвенными и антиоксидантными свойствами.

Исторически прополис использовался инками для снижения температуры, греками и римлянами как дезинфицирующее средство для рта и антибиотик для лечения ран, британцами в 17 веке как лекарство и во время Второй мировой войны. Советами как средство от туберкулеза. В настоящее время прополис используется как натуральное лекарство от инфекций верхних дыхательных путей, простуды, гриппа, заживления ран, прыщей и кожных инфекций. Также проводятся исследования возможности использования прополиса для лечения астмы и аллергии. Это довольно обширное и впечатляющее резюме по прополису!

Я лично заинтересовался прополисом после того, как услышал об еще одном его преимуществе - противогрибковом средстве. Интересно, что прополис обладает очень сильным противогрибковым действием. Фактически, исследователи обнаружили, что пчелы «занимаются самолечением» против грибковой инфекции, выстилая свои ульи прополисом.

Как сильное противогрибковое средство, прополис обладает способностью убивать грибки, такие как Candida albicans , вызывающие дрожжевые инфекции как на коже, так и в пищеварительном тракте.Прополис также продемонстрировал способность убивать другие типы грибов, такие как Trichosporon asahii , который вызывает очень серьезное грибковое заболевание, называемое трихоспоронозом. Противогрибковые свойства прополиса указывают на его ценность в качестве добавки для тех, кто страдает грибковыми заболеваниями и даже токсическим воздействием плесени. Фактически, противогрибковая активность прополиса была самой важной пользой для здоровья, которую он принес мне. Прополис стал основной добавкой в ​​моем личном протоколе здоровья.

Немного обо мне и о том, почему я так интересуюсь прополисом: у меня возникла «загадочная» хроническая болезнь, когда мне было 19 лет, и я был очень болен несколько лет, пока мне, наконец, не поставили диагноз «болезнь Лайма» в 22 года. Однако одно лишь лечение болезни Лайма не сделало меня лучше. Мне потребовалось еще два года, чтобы поставить диагноз болезни, вызванной плесенью - в молодости я подвергался воздействию ряда сред, содержащих токсичную плесень, и считалось, что это воздействие, наряду с хронической болезнью Лайма, было причиной меня так тошнило.Прополис сыграл ключевую роль в моем выздоровлении от симптомов токсической плесени, потому что это очень сильное противогрибковое средство. Я принимал прополис в виде настойки, в виде назального спрея, в виде аэрозоля через небулайзер, а также использую специальную маленькую машину для распыления прополиса в своей квартире. Различные методы лечения прополисом значительно уменьшили воспаление носовых пазух, которое у меня развилось в результате воздействия токсичной плесени, и я чувствую, что могу дышать лучше, чем когда-либо. Я также считаю, что это довольно эффективно для уменьшения воспаления в моем теле и помогло избавиться от аллергии.В качестве бонуса прополис чудесно пахнет. Это действительно удовольствие, когда он распространяется по воздуху в моих жилых помещениях дома.

Если вы страдаете от симптомов болезни Лайма или какой-либо бактериальной или грибковой инфекции, я настоятельно рекомендую добавить прополис в свой протокол лечения. Теперь, когда вы знаете, что пчелы «лучше всего хранят в секрете», используйте это в своих интересах! Вы можете быть удивлены тем, насколько велико влияние прополиса на ваше здоровье.

Подпишитесь на самый популярный в мире информационный бюллетень (это бесплатно!)

Эта статья была впервые опубликована на сайте ProHealth.com 15 июля 2016 г. и обновлено 10 декабря 2019 г.


Линдси получила степень бакалавра биомедицинских наук с акцентом на питание от Национального университета медицинских наук. Когда она не изучает питание, не занимается исследованиями и не пишет, Линдси любит заниматься спортом, скалолазанием, походами, катанием на лыжах и приключениями на свежем воздухе. Она также очень увлечена своим фотоаппаратом и фотографией природы. Вы можете узнать больше об опыте Линдси с болезнью Лайма, а также прочитать все ее последние мысли и исследования о здоровье, посетив ее блог Ascent to Health.

Ссылки:

1. Sass J. (2011). Зачем нам пчелы: крошечные работники природы кладут еду на наши столы. Совет по защите национальных ресурсов. Получено с https://www.nrdc.org/sites/default/files/bees.pdf.

2. Мойссет Б. и Бухманн С. (2011). Основы пчеловодства: знакомство с нашими местными пчелами. Публикация лесной службы и партнерства по опылителям Министерства сельского хозяйства США. Получено с http://www.fs.usda.gov/Internet/FSE_DOCUMENTS/stelprdb5306468.pdf.

3. Eteraf-Oskouei T & Najafi M.(2013). Традиционное и современное использование натурального меда при заболеваниях человека: обзор. Иран Дж. Базовая медицина . 16 (6): 731-742. Получено с http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3758027/.

4. Виуда-Мартос М., Руис-Навахас Й, Фернандес-Лопес Дж, Перес-Альварес Дж. (2008). Функциональные свойства меда, прополиса и маточного молочка. J Food Sci . 73 (9): R117-R124. Получено с http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1

16.

5. Wagh VD. (2013). Прополис: чудо-пчелиный продукт и его фармакологические возможности. Adv Pharmacol Sci [онлайн]. Получено с http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3872021/.

6. Ота С., Унтеркирхер С., Фантинато В. и Симидзу М.Т. (2001). Противогрибковая активность прополиса в отношении различных видов Candida. Микозы . 44 (9-10): 375-378. Получено с http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11766101.

7. Симоне-Финстром, доктор медицины и Спивак М. (2012). Увеличение сбора смолы после заражения паразитами: случай самолечения у медоносных пчел? PLOS One [онлайн].Получено с http://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0034601.

Влияние прополиса пчелы без жала на экспериментальную астму

Evid Based Complement Alternat Med. 2014; 2014: 951478.

, 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 2 и 1 , *

José Hidelbland Cavalcante de Farias

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Сильва Рейс

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Марсио Антонио Родригес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Хосе Абигейл Мендес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Anne Karine Martins As sunção

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Джардел Кавальканте де Фариас

Лаборатория из 1 Иммунофизиология, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Эдер Магалхаес Сильва Фиало

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и биологии Центр медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Люсилен Аморим Силва

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Graciomar Conceição Costa

1 Лаборатория иммунофизиологии, D Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Розане Нассар Мейрелеш Герра

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и здравоохранения Center, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Нильсе Соуза Рибейро

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян (UFMA) ), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Flávia Raquel Fernandes do Nascimento

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис , Массачусетс, Бразилия

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Научный редактор: Вася Банкова

Поступила в редакцию 27.12.2013; Пересмотрено 14 февраля 2014 г .; Принято 15 февраля 2014 г.

Авторские права © 2014 José Hidelbland Cavalcante de Farias et al.

Это статья в открытом доступе, распространяемая по лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии правильного цитирования оригинальной работы.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

Пчелиные продукты веками использовались эмпирически, особенно для лечения респираторных заболеваний. В настоящем исследовании оценивали эффект лечения водно-спиртовым экстрактом прополиса (ПГЭ), продуцируемым Scaptotrigona aff. postica пчела без жала в модели мышиной астмы. Мышей BALB / c иммунизировали дважды подкожно овальбумином (OVA). Через 14 дней им интраназально вводили OVA. Группы P50 и P200 получали PHE через желудочный зонд в дозах 50 и 200 мг / кг соответственно. Группу DEXA лечили внутрибрюшинной инъекцией дексаметазона. Группа OVA получала только воду. Мышей обрабатывали ежедневно в течение двух недель, а затем их второй раз иммунизировали интраназальным OVA. Лечение ПГЭ уменьшило количество клеток в бронхоальвеолярной жидкости (БАЛ).Гистологический анализ показал уменьшение перибронховаскулярного воспаления после лечения ПГЭ, особенно инфильтрации полиморфно-ядерных клеток. Кроме того, концентрация интерферона- γ (IFN- γ ) в сыворотке была снижена. Эти результаты были аналогичны результатам, полученным с дексаметазоном. Обработка прополисом S. aff postica уменьшала патологию, связанную с мышиной астмой, из-за ингибирования миграции воспалительных клеток в альвеолярное пространство и системного прогрессирования аллергического воспаления.

1. Введение

Астма считается серьезной проблемой общественного здравоохранения, от которой страдает примерно 10% населения мира. Это хроническое воспалительное заболевание дыхательных путей, в котором многие клетки играют важную роль [1]. Инфильтрация стенки дыхательных путей тучными клетками, эозинофилами, дендритными клетками, макрофагами, нейтрофилами и Т-лимфоцитами может наблюдаться в воспалительных реакциях легких, которые связаны с повышенной экспрессией множества белков, участвующих в сложном воспалительном каскаде, опосредованном цитокинами, хемокинами и липидные медиаторы [2].

Это заболевание может проявляться реакцией гиперчувствительности немедленного типа с последующей фазой позднего ответа. В экспериментальных моделях немедленная фаза может адоптивно переноситься сывороткой, тогда как поздняя фаза переносится лимфоцитами CD4 + T-хелперов 2 (Th3) типа. И IgE, и тучные клетки имеют решающее значение для запуска немедленной фазы аллергии. На поздней стадии участие Th3-клеток имеет решающее значение, поскольку они ответственны за высвобождение цитокинов, включая интерлейкины (ИЛ), ИЛ-4, ИЛ-5, ИЛ-9 и ИЛ-13, которые, в свою очередь, являются ответственны за эозинофильное воспаление [3].Несмотря на знания о роли цитокинов Th3 и IgE в экспериментальных моделях астмы, было показано, что Th2, связанный с ответом Th3, также важен при повреждении легких. Профиль Th2 сам по себе не вызывает каких-либо признаков астмы, но интерферон- γ (IFN- γ ) связан с патогенезом астмы и тяжестью этого заболевания [4]. На модели астмы было показано, что введение нейтрализующего антитела к IFN-γ подавляет гиперактивность дыхательных путей, что является оправданным ингибированием этого цитокина для лечения астмы [5].

В настоящее время глюкокортикоиды являются наиболее эффективным средством лечения астмы и доказали свою безопасность. Их эффективность была хорошо документирована в предотвращении заболеваемости и смертности, связанных с астмой, и в улучшении прогноза заболевания, включая уменьшение количества госпитализаций, предотвращение рецидивов и содействие выздоровлению, особенно у пациентов с тяжелой астмой и у детей [6]. Однако их длительное системное применение может вызвать множество нежелательных побочных эффектов, связанных с продуктами их катаболизма, иммуносупрессией [7].Фармацевтическая промышленность по-прежнему ставит перед собой амбициозную цель по производству стероидных аналогов, которые позволят избежать побочных эффектов и сохранят терапевтическую эффективность [8].

Таким образом, экспериментальные модели астмы на мышах были разработаны с использованием различных типов известных аллергенов [9, 10] и во многом способствовали изучению воспалительных механизмов астмы и тестированию новых лекарств, особенно тех, которые получены в результате эмпирического использования натуральных продуктов, таких как те, которые производятся пчелами, в попытке минимизировать дискомфорт, возникающий во время приступов астмы.

Прополис, производимый африканизированными пчелами, является мощным противовоспалительным агентом при остром и хроническом воспалении, что было подтверждено в экспериментах in vitro, и in vivo, , с этанольным и водным экстрактами прополиса или с соединениями, выделенными из прополиса [11– 14].

Было показано, что компоненты, полученные из прополиса, активируют макрофаги и что полифенолы могут быть ответственны за повышение способности макрофагов фагоцитировать, стимулировать лимфоциты и убивать микроорганизмы и опухоли [14–16].Важным фактом является то, что, несмотря на активацию макрофагов и индукцию высвобождения свободных радикалов, полифенолы широко известны как антиоксиданты [17, 18], которые улавливают избыточные свободные радикалы, генерируемые макрофагами и нейтрофилами [19].

Хотя многое уже известно о терапевтическом действии прополиса, вырабатываемого африканизированными пчелами, было мало исследований о терапевтических свойствах прополиса, вырабатываемых пчелами без укусов. Таким образом, в настоящей работе оценивалось действие прополиса, продуцируемого Scaptotrigona aff. postica, пчела без жала, о воспалении легких, вызванном экспериментальной астмой, индуцированной у мышей.

2. Материалы и методы

2.1. Получение водно-спиртового экстракта прополиса (PHE)

Прополис, производимый Scaptotrigona aff. postica был собран из внутренних частей улья, расположенного в муниципалитете Барра-ду-Корда (05 ° 30′20′′S, 45 ° 14′36′′W), штат Мараньян, Бразилия. Прополис in natura экстрагировали мацерацией в этаноле (70%) в течение 24 часов.Экстракционный раствор фильтровали и концентрировали до небольшого объема при 40 ° C в роторном испарителе при низком давлении, получая водно-спиртовой экстракт прополиса (PHE). Рассчитанный сухой вес дает 9 г продукта (4%) [16]. Содержание флавоноидов, фенольной кислоты и общего фенола в ПГЭ составило 0,55 ± 0,07%, 11,40 ± 0,73% и 11,95 ± 0,80% соответственно [20].

2.2. Животные

Взрослые самки мышей BALB / c в возрасте от двух до трех месяцев ( n = 5 на группу) были предоставлены Фондом для животных Федерального университета Мараньяна.Во время исследований животные содержались в помещении для животных лаборатории иммунофизиологии в контролируемых условиях окружающей среды. И воду, и пищу предлагали ad libitum до дня жертвоприношения. С животными обращались в соответствии с этическими нормами, установленными Бразильским колледжем экспериментов на животных, и настоящий проект был одобрен Комитетом по этике исследований на животных Государственного университета Мараньян (протокол № 010/2007).

2.3. Аллергическое воспаление легких, индуцированное овальбумином (OVA-)

Животных иммунизировали подкожно (sc.) 4 мкг г OVA, адсорбированных на 1,6 мг гидроксида алюминия (квасцы). Через семь дней та же процедура была повторена. Еще через семь дней животных слегка анестезировали 0,4 мл раствора ксилазин гидрохлорида (20 мг / кг) и заражали интраназальной инстилляцией (дюйм) 50 мкл л раствора OVA (10 мкл г OVA. / 50 мк л стерильного фосфатно-солевого буфера (PBS)).Через семь дней после первого заражения животным снова вводили тот же раствор [21]. Через 24 часа собирали кровь для получения сыворотки и животных умерщвляли, используя смертельную внутрибрюшинную терапию. инъекция 10% хлоралгидрата.

2.4. Лечение аллергического воспаления легких с помощью PHE

Лечение было начато сразу после второй иммунизации. Животным вводили перорально 100 μ L PHE в дозах 50 или 200 мг / кг / животное (P50 и P200, соответственно.) в течение 14 дней подряд. Животные в группе положительного контроля получали i.p. инъекции 100 мкл л дексаметазона (DEXA) в дозе 1 мг / кг / животное в течение 14 дней подряд. Группа отрицательного контроля (OVA) получала только физиологические растворы перорально. Чистый контроль не был ни сенсибилизирован, ни оспорен.

2.5. Сбор и подсчет клеток бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ)

Для каждого животного обнажали трахею и вводили 0,5 мл холодного PBS в бронхоальвеолярное пространство.После аспирации БАЛ вводили и аспирировали еще 0,5 мл PBS. Для определения общего числа клеток БАЛ 90 мкл л суспензии клеток фиксировали и окрашивали в 10 мкл л раствора, содержащего 0,05% кристаллического фиолетового, разбавленного 30% уксусной кислотой. Затем клетки подсчитывали в камере Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.6. Гистопатологическая оценка легких

После сбора БАЛ легкие перфузировали 10 мл PBS через канюлю, введенную в правый желудочек для удаления остаточной крови, и легкие взвешивали и фиксировали путем погружения в забуференный формалин (10%).Через 24 часа органы переносили в 70% спиртовой раствор до замачивания парафином. Ткани разрезали на 5 срезов размером мкм и размером мкм и окрашивали гематоксилином / эозином для гистопатологического исследования. Воспалительный процесс на гистологических срезах был качественно оценен и охарактеризован как отсутствующий, легкий, умеренный или тяжелый в зависимости от характеристик пораженного участка.

2.7. Сбор и подсчет клеток из перитонеального лаважа и лимфоидных органов

Чтобы проверить, могут ли эффекты PHE, наблюдаемые в легких, быть следствием системной иммуносупрессии, мы оценили лимфоидные органы, а также брюшную полость.Брюшную полость животного промывали 5 мл стерильного PBS. После иссечения брюшной стенки суспензии клеток получали путем аспирации с использованием шприца и иглы, переносили в полипропиленовые пробирки с коническим дном и выдерживали на ледяной бане (4 ° C) до подсчета клеток. После сбора перитонеального лаважа селезенку и брыжеечные лимфатические узлы собирали, взвешивали и измельчали. Бедренную кость перфузировали 1 мл PBS для получения клеток костного мозга.

Для подсчета общего числа клеток фиксировали 90 мкл л каждой клеточной суспензии и окрашивали 10 мк л 0.05% кристаллический фиолетовый в 30% уксусной кислоте. Клетки подсчитывали с помощью камеры Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.8. Количественная оценка сывороточного гамма-интерферона (IFN-

γ )

Было показано, что IFN- γ участвует в патогенезе астмы и может быть обнаружен у пациентов с атопией [4]. Итак, мы количественно определили этот важнейший цитокин в сыворотке крови. Количественный анализ выполняли в 96-луночных микролитровальных планшетах с плоским дном (Costar), которые покрывали добавлением 100 мкл л первичных антител против IFN-γ и инкубировали в течение ночи при 4 ° C.После инкубации планшет переворачивали и трижды промывали PBS + Tween 20 (PBS + T20, 300 мкл л / лунку) и блокировали 200 мкл л / лунку 10% фетальной бычьей сывороткой (FBS) в PBS для один час при комнатной температуре. Лунки отсасывали и трижды промывали PBS + T20. Добавляли сыворотку животных (100 мкл л образца / лунку), и образцы инкубировали в течение двух часов при комнатной температуре. Лунки аспирировали и промывали пять раз PBS + T20 (300 мкл л / лунку), а затем добавляли 100 мкл л / лунку детектирующего антитела, конъюгированного с авидином / пероксидазой.Затем планшеты инкубировали в течение одного часа и семь раз промывали PBS + T20 и добавляли 100 мкл раствора тетраметилбензидинового субстрата (TMB), л / лунку. Планшеты инкубировали в течение 30 минут в темноте, а затем реакцию останавливали добавлением 50 мкл L 2 N H 2 SO 4 . Считывание оптической плотности проводили с использованием автоматического ридера иммуноферментного анализа (ELISA) при поглощении 450 нм (Dynatech).

2.9. Статистический анализ

Анализ результатов проводился с использованием статистической программы Graph-Pad, версия 5.0. Значительные различия между обработками определяли дисперсионным анализом (ANOVA) с последующим применением теста Тьюки-Крамера. Статистические значения были приняты, когда P ≤ 0,05. Данные были выражены как среднее ± стандартное отклонение.

3. Результаты

3.1. Влияние обработки PHE на количество клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает общее и дифференциальное количество ячеек в BAL. Наблюдалось значительное снижение общего количества клеток ЖБАЛ в обеих группах, получавших ПГЭ (P50 и P200), по сравнению с контрольной группой OVA.Это снижение было аналогично тому, которое наблюдалось в группе DEXA (50%). Не было различий между группами DEXA, P50 и P200 (). Дифференциальный подсчет BAL-клеток продемонстрировал, что в контрольной группе OVA наблюдался более высокий процент полиморфно-ядерных воспалительных клеток (). Этот результат был противоположным в группах P50 и P200, с преобладанием мононуклеарных клеток и даже большим процентным снижением полиморфноядерных клеток, чем это наблюдалось в группе DEXA.

Эффект от лечения Scaptotrigona aff. postica PHE от количества клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA. Мышам в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Общий (а) и дифференциальный (б) подсчет клеток БАЛ выполняли через 24 часа после последнего заражения. * P <0,05 по сравнению с группой OVA.

3.2. Влияние обработки PHE на гистологию легких мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает гистологические срезы легких мышей из разных групп на микрофотографиях, сделанных при 40-кратном увеличении. показывает срез чистого контрольного животного, не зараженного OVA, на котором можно наблюдать чистую паренхиму без инфильтрации. Напротив, анализ гистологических срезов легких мышей в группе OVA показывает интенсивную перибронховаскулярную инфильтрацию и десквамацию эпителия (2).Процедуры DEXA (), P50 () и P200 () восстанавливали нормальный паттерн архитектуры легких, предотвращая воспалительную инфильтрацию и десквамацию эпителия.

Гистопатологические срезы легких мышей BALB / c, окрашенные гематоксилином / эозином. Мышей иммунизировали в дни 0 и 7 подкожно. инъекции 4 мкг г OVA / 1,6 мг квасцов. На 14 и 21 дни мышей заражали инъекцией 10 мкг г OVA. Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. Было дано два увеличения (400 и 100x) для чистого контроля (a), группы, иммунизированной OVA (b), обработанной DEXA (c) и обработанной PHE, в дозе 50 мг / кг (d) или 200 мг / кг ( д).Стрелками обозначены участки воспаления.

3.3. Влияние обработки PHE на циркулирующий IFN-

γ у мышей, иммунизированных и зараженных OVA

. Учитывая роль IFN-g в патогенезе астмы, мы измеряем этот цитокин в сыворотке. показывает, что у мышей, получавших PHE, наблюдалось значительное дозозависимое снижение сывороточного IFN-γ , которое было более интенсивным, чем наблюдаемое в группе DEXA.

Влияние обработки PHE S. aff postica на циркулирующий сывороточный IFN-γ мышей, иммунизированных и зараженных OVA.Мышей в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Эксперименты проводили через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

3.4. Влияние обработки PHE на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA

Обработка PHE не вызвала изменений количества клеток в костном мозге (), лимфатическом узле (), селезенке () , или брюшина ().По сравнению с контролем OVA, обработка DEXA значительно уменьшала количество клеток в лимфатическом узле, селезенке и брюшине, но не в костном мозге.

Эффект обработки PHE S. aff postica на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA, соответствует костному мозгу (a), лимфатическому узлу (b) и клеткам селезенки (c ), соответственно. Клетки брюшной полости собирали и подсчитывали для оценки миграции клеток (d).Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

4. Обсуждение

Настоящее исследование показывает, что лечение ПГЭ, вводимое перорально, значительно уменьшало аллергическое воспаление легких на мышиной модели астмы. Оба лечения с помощью ПГЭ (50 и 200 мг / кг) изменили структуру воспалительных клеток в легких и уменьшили приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхиму, изменив структуру воспалительных клеток в легких и уменьшив приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхима.Аналогичным образом было показано, что у мышей, получавших прополис, наблюдалось снижение количества воспалительных клеток в перитонеальных бронхоальвеолярных областях по сравнению с группой, не получавшей лечения [22]. Этот результат также согласуется с предыдущим исследованием, которое показало, что добавление прополиса к пище больных астмой в качестве дополнительной терапии при лечении этого заболевания дало определенные преимущества за счет снижения частоты кризов и необходимости в спасательных препаратах. , возможно, улучшая иммунный ответ пациентов [23].

Кроме того, лечение ПГЭ значительно снижает концентрацию IFN- γ , которая считается решающей в патогенезе астмы [4, 5]. Этот результат согласуется с некоторыми исследованиями, которые продемонстрировали, что введение прополиса мышам в течение короткого времени влияет как на базальную, так и на стимулированную продукцию IFN-γ и баланс Th2 / Th3 [24–26], что может быть связано с его противовоспалительные свойства. Таким образом, это снижение IFN-γ, наблюдаемое в группах, получавших PHE, могло вызвать улучшение легочного воспалительного состояния.Эта гипотеза подтверждается исследованиями, которые показали, что прополис и его продукты вызывают ингибирование синтеза простагландинов, лейкотриенов и гистаминов, высвобождаемых клетками легких свиней in vitro [23] и во время индуцированного острого воспаления брюшины in vivo [27]. .

Помимо ингибирующего действия прополиса на IFN-γ и на рекрутинг воспалительных клеток, другим объяснением действия прополиса в модели, использованной здесь, является его антиоксидантный эффект.Воспалительный процесс астмы может быть связан с большим выбросом свободных радикалов, поскольку множество воспалительных клеток, включая эозинофилы, нейтрофилы и макрофаги, способны генерировать активные формы кислорода в очагах воспаления. Следовательно, лечение астмы антиоксидантами было успешной терапевтической стратегией. Ли и др. [28], например, продемонстрировали, что окислительный стресс является решающей детерминантой астмы и что лечение антиоксидантами может быть полезной терапевтической стратегией.Недавние исследования показали, что этанольный экстракт прополиса способен влиять на уровни активных форм кислорода [29]. Прополис также уменьшал индуцированное свободными радикалами перекисное окисление липидов, а также увеличивал активность супероксиддисмутазы [30]. Считается, что компоненты прополиса, нейтрализующие свободные радикалы и супероксид, ответственны за основные регенеративные и противовоспалительные эффекты этого вещества [31].

Образцы прополиса, использованные в настоящем исследовании, показали в основном фенольную кислоту и общий фенол, как сообщалось ранее [20].Эти вещества, которые были обнаружены в других образцах прополиса, были определены как основные соединения с противовоспалительной активностью [32], а также могут быть связаны с полезным применением прополиса при аллергии и астме [33]. Следовательно, поскольку состав прополиса может варьироваться в зависимости от района, считается, что противоаллергическая и противовоспалительная активность прополиса может зависеть от сложного взаимодействия между различными природными фенольными соединениями, а не от одного соединения [34].

Важно подчеркнуть, что подавление воспаления легких было аналогично тому, которое наблюдалось при лечении дексаметазоном, мощным ингибитором воспаления дыхательных путей [6]. Однако иммуносупрессивный эффект дексаметазона не наблюдался у животных, получавших прополис, поскольку количество клеток в лимфатическом узле, костном мозге, селезенке и брюшной полости не было затронуто в обеих группах, получавших прополис. Таким образом, прополис кажется более безопасным лечением по сравнению с дексаметазоном.

Наконец, настоящее исследование показывает, что прополис оказывает ингибирующее действие на воспаление дыхательных путей на модели мышиной астмы, что оправдывает его использование в качестве альтернативного / дополнительного и недорогого лечения практически без побочных эффектов. Поэтому есть надежда, что настоящая работа поможет стимулировать и обогатить дискуссии и исследования по Scaptotrigona aff. postica прополис, а также приведет к его валидации и биологическому применению, а также будет способствовать сохранению местных видов, которые в последние годы продемонстрировали возросшую научную и экономическую ценность.

5. Заключение

Пероральное лечение прополисом производства Scaptotrigona aff. postica уменьшает патологию, связанную с мышиной астмой, подавляя как приток воспалительных клеток в альвеолярное пространство, так и системное прогрессирование аллергического воспаления.

Благодарности

Авторы благодарят бразильские финансовые агентства FAPEMA, CNPq, CAPES и FINEP за финансовую поддержку.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в отношении публикации данной статьи.

Вклад авторов

Хосе Хидельбланд Кавальканте де Фариас и Арамис Сильва Рейс выполнили экспериментальную работу и внесли равный вклад в работу. В интерпретации и подготовке статьи участвовали Марсио Антонио Родригес Араужу, Мария Хосе Абигайль Мендес Араужу, Джардел Кавальканте де Фариас, Эдер Магальяйнс Сильва Фиалью, Анн Карине Мартинс Ассунсао, Грасиомар да Консейсау Коста и Люсилен Аморим Силва. Розан Нассар Мейрелеш Герра, Мария Нильсе Соуза Рибейру и Флавия Ракель Фернандес ду Насименту разработали эксперименты и внесли свой вклад в интерпретацию и подготовку статьи.

Ссылки

1. Bateman ED, Hurd SS, Barnes PJ, et al. Глобальная стратегия лечения и профилактики астмы: краткое изложение GINA. Европейский респираторный журнал . 2008. 31 (1): 143–178. [PubMed] [Google Scholar] 2. Стирбулов Р., Бернд ЛАГ, Соле Д. IV Бразильские рекомендации по лечению астмы (Diretrizes Brasileiras para o Manejo da Asma) Revista Brasileira de Alergia e Imunopatologia . 2006. 29 (5): 222–245. [Google Scholar] 3. Бохнер Б.С., Буссе WW. Аллергия и астма. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 2005. 115 (5): 953–959. [PubMed] [Google Scholar] 4. Ten Hacken NH, Oosterhoff Y, Kauffman HF и др. Повышенный уровень интерферона- γ в сыворотке крови при атопической астме коррелирует с повышенной реактивностью дыхательных путей и вариациями пикового циркадного потока выдоха. Европейский респираторный журнал . 1998. 11 (2): 312–316. [PubMed] [Google Scholar] 5. Cohn L, Homer RJ, Niu N, Bottomly K. Т-хелперные клетки 1 и интерферон γ регулируют аллергическое воспаление дыхательных путей и выработку слизи. Журнал экспериментальной медицины . 1999. 190 (9): 1309–1318. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 6. Швиберт Л.М., Бек Л.А., Стеллато С., Бикель КА, Бохнер Б.С., Шлеймер Р.П. Подавление выработки цитокинов глюкокортикостероидами: отношение к противоаллергическому действию. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 1996. 97 (1-2): 143–152. [PubMed] [Google Scholar] 7. Baschant U, Tuckermann J. Роль рецептора глюкокортикоидов в воспалении и иммунитете. Журнал биохимии стероидов и молекулярной биологии .2010; 120 (2-3): 69–75. [PubMed] [Google Scholar] 8. Kleiman A, Tuckermann JP. Действие глюкокортикоидных рецепторов при благоприятных и побочных эффектах стероидной терапии: уроки на мышах с условным нокаутом. Молекулярная и клеточная эндокринология . 2007. 275 (1-2): 98–108. [PubMed] [Google Scholar] 9. де Сикейра А.Л., Руссо М., Стейл А.А., Фачинконе С., Мариано М., Янкар С. Новая мышиная модель легочной эозинофильной гиперчувствительности: вклад в экспериментальную астму. Журнал аллергии и клинической иммунологии .1997. 100 (3): 383–388. [PubMed] [Google Scholar] 10. Байс Д.Е., Сигрейв Дж., Грин Ф.Х. Модели астмы на животных: потенциальная полезность для изучения воздействия на здоровье вдыхаемых частиц. Ингаляционная токсикология . 2000. 12 (9): 829–862. [PubMed] [Google Scholar] 11. Добровольски Ю.В., Вохора С.Б., Шарма К., Шах С.А., Накви САХ, Дандия ПК. Противовоспалительные, антибактериальные, противогрибковые, антиамебные и жаропонижающие исследования продуктов пчеловодства на основе прополиса. Журнал этнофармакологии . 1991. 35 (1): 77–82.[PubMed] [Google Scholar] 12. Буэно-Силва Б., Аленкар С.М., Ку Х. и др. Противовоспалительная и антимикробная оценка неовестита и вестита, выделенных из бразильского красного прополиса. Журнал сельского хозяйства и пищевой химии . 2013. 61 (19): 4546–4550. [PubMed] [Google Scholar] 13. Паулино Н., Абреу С.Р., Уто Й. и др. Противовоспалительное действие биодоступного соединения артепиллина С в бразильском прополисе. Европейский журнал фармакологии . 2008. 587 (1–3): 296–301. [PubMed] [Google Scholar] 14.Араухо МАР, Либерио С.А., Герра РНМ, Рибейро Миннесота, Насименто ФРБ. Механизмы действия, лежащие в основе противовоспалительного и иммуномодулирующего действия прополиса: краткий обзор. Revista Brasileira de Farmacognosia . 2012. 22 (1): 208–219. [Google Scholar] 15. Димов В., Ивановская Н., Манолова Н., Банкова В., Николов Н., Попов С. Иммуномодулирующее действие прополиса. Влияние на противоинфекционную защиту и функцию макрофагов. Апидология . 1991. 22 (2): 155–162. [Google Scholar] 16.Араужо МДЖАМ, Дутра Р.П., Коста ГК и др. Эффект от лечения препаратом Scaptotrigona aff. postica прополис о развитии опухолей Эрлиха у мышей (Efeito do tratamento com própolis de Scaptotrigona aff. postica sobre o desenvolvimento do tumour de Ehrlich em camundongos) 2010. 20 (4): 580–587. [Google Scholar] 17. Оршолич Н., Башич И. Водорастворимое производное прополиса и его полифенольные соединения усиливают опухолевую активность макрофагов. Журнал этнофармакологии . 2005. 102 (1): 37–45. [PubMed] [Google Scholar] 18. Urquiaga I, Leighton F. Растительные полифенольные антиоксиданты и окислительный стресс. Биологические исследования . 2000. 33 (2): 55–64. [PubMed] [Google Scholar] 19. Маркеле Ф.Д., ди Мамбро В.М., Джорджетти С.Р., Касагранде Р., Валим YML, Фонсека MJV. Оценка антиоксидантной активности бразильских экстрактов прополиса отдельно и в фармацевтических препаратах для местного применения. Журнал фармацевтического и биомедицинского анализа .2005. 39 (3-4): 455–462. [PubMed] [Google Scholar] 20. Араужо МДЖАМ, Маттар Н.С., Рейс А.С. и др. Фармакогностическая и острая токсикологическая оценка Scaptotrigona aff. postica экстракт прополиса в доклинических исследованиях. Исследование природных продуктов . 2011. 25 (11): 1037–1046. [PubMed] [Google Scholar] 21. Руссо М., Нахори М.А., Лефорт Дж. И др. Подавление астматических реакций у разных линий мышей пероральной толерантностью. Американский журнал респираторной клетки и молекулярной биологии .2001. 24 (5): 518–526. [PubMed] [Google Scholar] 22. Sy LB, Wu Y-L, Chiang B-L, Wang Y-H, Wu W-M. Экстракты прополиса проявляют иммунорегуляторную активность на модели животных с воспалением дыхательных путей, сенсибилизированных OVA. Международная иммунофармакология . 2006. 6 (7): 1053–1060. [PubMed] [Google Scholar] 23. Хайял М.Т., Эль-Газали М.А., Эль-Хатиб А.С. Механизмы противовоспалительного действия экстракта прополиса. Лекарственные препараты, находящиеся в стадии экспериментальных и клинических исследований . 1993. 19 (5): 197–203. [PubMed] [Google Scholar] 24.Pagliarone AC, Orsatti CL, Búfalo MC и др. Влияние прополиса на выработку провоспалительных цитокинов и экспрессию Toll-подобных рецепторов 2 и 4 у стрессированных мышей. Международная иммунофармакология . 2009. 9 (11): 1352–1356. [PubMed] [Google Scholar] 25. Orsatti CL, Missima F, Pagliarone AC, Sforcin JM. Экспрессия и продукция цитокинов Th2 / Th3 у мышей, получавших прополис. Журнал этнофармакологии . 2010. 129 (3): 314–318. [PubMed] [Google Scholar] 26. Missima F, Pagliarone AC, Orsatti CL, Araújo JP, Jr., Sforcin JM. Влияние прополиса на экспрессию и продукцию цитокинов Th2 / Th3 у мышей с меланомой, подвергшихся стрессу. Фитотерапевтические исследования . 2010. 24 (10): 1501–1507. [PubMed] [Google Scholar] 27. Мирзоева О.К., Колдер П.С. Влияние прополиса и его компонентов на выработку эйкозаноидов во время воспалительной реакции. Простагландины, лейкотриены и незаменимые жирные кислоты . 1996. 55 (6): 441–449. [PubMed] [Google Scholar] 28. Ли Ю.К., Ли К.С., Пак С.Дж. и др. Блокада гиперчувствительности дыхательных путей и воспаления на морской модели астмы пролекарством цистеина, L-2-оксотиазолидин-4-карбоновой кислоты. Журнал FASEB . 2004; 18 (15): 1917–1919. [PubMed] [Google Scholar] 29. Xuan H, Zhu R, Li Y, Hu F. Ингибирующий эффект китайского прополиса на фосфатидилхолин-специфическую активность фосфолипазы C в эндотелиальных клетках сосудов. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2011; 2011: 8 страниц. 985278 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 30. Ясприка I, Морнар А., Дебеляк З. и др. In vivo исследование влияния добавок прополиса на антиоксидантный статус и эритроциты. Журнал этнофармакологии . 2007. 110 (3): 548–554. [PubMed] [Google Scholar] 31. Крол В., Шеллер С., Чуба З. и др. Ингибирование хемилюминесценции нейтрофилов этанольным экстрактом прополиса (EEP) и его фенольными компонентами. Журнал этнофармакологии . 1996. 55 (1): 19–25. [PubMed] [Google Scholar] 32. Банкова В.Б. Последние тенденции и важные достижения в исследованиях прополиса. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2005. 2 (1): 29–32. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 33.Медик-Сарич М., Растия В., Бойич М., Мужчины З. От функциональной пищи к лекарственному средству: систематический подход к анализу полифенолов из прополиса и вина. Журнал питания . 2009; 8 (1, статья 33) [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 34. Chirumbolo S. Прополис как противовоспалительное и противоаллергическое соединение: какова роль флавоноидов? Международная иммунофармакология . 2011; 11 (9): 1386–1387. [PubMed] [Google Scholar]

Влияние прополиса пчел без жала на экспериментальную астму

Доказательства на основе комплемента Alternat Med.2014; 2014: 951478.

, 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 2 и 1 , *

José Hidelbland Cavalcante de Farias

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Сильва Рейс

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Марсио Антонио Родригес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Хосе Абигейл Мендес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Anne Karine Martins As sunção

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Джардел Кавальканте де Фариас

Лаборатория из 1 Иммунофизиология, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Эдер Магалхаес Сильва Фиало

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и биологии Центр медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Люсилен Аморим Силва

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Graciomar Conceição Costa

1 Лаборатория иммунофизиологии, D Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Розане Нассар Мейрелеш Герра

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и здравоохранения Center, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Нильсе Соуза Рибейро

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян (UFMA) ), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Flávia Raquel Fernandes do Nascimento

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис , Массачусетс, Бразилия

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Научный редактор: Вася Банкова

Поступила в редакцию 27.12.2013; Пересмотрено 14 февраля 2014 г .; Принято 15 февраля 2014 г.

Авторские права © 2014 José Hidelbland Cavalcante de Farias et al.

Это статья в открытом доступе, распространяемая по лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии правильного цитирования оригинальной работы.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

Пчелиные продукты веками использовались эмпирически, особенно для лечения респираторных заболеваний. В настоящем исследовании оценивали эффект лечения водно-спиртовым экстрактом прополиса (ПГЭ), продуцируемым Scaptotrigona aff. postica пчела без жала в модели мышиной астмы. Мышей BALB / c иммунизировали дважды подкожно овальбумином (OVA). Через 14 дней им интраназально вводили OVA. Группы P50 и P200 получали PHE через желудочный зонд в дозах 50 и 200 мг / кг соответственно. Группу DEXA лечили внутрибрюшинной инъекцией дексаметазона. Группа OVA получала только воду. Мышей обрабатывали ежедневно в течение двух недель, а затем их второй раз иммунизировали интраназальным OVA. Лечение ПГЭ уменьшило количество клеток в бронхоальвеолярной жидкости (БАЛ).Гистологический анализ показал уменьшение перибронховаскулярного воспаления после лечения ПГЭ, особенно инфильтрации полиморфно-ядерных клеток. Кроме того, концентрация интерферона- γ (IFN- γ ) в сыворотке была снижена. Эти результаты были аналогичны результатам, полученным с дексаметазоном. Обработка прополисом S. aff postica уменьшала патологию, связанную с мышиной астмой, из-за ингибирования миграции воспалительных клеток в альвеолярное пространство и системного прогрессирования аллергического воспаления.

1. Введение

Астма считается серьезной проблемой общественного здравоохранения, от которой страдает примерно 10% населения мира. Это хроническое воспалительное заболевание дыхательных путей, в котором многие клетки играют важную роль [1]. Инфильтрация стенки дыхательных путей тучными клетками, эозинофилами, дендритными клетками, макрофагами, нейтрофилами и Т-лимфоцитами может наблюдаться в воспалительных реакциях легких, которые связаны с повышенной экспрессией множества белков, участвующих в сложном воспалительном каскаде, опосредованном цитокинами, хемокинами и липидные медиаторы [2].

Это заболевание может проявляться реакцией гиперчувствительности немедленного типа с последующей фазой позднего ответа. В экспериментальных моделях немедленная фаза может адоптивно переноситься сывороткой, тогда как поздняя фаза переносится лимфоцитами CD4 + T-хелперов 2 (Th3) типа. И IgE, и тучные клетки имеют решающее значение для запуска немедленной фазы аллергии. На поздней стадии участие Th3-клеток имеет решающее значение, поскольку они ответственны за высвобождение цитокинов, включая интерлейкины (ИЛ), ИЛ-4, ИЛ-5, ИЛ-9 и ИЛ-13, которые, в свою очередь, являются ответственны за эозинофильное воспаление [3].Несмотря на знания о роли цитокинов Th3 и IgE в экспериментальных моделях астмы, было показано, что Th2, связанный с ответом Th3, также важен при повреждении легких. Профиль Th2 сам по себе не вызывает каких-либо признаков астмы, но интерферон- γ (IFN- γ ) связан с патогенезом астмы и тяжестью этого заболевания [4]. На модели астмы было показано, что введение нейтрализующего антитела к IFN-γ подавляет гиперактивность дыхательных путей, что является оправданным ингибированием этого цитокина для лечения астмы [5].

В настоящее время глюкокортикоиды являются наиболее эффективным средством лечения астмы и доказали свою безопасность. Их эффективность была хорошо документирована в предотвращении заболеваемости и смертности, связанных с астмой, и в улучшении прогноза заболевания, включая уменьшение количества госпитализаций, предотвращение рецидивов и содействие выздоровлению, особенно у пациентов с тяжелой астмой и у детей [6]. Однако их длительное системное применение может вызвать множество нежелательных побочных эффектов, связанных с продуктами их катаболизма, иммуносупрессией [7].Фармацевтическая промышленность по-прежнему ставит перед собой амбициозную цель по производству стероидных аналогов, которые позволят избежать побочных эффектов и сохранят терапевтическую эффективность [8].

Таким образом, экспериментальные модели астмы на мышах были разработаны с использованием различных типов известных аллергенов [9, 10] и во многом способствовали изучению воспалительных механизмов астмы и тестированию новых лекарств, особенно тех, которые получены в результате эмпирического использования натуральных продуктов, таких как те, которые производятся пчелами, в попытке минимизировать дискомфорт, возникающий во время приступов астмы.

Прополис, производимый африканизированными пчелами, является мощным противовоспалительным агентом при остром и хроническом воспалении, что было подтверждено в экспериментах in vitro, и in vivo, , с этанольным и водным экстрактами прополиса или с соединениями, выделенными из прополиса [11– 14].

Было показано, что компоненты, полученные из прополиса, активируют макрофаги и что полифенолы могут быть ответственны за повышение способности макрофагов фагоцитировать, стимулировать лимфоциты и убивать микроорганизмы и опухоли [14–16].Важным фактом является то, что, несмотря на активацию макрофагов и индукцию высвобождения свободных радикалов, полифенолы широко известны как антиоксиданты [17, 18], которые улавливают избыточные свободные радикалы, генерируемые макрофагами и нейтрофилами [19].

Хотя многое уже известно о терапевтическом действии прополиса, вырабатываемого африканизированными пчелами, было мало исследований о терапевтических свойствах прополиса, вырабатываемых пчелами без укусов. Таким образом, в настоящей работе оценивалось действие прополиса, продуцируемого Scaptotrigona aff. postica, пчела без жала, о воспалении легких, вызванном экспериментальной астмой, индуцированной у мышей.

2. Материалы и методы

2.1. Получение водно-спиртового экстракта прополиса (PHE)

Прополис, производимый Scaptotrigona aff. postica был собран из внутренних частей улья, расположенного в муниципалитете Барра-ду-Корда (05 ° 30′20′′S, 45 ° 14′36′′W), штат Мараньян, Бразилия. Прополис in natura экстрагировали мацерацией в этаноле (70%) в течение 24 часов.Экстракционный раствор фильтровали и концентрировали до небольшого объема при 40 ° C в роторном испарителе при низком давлении, получая водно-спиртовой экстракт прополиса (PHE). Рассчитанный сухой вес дает 9 г продукта (4%) [16]. Содержание флавоноидов, фенольной кислоты и общего фенола в ПГЭ составило 0,55 ± 0,07%, 11,40 ± 0,73% и 11,95 ± 0,80% соответственно [20].

2.2. Животные

Взрослые самки мышей BALB / c в возрасте от двух до трех месяцев ( n = 5 на группу) были предоставлены Фондом для животных Федерального университета Мараньяна.Во время исследований животные содержались в помещении для животных лаборатории иммунофизиологии в контролируемых условиях окружающей среды. И воду, и пищу предлагали ad libitum до дня жертвоприношения. С животными обращались в соответствии с этическими нормами, установленными Бразильским колледжем экспериментов на животных, и настоящий проект был одобрен Комитетом по этике исследований на животных Государственного университета Мараньян (протокол № 010/2007).

2.3. Аллергическое воспаление легких, индуцированное овальбумином (OVA-)

Животных иммунизировали подкожно (sc.) 4 мкг г OVA, адсорбированных на 1,6 мг гидроксида алюминия (квасцы). Через семь дней та же процедура была повторена. Еще через семь дней животных слегка анестезировали 0,4 мл раствора ксилазин гидрохлорида (20 мг / кг) и заражали интраназальной инстилляцией (дюйм) 50 мкл л раствора OVA (10 мкл г OVA. / 50 мк л стерильного фосфатно-солевого буфера (PBS)).Через семь дней после первого заражения животным снова вводили тот же раствор [21]. Через 24 часа собирали кровь для получения сыворотки и животных умерщвляли, используя смертельную внутрибрюшинную терапию. инъекция 10% хлоралгидрата.

2.4. Лечение аллергического воспаления легких с помощью PHE

Лечение было начато сразу после второй иммунизации. Животным вводили перорально 100 μ L PHE в дозах 50 или 200 мг / кг / животное (P50 и P200, соответственно.) в течение 14 дней подряд. Животные в группе положительного контроля получали i.p. инъекции 100 мкл л дексаметазона (DEXA) в дозе 1 мг / кг / животное в течение 14 дней подряд. Группа отрицательного контроля (OVA) получала только физиологические растворы перорально. Чистый контроль не был ни сенсибилизирован, ни оспорен.

2.5. Сбор и подсчет клеток бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ)

Для каждого животного обнажали трахею и вводили 0,5 мл холодного PBS в бронхоальвеолярное пространство.После аспирации БАЛ вводили и аспирировали еще 0,5 мл PBS. Для определения общего числа клеток БАЛ 90 мкл л суспензии клеток фиксировали и окрашивали в 10 мкл л раствора, содержащего 0,05% кристаллического фиолетового, разбавленного 30% уксусной кислотой. Затем клетки подсчитывали в камере Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.6. Гистопатологическая оценка легких

После сбора БАЛ легкие перфузировали 10 мл PBS через канюлю, введенную в правый желудочек для удаления остаточной крови, и легкие взвешивали и фиксировали путем погружения в забуференный формалин (10%).Через 24 часа органы переносили в 70% спиртовой раствор до замачивания парафином. Ткани разрезали на 5 срезов размером мкм и размером мкм и окрашивали гематоксилином / эозином для гистопатологического исследования. Воспалительный процесс на гистологических срезах был качественно оценен и охарактеризован как отсутствующий, легкий, умеренный или тяжелый в зависимости от характеристик пораженного участка.

2.7. Сбор и подсчет клеток из перитонеального лаважа и лимфоидных органов

Чтобы проверить, могут ли эффекты PHE, наблюдаемые в легких, быть следствием системной иммуносупрессии, мы оценили лимфоидные органы, а также брюшную полость.Брюшную полость животного промывали 5 мл стерильного PBS. После иссечения брюшной стенки суспензии клеток получали путем аспирации с использованием шприца и иглы, переносили в полипропиленовые пробирки с коническим дном и выдерживали на ледяной бане (4 ° C) до подсчета клеток. После сбора перитонеального лаважа селезенку и брыжеечные лимфатические узлы собирали, взвешивали и измельчали. Бедренную кость перфузировали 1 мл PBS для получения клеток костного мозга.

Для подсчета общего числа клеток фиксировали 90 мкл л каждой клеточной суспензии и окрашивали 10 мк л 0.05% кристаллический фиолетовый в 30% уксусной кислоте. Клетки подсчитывали с помощью камеры Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.8. Количественная оценка сывороточного гамма-интерферона (IFN-

γ )

Было показано, что IFN- γ участвует в патогенезе астмы и может быть обнаружен у пациентов с атопией [4]. Итак, мы количественно определили этот важнейший цитокин в сыворотке крови. Количественный анализ выполняли в 96-луночных микролитровальных планшетах с плоским дном (Costar), которые покрывали добавлением 100 мкл л первичных антител против IFN-γ и инкубировали в течение ночи при 4 ° C.После инкубации планшет переворачивали и трижды промывали PBS + Tween 20 (PBS + T20, 300 мкл л / лунку) и блокировали 200 мкл л / лунку 10% фетальной бычьей сывороткой (FBS) в PBS для один час при комнатной температуре. Лунки отсасывали и трижды промывали PBS + T20. Добавляли сыворотку животных (100 мкл л образца / лунку), и образцы инкубировали в течение двух часов при комнатной температуре. Лунки аспирировали и промывали пять раз PBS + T20 (300 мкл л / лунку), а затем добавляли 100 мкл л / лунку детектирующего антитела, конъюгированного с авидином / пероксидазой.Затем планшеты инкубировали в течение одного часа и семь раз промывали PBS + T20 и добавляли 100 мкл раствора тетраметилбензидинового субстрата (TMB), л / лунку. Планшеты инкубировали в течение 30 минут в темноте, а затем реакцию останавливали добавлением 50 мкл L 2 N H 2 SO 4 . Считывание оптической плотности проводили с использованием автоматического ридера иммуноферментного анализа (ELISA) при поглощении 450 нм (Dynatech).

2.9. Статистический анализ

Анализ результатов проводился с использованием статистической программы Graph-Pad, версия 5.0. Значительные различия между обработками определяли дисперсионным анализом (ANOVA) с последующим применением теста Тьюки-Крамера. Статистические значения были приняты, когда P ≤ 0,05. Данные были выражены как среднее ± стандартное отклонение.

3. Результаты

3.1. Влияние обработки PHE на количество клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает общее и дифференциальное количество ячеек в BAL. Наблюдалось значительное снижение общего количества клеток ЖБАЛ в обеих группах, получавших ПГЭ (P50 и P200), по сравнению с контрольной группой OVA.Это снижение было аналогично тому, которое наблюдалось в группе DEXA (50%). Не было различий между группами DEXA, P50 и P200 (). Дифференциальный подсчет BAL-клеток продемонстрировал, что в контрольной группе OVA наблюдался более высокий процент полиморфно-ядерных воспалительных клеток (). Этот результат был противоположным в группах P50 и P200, с преобладанием мононуклеарных клеток и даже большим процентным снижением полиморфноядерных клеток, чем это наблюдалось в группе DEXA.

Эффект от лечения Scaptotrigona aff. postica PHE от количества клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA. Мышам в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Общий (а) и дифференциальный (б) подсчет клеток БАЛ выполняли через 24 часа после последнего заражения. * P <0,05 по сравнению с группой OVA.

3.2. Влияние обработки PHE на гистологию легких мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает гистологические срезы легких мышей из разных групп на микрофотографиях, сделанных при 40-кратном увеличении. показывает срез чистого контрольного животного, не зараженного OVA, на котором можно наблюдать чистую паренхиму без инфильтрации. Напротив, анализ гистологических срезов легких мышей в группе OVA показывает интенсивную перибронховаскулярную инфильтрацию и десквамацию эпителия (2).Процедуры DEXA (), P50 () и P200 () восстанавливали нормальный паттерн архитектуры легких, предотвращая воспалительную инфильтрацию и десквамацию эпителия.

Гистопатологические срезы легких мышей BALB / c, окрашенные гематоксилином / эозином. Мышей иммунизировали в дни 0 и 7 подкожно. инъекции 4 мкг г OVA / 1,6 мг квасцов. На 14 и 21 дни мышей заражали инъекцией 10 мкг г OVA. Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. Было дано два увеличения (400 и 100x) для чистого контроля (a), группы, иммунизированной OVA (b), обработанной DEXA (c) и обработанной PHE, в дозе 50 мг / кг (d) или 200 мг / кг ( д).Стрелками обозначены участки воспаления.

3.3. Влияние обработки PHE на циркулирующий IFN-

γ у мышей, иммунизированных и зараженных OVA

. Учитывая роль IFN-g в патогенезе астмы, мы измеряем этот цитокин в сыворотке. показывает, что у мышей, получавших PHE, наблюдалось значительное дозозависимое снижение сывороточного IFN-γ , которое было более интенсивным, чем наблюдаемое в группе DEXA.

Влияние обработки PHE S. aff postica на циркулирующий сывороточный IFN-γ мышей, иммунизированных и зараженных OVA.Мышей в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Эксперименты проводили через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

3.4. Влияние обработки PHE на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA

Обработка PHE не вызвала изменений количества клеток в костном мозге (), лимфатическом узле (), селезенке () , или брюшина ().По сравнению с контролем OVA, обработка DEXA значительно уменьшала количество клеток в лимфатическом узле, селезенке и брюшине, но не в костном мозге.

Эффект обработки PHE S. aff postica на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA, соответствует костному мозгу (a), лимфатическому узлу (b) и клеткам селезенки (c ), соответственно. Клетки брюшной полости собирали и подсчитывали для оценки миграции клеток (d).Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

4. Обсуждение

Настоящее исследование показывает, что лечение ПГЭ, вводимое перорально, значительно уменьшало аллергическое воспаление легких на мышиной модели астмы. Оба лечения с помощью ПГЭ (50 и 200 мг / кг) изменили структуру воспалительных клеток в легких и уменьшили приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхиму, изменив структуру воспалительных клеток в легких и уменьшив приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхима.Аналогичным образом было показано, что у мышей, получавших прополис, наблюдалось снижение количества воспалительных клеток в перитонеальных бронхоальвеолярных областях по сравнению с группой, не получавшей лечения [22]. Этот результат также согласуется с предыдущим исследованием, которое показало, что добавление прополиса к пище больных астмой в качестве дополнительной терапии при лечении этого заболевания дало определенные преимущества за счет снижения частоты кризов и необходимости в спасательных препаратах. , возможно, улучшая иммунный ответ пациентов [23].

Кроме того, лечение ПГЭ значительно снижает концентрацию IFN- γ , которая считается решающей в патогенезе астмы [4, 5]. Этот результат согласуется с некоторыми исследованиями, которые продемонстрировали, что введение прополиса мышам в течение короткого времени влияет как на базальную, так и на стимулированную продукцию IFN-γ и баланс Th2 / Th3 [24–26], что может быть связано с его противовоспалительные свойства. Таким образом, это снижение IFN-γ, наблюдаемое в группах, получавших PHE, могло вызвать улучшение легочного воспалительного состояния.Эта гипотеза подтверждается исследованиями, которые показали, что прополис и его продукты вызывают ингибирование синтеза простагландинов, лейкотриенов и гистаминов, высвобождаемых клетками легких свиней in vitro [23] и во время индуцированного острого воспаления брюшины in vivo [27]. .

Помимо ингибирующего действия прополиса на IFN-γ и на рекрутинг воспалительных клеток, другим объяснением действия прополиса в модели, использованной здесь, является его антиоксидантный эффект.Воспалительный процесс астмы может быть связан с большим выбросом свободных радикалов, поскольку множество воспалительных клеток, включая эозинофилы, нейтрофилы и макрофаги, способны генерировать активные формы кислорода в очагах воспаления. Следовательно, лечение астмы антиоксидантами было успешной терапевтической стратегией. Ли и др. [28], например, продемонстрировали, что окислительный стресс является решающей детерминантой астмы и что лечение антиоксидантами может быть полезной терапевтической стратегией.Недавние исследования показали, что этанольный экстракт прополиса способен влиять на уровни активных форм кислорода [29]. Прополис также уменьшал индуцированное свободными радикалами перекисное окисление липидов, а также увеличивал активность супероксиддисмутазы [30]. Считается, что компоненты прополиса, нейтрализующие свободные радикалы и супероксид, ответственны за основные регенеративные и противовоспалительные эффекты этого вещества [31].

Образцы прополиса, использованные в настоящем исследовании, показали в основном фенольную кислоту и общий фенол, как сообщалось ранее [20].Эти вещества, которые были обнаружены в других образцах прополиса, были определены как основные соединения с противовоспалительной активностью [32], а также могут быть связаны с полезным применением прополиса при аллергии и астме [33]. Следовательно, поскольку состав прополиса может варьироваться в зависимости от района, считается, что противоаллергическая и противовоспалительная активность прополиса может зависеть от сложного взаимодействия между различными природными фенольными соединениями, а не от одного соединения [34].

Важно подчеркнуть, что подавление воспаления легких было аналогично тому, которое наблюдалось при лечении дексаметазоном, мощным ингибитором воспаления дыхательных путей [6]. Однако иммуносупрессивный эффект дексаметазона не наблюдался у животных, получавших прополис, поскольку количество клеток в лимфатическом узле, костном мозге, селезенке и брюшной полости не было затронуто в обеих группах, получавших прополис. Таким образом, прополис кажется более безопасным лечением по сравнению с дексаметазоном.

Наконец, настоящее исследование показывает, что прополис оказывает ингибирующее действие на воспаление дыхательных путей на модели мышиной астмы, что оправдывает его использование в качестве альтернативного / дополнительного и недорогого лечения практически без побочных эффектов. Поэтому есть надежда, что настоящая работа поможет стимулировать и обогатить дискуссии и исследования по Scaptotrigona aff. postica прополис, а также приведет к его валидации и биологическому применению, а также будет способствовать сохранению местных видов, которые в последние годы продемонстрировали возросшую научную и экономическую ценность.

5. Заключение

Пероральное лечение прополисом производства Scaptotrigona aff. postica уменьшает патологию, связанную с мышиной астмой, подавляя как приток воспалительных клеток в альвеолярное пространство, так и системное прогрессирование аллергического воспаления.

Благодарности

Авторы благодарят бразильские финансовые агентства FAPEMA, CNPq, CAPES и FINEP за финансовую поддержку.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в отношении публикации данной статьи.

Вклад авторов

Хосе Хидельбланд Кавальканте де Фариас и Арамис Сильва Рейс выполнили экспериментальную работу и внесли равный вклад в работу. В интерпретации и подготовке статьи участвовали Марсио Антонио Родригес Араужу, Мария Хосе Абигайль Мендес Араужу, Джардел Кавальканте де Фариас, Эдер Магальяйнс Сильва Фиалью, Анн Карине Мартинс Ассунсао, Грасиомар да Консейсау Коста и Люсилен Аморим Силва. Розан Нассар Мейрелеш Герра, Мария Нильсе Соуза Рибейру и Флавия Ракель Фернандес ду Насименту разработали эксперименты и внесли свой вклад в интерпретацию и подготовку статьи.

Ссылки

1. Bateman ED, Hurd SS, Barnes PJ, et al. Глобальная стратегия лечения и профилактики астмы: краткое изложение GINA. Европейский респираторный журнал . 2008. 31 (1): 143–178. [PubMed] [Google Scholar] 2. Стирбулов Р., Бернд ЛАГ, Соле Д. IV Бразильские рекомендации по лечению астмы (Diretrizes Brasileiras para o Manejo da Asma) Revista Brasileira de Alergia e Imunopatologia . 2006. 29 (5): 222–245. [Google Scholar] 3. Бохнер Б.С., Буссе WW. Аллергия и астма. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 2005. 115 (5): 953–959. [PubMed] [Google Scholar] 4. Ten Hacken NH, Oosterhoff Y, Kauffman HF и др. Повышенный уровень интерферона- γ в сыворотке крови при атопической астме коррелирует с повышенной реактивностью дыхательных путей и вариациями пикового циркадного потока выдоха. Европейский респираторный журнал . 1998. 11 (2): 312–316. [PubMed] [Google Scholar] 5. Cohn L, Homer RJ, Niu N, Bottomly K. Т-хелперные клетки 1 и интерферон γ регулируют аллергическое воспаление дыхательных путей и выработку слизи. Журнал экспериментальной медицины . 1999. 190 (9): 1309–1318. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 6. Швиберт Л.М., Бек Л.А., Стеллато С., Бикель КА, Бохнер Б.С., Шлеймер Р.П. Подавление выработки цитокинов глюкокортикостероидами: отношение к противоаллергическому действию. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 1996. 97 (1-2): 143–152. [PubMed] [Google Scholar] 7. Baschant U, Tuckermann J. Роль рецептора глюкокортикоидов в воспалении и иммунитете. Журнал биохимии стероидов и молекулярной биологии .2010; 120 (2-3): 69–75. [PubMed] [Google Scholar] 8. Kleiman A, Tuckermann JP. Действие глюкокортикоидных рецепторов при благоприятных и побочных эффектах стероидной терапии: уроки на мышах с условным нокаутом. Молекулярная и клеточная эндокринология . 2007. 275 (1-2): 98–108. [PubMed] [Google Scholar] 9. де Сикейра А.Л., Руссо М., Стейл А.А., Фачинконе С., Мариано М., Янкар С. Новая мышиная модель легочной эозинофильной гиперчувствительности: вклад в экспериментальную астму. Журнал аллергии и клинической иммунологии .1997. 100 (3): 383–388. [PubMed] [Google Scholar] 10. Байс Д.Е., Сигрейв Дж., Грин Ф.Х. Модели астмы на животных: потенциальная полезность для изучения воздействия на здоровье вдыхаемых частиц. Ингаляционная токсикология . 2000. 12 (9): 829–862. [PubMed] [Google Scholar] 11. Добровольски Ю.В., Вохора С.Б., Шарма К., Шах С.А., Накви САХ, Дандия ПК. Противовоспалительные, антибактериальные, противогрибковые, антиамебные и жаропонижающие исследования продуктов пчеловодства на основе прополиса. Журнал этнофармакологии . 1991. 35 (1): 77–82.[PubMed] [Google Scholar] 12. Буэно-Силва Б., Аленкар С.М., Ку Х. и др. Противовоспалительная и антимикробная оценка неовестита и вестита, выделенных из бразильского красного прополиса. Журнал сельского хозяйства и пищевой химии . 2013. 61 (19): 4546–4550. [PubMed] [Google Scholar] 13. Паулино Н., Абреу С.Р., Уто Й. и др. Противовоспалительное действие биодоступного соединения артепиллина С в бразильском прополисе. Европейский журнал фармакологии . 2008. 587 (1–3): 296–301. [PubMed] [Google Scholar] 14.Араухо МАР, Либерио С.А., Герра РНМ, Рибейро Миннесота, Насименто ФРБ. Механизмы действия, лежащие в основе противовоспалительного и иммуномодулирующего действия прополиса: краткий обзор. Revista Brasileira de Farmacognosia . 2012. 22 (1): 208–219. [Google Scholar] 15. Димов В., Ивановская Н., Манолова Н., Банкова В., Николов Н., Попов С. Иммуномодулирующее действие прополиса. Влияние на противоинфекционную защиту и функцию макрофагов. Апидология . 1991. 22 (2): 155–162. [Google Scholar] 16.Араужо МДЖАМ, Дутра Р.П., Коста ГК и др. Эффект от лечения препаратом Scaptotrigona aff. postica прополис о развитии опухолей Эрлиха у мышей (Efeito do tratamento com própolis de Scaptotrigona aff. postica sobre o desenvolvimento do tumour de Ehrlich em camundongos) 2010. 20 (4): 580–587. [Google Scholar] 17. Оршолич Н., Башич И. Водорастворимое производное прополиса и его полифенольные соединения усиливают опухолевую активность макрофагов. Журнал этнофармакологии . 2005. 102 (1): 37–45. [PubMed] [Google Scholar] 18. Urquiaga I, Leighton F. Растительные полифенольные антиоксиданты и окислительный стресс. Биологические исследования . 2000. 33 (2): 55–64. [PubMed] [Google Scholar] 19. Маркеле Ф.Д., ди Мамбро В.М., Джорджетти С.Р., Касагранде Р., Валим YML, Фонсека MJV. Оценка антиоксидантной активности бразильских экстрактов прополиса отдельно и в фармацевтических препаратах для местного применения. Журнал фармацевтического и биомедицинского анализа .2005. 39 (3-4): 455–462. [PubMed] [Google Scholar] 20. Араужо МДЖАМ, Маттар Н.С., Рейс А.С. и др. Фармакогностическая и острая токсикологическая оценка Scaptotrigona aff. postica экстракт прополиса в доклинических исследованиях. Исследование природных продуктов . 2011. 25 (11): 1037–1046. [PubMed] [Google Scholar] 21. Руссо М., Нахори М.А., Лефорт Дж. И др. Подавление астматических реакций у разных линий мышей пероральной толерантностью. Американский журнал респираторной клетки и молекулярной биологии .2001. 24 (5): 518–526. [PubMed] [Google Scholar] 22. Sy LB, Wu Y-L, Chiang B-L, Wang Y-H, Wu W-M. Экстракты прополиса проявляют иммунорегуляторную активность на модели животных с воспалением дыхательных путей, сенсибилизированных OVA. Международная иммунофармакология . 2006. 6 (7): 1053–1060. [PubMed] [Google Scholar] 23. Хайял М.Т., Эль-Газали М.А., Эль-Хатиб А.С. Механизмы противовоспалительного действия экстракта прополиса. Лекарственные препараты, находящиеся в стадии экспериментальных и клинических исследований . 1993. 19 (5): 197–203. [PubMed] [Google Scholar] 24.Pagliarone AC, Orsatti CL, Búfalo MC и др. Влияние прополиса на выработку провоспалительных цитокинов и экспрессию Toll-подобных рецепторов 2 и 4 у стрессированных мышей. Международная иммунофармакология . 2009. 9 (11): 1352–1356. [PubMed] [Google Scholar] 25. Orsatti CL, Missima F, Pagliarone AC, Sforcin JM. Экспрессия и продукция цитокинов Th2 / Th3 у мышей, получавших прополис. Журнал этнофармакологии . 2010. 129 (3): 314–318. [PubMed] [Google Scholar] 26. Missima F, Pagliarone AC, Orsatti CL, Araújo JP, Jr., Sforcin JM. Влияние прополиса на экспрессию и продукцию цитокинов Th2 / Th3 у мышей с меланомой, подвергшихся стрессу. Фитотерапевтические исследования . 2010. 24 (10): 1501–1507. [PubMed] [Google Scholar] 27. Мирзоева О.К., Колдер П.С. Влияние прополиса и его компонентов на выработку эйкозаноидов во время воспалительной реакции. Простагландины, лейкотриены и незаменимые жирные кислоты . 1996. 55 (6): 441–449. [PubMed] [Google Scholar] 28. Ли Ю.К., Ли К.С., Пак С.Дж. и др. Блокада гиперчувствительности дыхательных путей и воспаления на морской модели астмы пролекарством цистеина, L-2-оксотиазолидин-4-карбоновой кислоты. Журнал FASEB . 2004; 18 (15): 1917–1919. [PubMed] [Google Scholar] 29. Xuan H, Zhu R, Li Y, Hu F. Ингибирующий эффект китайского прополиса на фосфатидилхолин-специфическую активность фосфолипазы C в эндотелиальных клетках сосудов. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2011; 2011: 8 страниц. 985278 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 30. Ясприка I, Морнар А., Дебеляк З. и др. In vivo исследование влияния добавок прополиса на антиоксидантный статус и эритроциты. Журнал этнофармакологии . 2007. 110 (3): 548–554. [PubMed] [Google Scholar] 31. Крол В., Шеллер С., Чуба З. и др. Ингибирование хемилюминесценции нейтрофилов этанольным экстрактом прополиса (EEP) и его фенольными компонентами. Журнал этнофармакологии . 1996. 55 (1): 19–25. [PubMed] [Google Scholar] 32. Банкова В.Б. Последние тенденции и важные достижения в исследованиях прополиса. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2005. 2 (1): 29–32. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 33.Медик-Сарич М., Растия В., Бойич М., Мужчины З. От функциональной пищи к лекарственному средству: систематический подход к анализу полифенолов из прополиса и вина. Журнал питания . 2009; 8 (1, статья 33) [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 34. Chirumbolo S. Прополис как противовоспалительное и противоаллергическое соединение: какова роль флавоноидов? Международная иммунофармакология . 2011; 11 (9): 1386–1387. [PubMed] [Google Scholar]

Влияние прополиса пчел без жала на экспериментальную астму

Доказательства на основе комплемента Alternat Med.2014; 2014: 951478.

, 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 2 и 1 , *

José Hidelbland Cavalcante de Farias

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Сильва Рейс

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Марсио Антонио Родригес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Хосе Абигейл Мендес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Anne Karine Martins As sunção

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Джардел Кавальканте де Фариас

Лаборатория из 1 Иммунофизиология, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Эдер Магалхаес Сильва Фиало

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и биологии Центр медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Люсилен Аморим Силва

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Graciomar Conceição Costa

1 Лаборатория иммунофизиологии, D Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Розане Нассар Мейрелеш Герра

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и здравоохранения Center, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Нильсе Соуза Рибейро

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян (UFMA) ), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Flávia Raquel Fernandes do Nascimento

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис , Массачусетс, Бразилия

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Научный редактор: Вася Банкова

Поступила в редакцию 27.12.2013; Пересмотрено 14 февраля 2014 г .; Принято 15 февраля 2014 г.

Авторские права © 2014 José Hidelbland Cavalcante de Farias et al.

Это статья в открытом доступе, распространяемая по лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии правильного цитирования оригинальной работы.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

Пчелиные продукты веками использовались эмпирически, особенно для лечения респираторных заболеваний. В настоящем исследовании оценивали эффект лечения водно-спиртовым экстрактом прополиса (ПГЭ), продуцируемым Scaptotrigona aff. postica пчела без жала в модели мышиной астмы. Мышей BALB / c иммунизировали дважды подкожно овальбумином (OVA). Через 14 дней им интраназально вводили OVA. Группы P50 и P200 получали PHE через желудочный зонд в дозах 50 и 200 мг / кг соответственно. Группу DEXA лечили внутрибрюшинной инъекцией дексаметазона. Группа OVA получала только воду. Мышей обрабатывали ежедневно в течение двух недель, а затем их второй раз иммунизировали интраназальным OVA. Лечение ПГЭ уменьшило количество клеток в бронхоальвеолярной жидкости (БАЛ).Гистологический анализ показал уменьшение перибронховаскулярного воспаления после лечения ПГЭ, особенно инфильтрации полиморфно-ядерных клеток. Кроме того, концентрация интерферона- γ (IFN- γ ) в сыворотке была снижена. Эти результаты были аналогичны результатам, полученным с дексаметазоном. Обработка прополисом S. aff postica уменьшала патологию, связанную с мышиной астмой, из-за ингибирования миграции воспалительных клеток в альвеолярное пространство и системного прогрессирования аллергического воспаления.

1. Введение

Астма считается серьезной проблемой общественного здравоохранения, от которой страдает примерно 10% населения мира. Это хроническое воспалительное заболевание дыхательных путей, в котором многие клетки играют важную роль [1]. Инфильтрация стенки дыхательных путей тучными клетками, эозинофилами, дендритными клетками, макрофагами, нейтрофилами и Т-лимфоцитами может наблюдаться в воспалительных реакциях легких, которые связаны с повышенной экспрессией множества белков, участвующих в сложном воспалительном каскаде, опосредованном цитокинами, хемокинами и липидные медиаторы [2].

Это заболевание может проявляться реакцией гиперчувствительности немедленного типа с последующей фазой позднего ответа. В экспериментальных моделях немедленная фаза может адоптивно переноситься сывороткой, тогда как поздняя фаза переносится лимфоцитами CD4 + T-хелперов 2 (Th3) типа. И IgE, и тучные клетки имеют решающее значение для запуска немедленной фазы аллергии. На поздней стадии участие Th3-клеток имеет решающее значение, поскольку они ответственны за высвобождение цитокинов, включая интерлейкины (ИЛ), ИЛ-4, ИЛ-5, ИЛ-9 и ИЛ-13, которые, в свою очередь, являются ответственны за эозинофильное воспаление [3].Несмотря на знания о роли цитокинов Th3 и IgE в экспериментальных моделях астмы, было показано, что Th2, связанный с ответом Th3, также важен при повреждении легких. Профиль Th2 сам по себе не вызывает каких-либо признаков астмы, но интерферон- γ (IFN- γ ) связан с патогенезом астмы и тяжестью этого заболевания [4]. На модели астмы было показано, что введение нейтрализующего антитела к IFN-γ подавляет гиперактивность дыхательных путей, что является оправданным ингибированием этого цитокина для лечения астмы [5].

В настоящее время глюкокортикоиды являются наиболее эффективным средством лечения астмы и доказали свою безопасность. Их эффективность была хорошо документирована в предотвращении заболеваемости и смертности, связанных с астмой, и в улучшении прогноза заболевания, включая уменьшение количества госпитализаций, предотвращение рецидивов и содействие выздоровлению, особенно у пациентов с тяжелой астмой и у детей [6]. Однако их длительное системное применение может вызвать множество нежелательных побочных эффектов, связанных с продуктами их катаболизма, иммуносупрессией [7].Фармацевтическая промышленность по-прежнему ставит перед собой амбициозную цель по производству стероидных аналогов, которые позволят избежать побочных эффектов и сохранят терапевтическую эффективность [8].

Таким образом, экспериментальные модели астмы на мышах были разработаны с использованием различных типов известных аллергенов [9, 10] и во многом способствовали изучению воспалительных механизмов астмы и тестированию новых лекарств, особенно тех, которые получены в результате эмпирического использования натуральных продуктов, таких как те, которые производятся пчелами, в попытке минимизировать дискомфорт, возникающий во время приступов астмы.

Прополис, производимый африканизированными пчелами, является мощным противовоспалительным агентом при остром и хроническом воспалении, что было подтверждено в экспериментах in vitro, и in vivo, , с этанольным и водным экстрактами прополиса или с соединениями, выделенными из прополиса [11– 14].

Было показано, что компоненты, полученные из прополиса, активируют макрофаги и что полифенолы могут быть ответственны за повышение способности макрофагов фагоцитировать, стимулировать лимфоциты и убивать микроорганизмы и опухоли [14–16].Важным фактом является то, что, несмотря на активацию макрофагов и индукцию высвобождения свободных радикалов, полифенолы широко известны как антиоксиданты [17, 18], которые улавливают избыточные свободные радикалы, генерируемые макрофагами и нейтрофилами [19].

Хотя многое уже известно о терапевтическом действии прополиса, вырабатываемого африканизированными пчелами, было мало исследований о терапевтических свойствах прополиса, вырабатываемых пчелами без укусов. Таким образом, в настоящей работе оценивалось действие прополиса, продуцируемого Scaptotrigona aff. postica, пчела без жала, о воспалении легких, вызванном экспериментальной астмой, индуцированной у мышей.

2. Материалы и методы

2.1. Получение водно-спиртового экстракта прополиса (PHE)

Прополис, производимый Scaptotrigona aff. postica был собран из внутренних частей улья, расположенного в муниципалитете Барра-ду-Корда (05 ° 30′20′′S, 45 ° 14′36′′W), штат Мараньян, Бразилия. Прополис in natura экстрагировали мацерацией в этаноле (70%) в течение 24 часов.Экстракционный раствор фильтровали и концентрировали до небольшого объема при 40 ° C в роторном испарителе при низком давлении, получая водно-спиртовой экстракт прополиса (PHE). Рассчитанный сухой вес дает 9 г продукта (4%) [16]. Содержание флавоноидов, фенольной кислоты и общего фенола в ПГЭ составило 0,55 ± 0,07%, 11,40 ± 0,73% и 11,95 ± 0,80% соответственно [20].

2.2. Животные

Взрослые самки мышей BALB / c в возрасте от двух до трех месяцев ( n = 5 на группу) были предоставлены Фондом для животных Федерального университета Мараньяна.Во время исследований животные содержались в помещении для животных лаборатории иммунофизиологии в контролируемых условиях окружающей среды. И воду, и пищу предлагали ad libitum до дня жертвоприношения. С животными обращались в соответствии с этическими нормами, установленными Бразильским колледжем экспериментов на животных, и настоящий проект был одобрен Комитетом по этике исследований на животных Государственного университета Мараньян (протокол № 010/2007).

2.3. Аллергическое воспаление легких, индуцированное овальбумином (OVA-)

Животных иммунизировали подкожно (sc.) 4 мкг г OVA, адсорбированных на 1,6 мг гидроксида алюминия (квасцы). Через семь дней та же процедура была повторена. Еще через семь дней животных слегка анестезировали 0,4 мл раствора ксилазин гидрохлорида (20 мг / кг) и заражали интраназальной инстилляцией (дюйм) 50 мкл л раствора OVA (10 мкл г OVA. / 50 мк л стерильного фосфатно-солевого буфера (PBS)).Через семь дней после первого заражения животным снова вводили тот же раствор [21]. Через 24 часа собирали кровь для получения сыворотки и животных умерщвляли, используя смертельную внутрибрюшинную терапию. инъекция 10% хлоралгидрата.

2.4. Лечение аллергического воспаления легких с помощью PHE

Лечение было начато сразу после второй иммунизации. Животным вводили перорально 100 μ L PHE в дозах 50 или 200 мг / кг / животное (P50 и P200, соответственно.) в течение 14 дней подряд. Животные в группе положительного контроля получали i.p. инъекции 100 мкл л дексаметазона (DEXA) в дозе 1 мг / кг / животное в течение 14 дней подряд. Группа отрицательного контроля (OVA) получала только физиологические растворы перорально. Чистый контроль не был ни сенсибилизирован, ни оспорен.

2.5. Сбор и подсчет клеток бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ)

Для каждого животного обнажали трахею и вводили 0,5 мл холодного PBS в бронхоальвеолярное пространство.После аспирации БАЛ вводили и аспирировали еще 0,5 мл PBS. Для определения общего числа клеток БАЛ 90 мкл л суспензии клеток фиксировали и окрашивали в 10 мкл л раствора, содержащего 0,05% кристаллического фиолетового, разбавленного 30% уксусной кислотой. Затем клетки подсчитывали в камере Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.6. Гистопатологическая оценка легких

После сбора БАЛ легкие перфузировали 10 мл PBS через канюлю, введенную в правый желудочек для удаления остаточной крови, и легкие взвешивали и фиксировали путем погружения в забуференный формалин (10%).Через 24 часа органы переносили в 70% спиртовой раствор до замачивания парафином. Ткани разрезали на 5 срезов размером мкм и размером мкм и окрашивали гематоксилином / эозином для гистопатологического исследования. Воспалительный процесс на гистологических срезах был качественно оценен и охарактеризован как отсутствующий, легкий, умеренный или тяжелый в зависимости от характеристик пораженного участка.

2.7. Сбор и подсчет клеток из перитонеального лаважа и лимфоидных органов

Чтобы проверить, могут ли эффекты PHE, наблюдаемые в легких, быть следствием системной иммуносупрессии, мы оценили лимфоидные органы, а также брюшную полость.Брюшную полость животного промывали 5 мл стерильного PBS. После иссечения брюшной стенки суспензии клеток получали путем аспирации с использованием шприца и иглы, переносили в полипропиленовые пробирки с коническим дном и выдерживали на ледяной бане (4 ° C) до подсчета клеток. После сбора перитонеального лаважа селезенку и брыжеечные лимфатические узлы собирали, взвешивали и измельчали. Бедренную кость перфузировали 1 мл PBS для получения клеток костного мозга.

Для подсчета общего числа клеток фиксировали 90 мкл л каждой клеточной суспензии и окрашивали 10 мк л 0.05% кристаллический фиолетовый в 30% уксусной кислоте. Клетки подсчитывали с помощью камеры Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.8. Количественная оценка сывороточного гамма-интерферона (IFN-

γ )

Было показано, что IFN- γ участвует в патогенезе астмы и может быть обнаружен у пациентов с атопией [4]. Итак, мы количественно определили этот важнейший цитокин в сыворотке крови. Количественный анализ выполняли в 96-луночных микролитровальных планшетах с плоским дном (Costar), которые покрывали добавлением 100 мкл л первичных антител против IFN-γ и инкубировали в течение ночи при 4 ° C.После инкубации планшет переворачивали и трижды промывали PBS + Tween 20 (PBS + T20, 300 мкл л / лунку) и блокировали 200 мкл л / лунку 10% фетальной бычьей сывороткой (FBS) в PBS для один час при комнатной температуре. Лунки отсасывали и трижды промывали PBS + T20. Добавляли сыворотку животных (100 мкл л образца / лунку), и образцы инкубировали в течение двух часов при комнатной температуре. Лунки аспирировали и промывали пять раз PBS + T20 (300 мкл л / лунку), а затем добавляли 100 мкл л / лунку детектирующего антитела, конъюгированного с авидином / пероксидазой.Затем планшеты инкубировали в течение одного часа и семь раз промывали PBS + T20 и добавляли 100 мкл раствора тетраметилбензидинового субстрата (TMB), л / лунку. Планшеты инкубировали в течение 30 минут в темноте, а затем реакцию останавливали добавлением 50 мкл L 2 N H 2 SO 4 . Считывание оптической плотности проводили с использованием автоматического ридера иммуноферментного анализа (ELISA) при поглощении 450 нм (Dynatech).

2.9. Статистический анализ

Анализ результатов проводился с использованием статистической программы Graph-Pad, версия 5.0. Значительные различия между обработками определяли дисперсионным анализом (ANOVA) с последующим применением теста Тьюки-Крамера. Статистические значения были приняты, когда P ≤ 0,05. Данные были выражены как среднее ± стандартное отклонение.

3. Результаты

3.1. Влияние обработки PHE на количество клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает общее и дифференциальное количество ячеек в BAL. Наблюдалось значительное снижение общего количества клеток ЖБАЛ в обеих группах, получавших ПГЭ (P50 и P200), по сравнению с контрольной группой OVA.Это снижение было аналогично тому, которое наблюдалось в группе DEXA (50%). Не было различий между группами DEXA, P50 и P200 (). Дифференциальный подсчет BAL-клеток продемонстрировал, что в контрольной группе OVA наблюдался более высокий процент полиморфно-ядерных воспалительных клеток (). Этот результат был противоположным в группах P50 и P200, с преобладанием мононуклеарных клеток и даже большим процентным снижением полиморфноядерных клеток, чем это наблюдалось в группе DEXA.

Эффект от лечения Scaptotrigona aff. postica PHE от количества клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA. Мышам в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Общий (а) и дифференциальный (б) подсчет клеток БАЛ выполняли через 24 часа после последнего заражения. * P <0,05 по сравнению с группой OVA.

3.2. Влияние обработки PHE на гистологию легких мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает гистологические срезы легких мышей из разных групп на микрофотографиях, сделанных при 40-кратном увеличении. показывает срез чистого контрольного животного, не зараженного OVA, на котором можно наблюдать чистую паренхиму без инфильтрации. Напротив, анализ гистологических срезов легких мышей в группе OVA показывает интенсивную перибронховаскулярную инфильтрацию и десквамацию эпителия (2).Процедуры DEXA (), P50 () и P200 () восстанавливали нормальный паттерн архитектуры легких, предотвращая воспалительную инфильтрацию и десквамацию эпителия.

Гистопатологические срезы легких мышей BALB / c, окрашенные гематоксилином / эозином. Мышей иммунизировали в дни 0 и 7 подкожно. инъекции 4 мкг г OVA / 1,6 мг квасцов. На 14 и 21 дни мышей заражали инъекцией 10 мкг г OVA. Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. Было дано два увеличения (400 и 100x) для чистого контроля (a), группы, иммунизированной OVA (b), обработанной DEXA (c) и обработанной PHE, в дозе 50 мг / кг (d) или 200 мг / кг ( д).Стрелками обозначены участки воспаления.

3.3. Влияние обработки PHE на циркулирующий IFN-

γ у мышей, иммунизированных и зараженных OVA

. Учитывая роль IFN-g в патогенезе астмы, мы измеряем этот цитокин в сыворотке. показывает, что у мышей, получавших PHE, наблюдалось значительное дозозависимое снижение сывороточного IFN-γ , которое было более интенсивным, чем наблюдаемое в группе DEXA.

Влияние обработки PHE S. aff postica на циркулирующий сывороточный IFN-γ мышей, иммунизированных и зараженных OVA.Мышей в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Эксперименты проводили через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

3.4. Влияние обработки PHE на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA

Обработка PHE не вызвала изменений количества клеток в костном мозге (), лимфатическом узле (), селезенке () , или брюшина ().По сравнению с контролем OVA, обработка DEXA значительно уменьшала количество клеток в лимфатическом узле, селезенке и брюшине, но не в костном мозге.

Эффект обработки PHE S. aff postica на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA, соответствует костному мозгу (a), лимфатическому узлу (b) и клеткам селезенки (c ), соответственно. Клетки брюшной полости собирали и подсчитывали для оценки миграции клеток (d).Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

4. Обсуждение

Настоящее исследование показывает, что лечение ПГЭ, вводимое перорально, значительно уменьшало аллергическое воспаление легких на мышиной модели астмы. Оба лечения с помощью ПГЭ (50 и 200 мг / кг) изменили структуру воспалительных клеток в легких и уменьшили приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхиму, изменив структуру воспалительных клеток в легких и уменьшив приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхима.Аналогичным образом было показано, что у мышей, получавших прополис, наблюдалось снижение количества воспалительных клеток в перитонеальных бронхоальвеолярных областях по сравнению с группой, не получавшей лечения [22]. Этот результат также согласуется с предыдущим исследованием, которое показало, что добавление прополиса к пище больных астмой в качестве дополнительной терапии при лечении этого заболевания дало определенные преимущества за счет снижения частоты кризов и необходимости в спасательных препаратах. , возможно, улучшая иммунный ответ пациентов [23].

Кроме того, лечение ПГЭ значительно снижает концентрацию IFN- γ , которая считается решающей в патогенезе астмы [4, 5]. Этот результат согласуется с некоторыми исследованиями, которые продемонстрировали, что введение прополиса мышам в течение короткого времени влияет как на базальную, так и на стимулированную продукцию IFN-γ и баланс Th2 / Th3 [24–26], что может быть связано с его противовоспалительные свойства. Таким образом, это снижение IFN-γ, наблюдаемое в группах, получавших PHE, могло вызвать улучшение легочного воспалительного состояния.Эта гипотеза подтверждается исследованиями, которые показали, что прополис и его продукты вызывают ингибирование синтеза простагландинов, лейкотриенов и гистаминов, высвобождаемых клетками легких свиней in vitro [23] и во время индуцированного острого воспаления брюшины in vivo [27]. .

Помимо ингибирующего действия прополиса на IFN-γ и на рекрутинг воспалительных клеток, другим объяснением действия прополиса в модели, использованной здесь, является его антиоксидантный эффект.Воспалительный процесс астмы может быть связан с большим выбросом свободных радикалов, поскольку множество воспалительных клеток, включая эозинофилы, нейтрофилы и макрофаги, способны генерировать активные формы кислорода в очагах воспаления. Следовательно, лечение астмы антиоксидантами было успешной терапевтической стратегией. Ли и др. [28], например, продемонстрировали, что окислительный стресс является решающей детерминантой астмы и что лечение антиоксидантами может быть полезной терапевтической стратегией.Недавние исследования показали, что этанольный экстракт прополиса способен влиять на уровни активных форм кислорода [29]. Прополис также уменьшал индуцированное свободными радикалами перекисное окисление липидов, а также увеличивал активность супероксиддисмутазы [30]. Считается, что компоненты прополиса, нейтрализующие свободные радикалы и супероксид, ответственны за основные регенеративные и противовоспалительные эффекты этого вещества [31].

Образцы прополиса, использованные в настоящем исследовании, показали в основном фенольную кислоту и общий фенол, как сообщалось ранее [20].Эти вещества, которые были обнаружены в других образцах прополиса, были определены как основные соединения с противовоспалительной активностью [32], а также могут быть связаны с полезным применением прополиса при аллергии и астме [33]. Следовательно, поскольку состав прополиса может варьироваться в зависимости от района, считается, что противоаллергическая и противовоспалительная активность прополиса может зависеть от сложного взаимодействия между различными природными фенольными соединениями, а не от одного соединения [34].

Важно подчеркнуть, что подавление воспаления легких было аналогично тому, которое наблюдалось при лечении дексаметазоном, мощным ингибитором воспаления дыхательных путей [6]. Однако иммуносупрессивный эффект дексаметазона не наблюдался у животных, получавших прополис, поскольку количество клеток в лимфатическом узле, костном мозге, селезенке и брюшной полости не было затронуто в обеих группах, получавших прополис. Таким образом, прополис кажется более безопасным лечением по сравнению с дексаметазоном.

Наконец, настоящее исследование показывает, что прополис оказывает ингибирующее действие на воспаление дыхательных путей на модели мышиной астмы, что оправдывает его использование в качестве альтернативного / дополнительного и недорогого лечения практически без побочных эффектов. Поэтому есть надежда, что настоящая работа поможет стимулировать и обогатить дискуссии и исследования по Scaptotrigona aff. postica прополис, а также приведет к его валидации и биологическому применению, а также будет способствовать сохранению местных видов, которые в последние годы продемонстрировали возросшую научную и экономическую ценность.

5. Заключение

Пероральное лечение прополисом производства Scaptotrigona aff. postica уменьшает патологию, связанную с мышиной астмой, подавляя как приток воспалительных клеток в альвеолярное пространство, так и системное прогрессирование аллергического воспаления.

Благодарности

Авторы благодарят бразильские финансовые агентства FAPEMA, CNPq, CAPES и FINEP за финансовую поддержку.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в отношении публикации данной статьи.

Вклад авторов

Хосе Хидельбланд Кавальканте де Фариас и Арамис Сильва Рейс выполнили экспериментальную работу и внесли равный вклад в работу. В интерпретации и подготовке статьи участвовали Марсио Антонио Родригес Араужу, Мария Хосе Абигайль Мендес Араужу, Джардел Кавальканте де Фариас, Эдер Магальяйнс Сильва Фиалью, Анн Карине Мартинс Ассунсао, Грасиомар да Консейсау Коста и Люсилен Аморим Силва. Розан Нассар Мейрелеш Герра, Мария Нильсе Соуза Рибейру и Флавия Ракель Фернандес ду Насименту разработали эксперименты и внесли свой вклад в интерпретацию и подготовку статьи.

Ссылки

1. Bateman ED, Hurd SS, Barnes PJ, et al. Глобальная стратегия лечения и профилактики астмы: краткое изложение GINA. Европейский респираторный журнал . 2008. 31 (1): 143–178. [PubMed] [Google Scholar] 2. Стирбулов Р., Бернд ЛАГ, Соле Д. IV Бразильские рекомендации по лечению астмы (Diretrizes Brasileiras para o Manejo da Asma) Revista Brasileira de Alergia e Imunopatologia . 2006. 29 (5): 222–245. [Google Scholar] 3. Бохнер Б.С., Буссе WW. Аллергия и астма. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 2005. 115 (5): 953–959. [PubMed] [Google Scholar] 4. Ten Hacken NH, Oosterhoff Y, Kauffman HF и др. Повышенный уровень интерферона- γ в сыворотке крови при атопической астме коррелирует с повышенной реактивностью дыхательных путей и вариациями пикового циркадного потока выдоха. Европейский респираторный журнал . 1998. 11 (2): 312–316. [PubMed] [Google Scholar] 5. Cohn L, Homer RJ, Niu N, Bottomly K. Т-хелперные клетки 1 и интерферон γ регулируют аллергическое воспаление дыхательных путей и выработку слизи. Журнал экспериментальной медицины . 1999. 190 (9): 1309–1318. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 6. Швиберт Л.М., Бек Л.А., Стеллато С., Бикель КА, Бохнер Б.С., Шлеймер Р.П. Подавление выработки цитокинов глюкокортикостероидами: отношение к противоаллергическому действию. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 1996. 97 (1-2): 143–152. [PubMed] [Google Scholar] 7. Baschant U, Tuckermann J. Роль рецептора глюкокортикоидов в воспалении и иммунитете. Журнал биохимии стероидов и молекулярной биологии .2010; 120 (2-3): 69–75. [PubMed] [Google Scholar] 8. Kleiman A, Tuckermann JP. Действие глюкокортикоидных рецепторов при благоприятных и побочных эффектах стероидной терапии: уроки на мышах с условным нокаутом. Молекулярная и клеточная эндокринология . 2007. 275 (1-2): 98–108. [PubMed] [Google Scholar] 9. де Сикейра А.Л., Руссо М., Стейл А.А., Фачинконе С., Мариано М., Янкар С. Новая мышиная модель легочной эозинофильной гиперчувствительности: вклад в экспериментальную астму. Журнал аллергии и клинической иммунологии .1997. 100 (3): 383–388. [PubMed] [Google Scholar] 10. Байс Д.Е., Сигрейв Дж., Грин Ф.Х. Модели астмы на животных: потенциальная полезность для изучения воздействия на здоровье вдыхаемых частиц. Ингаляционная токсикология . 2000. 12 (9): 829–862. [PubMed] [Google Scholar] 11. Добровольски Ю.В., Вохора С.Б., Шарма К., Шах С.А., Накви САХ, Дандия ПК. Противовоспалительные, антибактериальные, противогрибковые, антиамебные и жаропонижающие исследования продуктов пчеловодства на основе прополиса. Журнал этнофармакологии . 1991. 35 (1): 77–82.[PubMed] [Google Scholar] 12. Буэно-Силва Б., Аленкар С.М., Ку Х. и др. Противовоспалительная и антимикробная оценка неовестита и вестита, выделенных из бразильского красного прополиса. Журнал сельского хозяйства и пищевой химии . 2013. 61 (19): 4546–4550. [PubMed] [Google Scholar] 13. Паулино Н., Абреу С.Р., Уто Й. и др. Противовоспалительное действие биодоступного соединения артепиллина С в бразильском прополисе. Европейский журнал фармакологии . 2008. 587 (1–3): 296–301. [PubMed] [Google Scholar] 14.Араухо МАР, Либерио С.А., Герра РНМ, Рибейро Миннесота, Насименто ФРБ. Механизмы действия, лежащие в основе противовоспалительного и иммуномодулирующего действия прополиса: краткий обзор. Revista Brasileira de Farmacognosia . 2012. 22 (1): 208–219. [Google Scholar] 15. Димов В., Ивановская Н., Манолова Н., Банкова В., Николов Н., Попов С. Иммуномодулирующее действие прополиса. Влияние на противоинфекционную защиту и функцию макрофагов. Апидология . 1991. 22 (2): 155–162. [Google Scholar] 16.Араужо МДЖАМ, Дутра Р.П., Коста ГК и др. Эффект от лечения препаратом Scaptotrigona aff. postica прополис о развитии опухолей Эрлиха у мышей (Efeito do tratamento com própolis de Scaptotrigona aff. postica sobre o desenvolvimento do tumour de Ehrlich em camundongos) 2010. 20 (4): 580–587. [Google Scholar] 17. Оршолич Н., Башич И. Водорастворимое производное прополиса и его полифенольные соединения усиливают опухолевую активность макрофагов. Журнал этнофармакологии . 2005. 102 (1): 37–45. [PubMed] [Google Scholar] 18. Urquiaga I, Leighton F. Растительные полифенольные антиоксиданты и окислительный стресс. Биологические исследования . 2000. 33 (2): 55–64. [PubMed] [Google Scholar] 19. Маркеле Ф.Д., ди Мамбро В.М., Джорджетти С.Р., Касагранде Р., Валим YML, Фонсека MJV. Оценка антиоксидантной активности бразильских экстрактов прополиса отдельно и в фармацевтических препаратах для местного применения. Журнал фармацевтического и биомедицинского анализа .2005. 39 (3-4): 455–462. [PubMed] [Google Scholar] 20. Араужо МДЖАМ, Маттар Н.С., Рейс А.С. и др. Фармакогностическая и острая токсикологическая оценка Scaptotrigona aff. postica экстракт прополиса в доклинических исследованиях. Исследование природных продуктов . 2011. 25 (11): 1037–1046. [PubMed] [Google Scholar] 21. Руссо М., Нахори М.А., Лефорт Дж. И др. Подавление астматических реакций у разных линий мышей пероральной толерантностью. Американский журнал респираторной клетки и молекулярной биологии .2001. 24 (5): 518–526. [PubMed] [Google Scholar] 22. Sy LB, Wu Y-L, Chiang B-L, Wang Y-H, Wu W-M. Экстракты прополиса проявляют иммунорегуляторную активность на модели животных с воспалением дыхательных путей, сенсибилизированных OVA. Международная иммунофармакология . 2006. 6 (7): 1053–1060. [PubMed] [Google Scholar] 23. Хайял М.Т., Эль-Газали М.А., Эль-Хатиб А.С. Механизмы противовоспалительного действия экстракта прополиса. Лекарственные препараты, находящиеся в стадии экспериментальных и клинических исследований . 1993. 19 (5): 197–203. [PubMed] [Google Scholar] 24.Pagliarone AC, Orsatti CL, Búfalo MC и др. Влияние прополиса на выработку провоспалительных цитокинов и экспрессию Toll-подобных рецепторов 2 и 4 у стрессированных мышей. Международная иммунофармакология . 2009. 9 (11): 1352–1356. [PubMed] [Google Scholar] 25. Orsatti CL, Missima F, Pagliarone AC, Sforcin JM. Экспрессия и продукция цитокинов Th2 / Th3 у мышей, получавших прополис. Журнал этнофармакологии . 2010. 129 (3): 314–318. [PubMed] [Google Scholar] 26. Missima F, Pagliarone AC, Orsatti CL, Araújo JP, Jr., Sforcin JM. Влияние прополиса на экспрессию и продукцию цитокинов Th2 / Th3 у мышей с меланомой, подвергшихся стрессу. Фитотерапевтические исследования . 2010. 24 (10): 1501–1507. [PubMed] [Google Scholar] 27. Мирзоева О.К., Колдер П.С. Влияние прополиса и его компонентов на выработку эйкозаноидов во время воспалительной реакции. Простагландины, лейкотриены и незаменимые жирные кислоты . 1996. 55 (6): 441–449. [PubMed] [Google Scholar] 28. Ли Ю.К., Ли К.С., Пак С.Дж. и др. Блокада гиперчувствительности дыхательных путей и воспаления на морской модели астмы пролекарством цистеина, L-2-оксотиазолидин-4-карбоновой кислоты. Журнал FASEB . 2004; 18 (15): 1917–1919. [PubMed] [Google Scholar] 29. Xuan H, Zhu R, Li Y, Hu F. Ингибирующий эффект китайского прополиса на фосфатидилхолин-специфическую активность фосфолипазы C в эндотелиальных клетках сосудов. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2011; 2011: 8 страниц. 985278 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 30. Ясприка I, Морнар А., Дебеляк З. и др. In vivo исследование влияния добавок прополиса на антиоксидантный статус и эритроциты. Журнал этнофармакологии . 2007. 110 (3): 548–554. [PubMed] [Google Scholar] 31. Крол В., Шеллер С., Чуба З. и др. Ингибирование хемилюминесценции нейтрофилов этанольным экстрактом прополиса (EEP) и его фенольными компонентами. Журнал этнофармакологии . 1996. 55 (1): 19–25. [PubMed] [Google Scholar] 32. Банкова В.Б. Последние тенденции и важные достижения в исследованиях прополиса. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2005. 2 (1): 29–32. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 33.Медик-Сарич М., Растия В., Бойич М., Мужчины З. От функциональной пищи к лекарственному средству: систематический подход к анализу полифенолов из прополиса и вина. Журнал питания . 2009; 8 (1, статья 33) [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 34. Chirumbolo S. Прополис как противовоспалительное и противоаллергическое соединение: какова роль флавоноидов? Международная иммунофармакология . 2011; 11 (9): 1386–1387. [PubMed] [Google Scholar]

Влияние прополиса пчел без жала на экспериментальную астму

Доказательства на основе комплемента Alternat Med.2014; 2014: 951478.

, 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 1 , 2 и 1 , *

José Hidelbland Cavalcante de Farias

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Сильва Рейс

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Марсио Антонио Родригес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Хосе Абигейл Мендес Араужу

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Anne Karine Martins As sunção

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Джардел Кавальканте де Фариас

Лаборатория из 1 Иммунофизиология, Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Эдер Магалхаес Сильва Фиало

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и биологии Центр медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Люсилен Аморим Силва

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Graciomar Conceição Costa

1 Лаборатория иммунофизиологии, D Отделение патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Розане Нассар Мейрелеш Герра

1 Лаборатория иммунофизиологии, Отделение патологии, биологии и здравоохранения Center, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Мария Нильсе Соуза Рибейро

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук Федерального университета Мараньян (UFMA) ), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Flávia Raquel Fernandes do Nascimento

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян (UFMA), 65085-580 Сан-Луис , Массачусетс, Бразилия

1 Лаборатория иммунофизиологии, Департамент патологии, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньян ( UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

2 Лаборатория фармакогнозии, Департамент фармации, Центр биологических и медицинских наук, Федеральный университет Мараньяна (UFMA), 65085-580 Сан-Луис, Массачусетс, Бразилия

Научный редактор: Вася Банкова

Поступила в редакцию 27.12.2013; Пересмотрено 14 февраля 2014 г .; Принято 15 февраля 2014 г.

Авторские права © 2014 José Hidelbland Cavalcante de Farias et al.

Это статья в открытом доступе, распространяемая по лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии правильного цитирования оригинальной работы.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

Пчелиные продукты веками использовались эмпирически, особенно для лечения респираторных заболеваний. В настоящем исследовании оценивали эффект лечения водно-спиртовым экстрактом прополиса (ПГЭ), продуцируемым Scaptotrigona aff. postica пчела без жала в модели мышиной астмы. Мышей BALB / c иммунизировали дважды подкожно овальбумином (OVA). Через 14 дней им интраназально вводили OVA. Группы P50 и P200 получали PHE через желудочный зонд в дозах 50 и 200 мг / кг соответственно. Группу DEXA лечили внутрибрюшинной инъекцией дексаметазона. Группа OVA получала только воду. Мышей обрабатывали ежедневно в течение двух недель, а затем их второй раз иммунизировали интраназальным OVA. Лечение ПГЭ уменьшило количество клеток в бронхоальвеолярной жидкости (БАЛ).Гистологический анализ показал уменьшение перибронховаскулярного воспаления после лечения ПГЭ, особенно инфильтрации полиморфно-ядерных клеток. Кроме того, концентрация интерферона- γ (IFN- γ ) в сыворотке была снижена. Эти результаты были аналогичны результатам, полученным с дексаметазоном. Обработка прополисом S. aff postica уменьшала патологию, связанную с мышиной астмой, из-за ингибирования миграции воспалительных клеток в альвеолярное пространство и системного прогрессирования аллергического воспаления.

1. Введение

Астма считается серьезной проблемой общественного здравоохранения, от которой страдает примерно 10% населения мира. Это хроническое воспалительное заболевание дыхательных путей, в котором многие клетки играют важную роль [1]. Инфильтрация стенки дыхательных путей тучными клетками, эозинофилами, дендритными клетками, макрофагами, нейтрофилами и Т-лимфоцитами может наблюдаться в воспалительных реакциях легких, которые связаны с повышенной экспрессией множества белков, участвующих в сложном воспалительном каскаде, опосредованном цитокинами, хемокинами и липидные медиаторы [2].

Это заболевание может проявляться реакцией гиперчувствительности немедленного типа с последующей фазой позднего ответа. В экспериментальных моделях немедленная фаза может адоптивно переноситься сывороткой, тогда как поздняя фаза переносится лимфоцитами CD4 + T-хелперов 2 (Th3) типа. И IgE, и тучные клетки имеют решающее значение для запуска немедленной фазы аллергии. На поздней стадии участие Th3-клеток имеет решающее значение, поскольку они ответственны за высвобождение цитокинов, включая интерлейкины (ИЛ), ИЛ-4, ИЛ-5, ИЛ-9 и ИЛ-13, которые, в свою очередь, являются ответственны за эозинофильное воспаление [3].Несмотря на знания о роли цитокинов Th3 и IgE в экспериментальных моделях астмы, было показано, что Th2, связанный с ответом Th3, также важен при повреждении легких. Профиль Th2 сам по себе не вызывает каких-либо признаков астмы, но интерферон- γ (IFN- γ ) связан с патогенезом астмы и тяжестью этого заболевания [4]. На модели астмы было показано, что введение нейтрализующего антитела к IFN-γ подавляет гиперактивность дыхательных путей, что является оправданным ингибированием этого цитокина для лечения астмы [5].

В настоящее время глюкокортикоиды являются наиболее эффективным средством лечения астмы и доказали свою безопасность. Их эффективность была хорошо документирована в предотвращении заболеваемости и смертности, связанных с астмой, и в улучшении прогноза заболевания, включая уменьшение количества госпитализаций, предотвращение рецидивов и содействие выздоровлению, особенно у пациентов с тяжелой астмой и у детей [6]. Однако их длительное системное применение может вызвать множество нежелательных побочных эффектов, связанных с продуктами их катаболизма, иммуносупрессией [7].Фармацевтическая промышленность по-прежнему ставит перед собой амбициозную цель по производству стероидных аналогов, которые позволят избежать побочных эффектов и сохранят терапевтическую эффективность [8].

Таким образом, экспериментальные модели астмы на мышах были разработаны с использованием различных типов известных аллергенов [9, 10] и во многом способствовали изучению воспалительных механизмов астмы и тестированию новых лекарств, особенно тех, которые получены в результате эмпирического использования натуральных продуктов, таких как те, которые производятся пчелами, в попытке минимизировать дискомфорт, возникающий во время приступов астмы.

Прополис, производимый африканизированными пчелами, является мощным противовоспалительным агентом при остром и хроническом воспалении, что было подтверждено в экспериментах in vitro, и in vivo, , с этанольным и водным экстрактами прополиса или с соединениями, выделенными из прополиса [11– 14].

Было показано, что компоненты, полученные из прополиса, активируют макрофаги и что полифенолы могут быть ответственны за повышение способности макрофагов фагоцитировать, стимулировать лимфоциты и убивать микроорганизмы и опухоли [14–16].Важным фактом является то, что, несмотря на активацию макрофагов и индукцию высвобождения свободных радикалов, полифенолы широко известны как антиоксиданты [17, 18], которые улавливают избыточные свободные радикалы, генерируемые макрофагами и нейтрофилами [19].

Хотя многое уже известно о терапевтическом действии прополиса, вырабатываемого африканизированными пчелами, было мало исследований о терапевтических свойствах прополиса, вырабатываемых пчелами без укусов. Таким образом, в настоящей работе оценивалось действие прополиса, продуцируемого Scaptotrigona aff. postica, пчела без жала, о воспалении легких, вызванном экспериментальной астмой, индуцированной у мышей.

2. Материалы и методы

2.1. Получение водно-спиртового экстракта прополиса (PHE)

Прополис, производимый Scaptotrigona aff. postica был собран из внутренних частей улья, расположенного в муниципалитете Барра-ду-Корда (05 ° 30′20′′S, 45 ° 14′36′′W), штат Мараньян, Бразилия. Прополис in natura экстрагировали мацерацией в этаноле (70%) в течение 24 часов.Экстракционный раствор фильтровали и концентрировали до небольшого объема при 40 ° C в роторном испарителе при низком давлении, получая водно-спиртовой экстракт прополиса (PHE). Рассчитанный сухой вес дает 9 г продукта (4%) [16]. Содержание флавоноидов, фенольной кислоты и общего фенола в ПГЭ составило 0,55 ± 0,07%, 11,40 ± 0,73% и 11,95 ± 0,80% соответственно [20].

2.2. Животные

Взрослые самки мышей BALB / c в возрасте от двух до трех месяцев ( n = 5 на группу) были предоставлены Фондом для животных Федерального университета Мараньяна.Во время исследований животные содержались в помещении для животных лаборатории иммунофизиологии в контролируемых условиях окружающей среды. И воду, и пищу предлагали ad libitum до дня жертвоприношения. С животными обращались в соответствии с этическими нормами, установленными Бразильским колледжем экспериментов на животных, и настоящий проект был одобрен Комитетом по этике исследований на животных Государственного университета Мараньян (протокол № 010/2007).

2.3. Аллергическое воспаление легких, индуцированное овальбумином (OVA-)

Животных иммунизировали подкожно (sc.) 4 мкг г OVA, адсорбированных на 1,6 мг гидроксида алюминия (квасцы). Через семь дней та же процедура была повторена. Еще через семь дней животных слегка анестезировали 0,4 мл раствора ксилазин гидрохлорида (20 мг / кг) и заражали интраназальной инстилляцией (дюйм) 50 мкл л раствора OVA (10 мкл г OVA. / 50 мк л стерильного фосфатно-солевого буфера (PBS)).Через семь дней после первого заражения животным снова вводили тот же раствор [21]. Через 24 часа собирали кровь для получения сыворотки и животных умерщвляли, используя смертельную внутрибрюшинную терапию. инъекция 10% хлоралгидрата.

2.4. Лечение аллергического воспаления легких с помощью PHE

Лечение было начато сразу после второй иммунизации. Животным вводили перорально 100 μ L PHE в дозах 50 или 200 мг / кг / животное (P50 и P200, соответственно.) в течение 14 дней подряд. Животные в группе положительного контроля получали i.p. инъекции 100 мкл л дексаметазона (DEXA) в дозе 1 мг / кг / животное в течение 14 дней подряд. Группа отрицательного контроля (OVA) получала только физиологические растворы перорально. Чистый контроль не был ни сенсибилизирован, ни оспорен.

2.5. Сбор и подсчет клеток бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ)

Для каждого животного обнажали трахею и вводили 0,5 мл холодного PBS в бронхоальвеолярное пространство.После аспирации БАЛ вводили и аспирировали еще 0,5 мл PBS. Для определения общего числа клеток БАЛ 90 мкл л суспензии клеток фиксировали и окрашивали в 10 мкл л раствора, содержащего 0,05% кристаллического фиолетового, разбавленного 30% уксусной кислотой. Затем клетки подсчитывали в камере Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.6. Гистопатологическая оценка легких

После сбора БАЛ легкие перфузировали 10 мл PBS через канюлю, введенную в правый желудочек для удаления остаточной крови, и легкие взвешивали и фиксировали путем погружения в забуференный формалин (10%).Через 24 часа органы переносили в 70% спиртовой раствор до замачивания парафином. Ткани разрезали на 5 срезов размером мкм и размером мкм и окрашивали гематоксилином / эозином для гистопатологического исследования. Воспалительный процесс на гистологических срезах был качественно оценен и охарактеризован как отсутствующий, легкий, умеренный или тяжелый в зависимости от характеристик пораженного участка.

2.7. Сбор и подсчет клеток из перитонеального лаважа и лимфоидных органов

Чтобы проверить, могут ли эффекты PHE, наблюдаемые в легких, быть следствием системной иммуносупрессии, мы оценили лимфоидные органы, а также брюшную полость.Брюшную полость животного промывали 5 мл стерильного PBS. После иссечения брюшной стенки суспензии клеток получали путем аспирации с использованием шприца и иглы, переносили в полипропиленовые пробирки с коническим дном и выдерживали на ледяной бане (4 ° C) до подсчета клеток. После сбора перитонеального лаважа селезенку и брыжеечные лимфатические узлы собирали, взвешивали и измельчали. Бедренную кость перфузировали 1 мл PBS для получения клеток костного мозга.

Для подсчета общего числа клеток фиксировали 90 мкл л каждой клеточной суспензии и окрашивали 10 мк л 0.05% кристаллический фиолетовый в 30% уксусной кислоте. Клетки подсчитывали с помощью камеры Нойбауэра с помощью оптического микроскопа при 400-кратном увеличении.

2.8. Количественная оценка сывороточного гамма-интерферона (IFN-

γ )

Было показано, что IFN- γ участвует в патогенезе астмы и может быть обнаружен у пациентов с атопией [4]. Итак, мы количественно определили этот важнейший цитокин в сыворотке крови. Количественный анализ выполняли в 96-луночных микролитровальных планшетах с плоским дном (Costar), которые покрывали добавлением 100 мкл л первичных антител против IFN-γ и инкубировали в течение ночи при 4 ° C.После инкубации планшет переворачивали и трижды промывали PBS + Tween 20 (PBS + T20, 300 мкл л / лунку) и блокировали 200 мкл л / лунку 10% фетальной бычьей сывороткой (FBS) в PBS для один час при комнатной температуре. Лунки отсасывали и трижды промывали PBS + T20. Добавляли сыворотку животных (100 мкл л образца / лунку), и образцы инкубировали в течение двух часов при комнатной температуре. Лунки аспирировали и промывали пять раз PBS + T20 (300 мкл л / лунку), а затем добавляли 100 мкл л / лунку детектирующего антитела, конъюгированного с авидином / пероксидазой.Затем планшеты инкубировали в течение одного часа и семь раз промывали PBS + T20 и добавляли 100 мкл раствора тетраметилбензидинового субстрата (TMB), л / лунку. Планшеты инкубировали в течение 30 минут в темноте, а затем реакцию останавливали добавлением 50 мкл L 2 N H 2 SO 4 . Считывание оптической плотности проводили с использованием автоматического ридера иммуноферментного анализа (ELISA) при поглощении 450 нм (Dynatech).

2.9. Статистический анализ

Анализ результатов проводился с использованием статистической программы Graph-Pad, версия 5.0. Значительные различия между обработками определяли дисперсионным анализом (ANOVA) с последующим применением теста Тьюки-Крамера. Статистические значения были приняты, когда P ≤ 0,05. Данные были выражены как среднее ± стандартное отклонение.

3. Результаты

3.1. Влияние обработки PHE на количество клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает общее и дифференциальное количество ячеек в BAL. Наблюдалось значительное снижение общего количества клеток ЖБАЛ в обеих группах, получавших ПГЭ (P50 и P200), по сравнению с контрольной группой OVA.Это снижение было аналогично тому, которое наблюдалось в группе DEXA (50%). Не было различий между группами DEXA, P50 и P200 (). Дифференциальный подсчет BAL-клеток продемонстрировал, что в контрольной группе OVA наблюдался более высокий процент полиморфно-ядерных воспалительных клеток (). Этот результат был противоположным в группах P50 и P200, с преобладанием мононуклеарных клеток и даже большим процентным снижением полиморфноядерных клеток, чем это наблюдалось в группе DEXA.

Эффект от лечения Scaptotrigona aff. postica PHE от количества клеток, присутствующих в ЖБАЛ мышей, иммунизированных и зараженных OVA. Мышам в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Общий (а) и дифференциальный (б) подсчет клеток БАЛ выполняли через 24 часа после последнего заражения. * P <0,05 по сравнению с группой OVA.

3.2. Влияние обработки PHE на гистологию легких мышей, иммунизированных и зараженных OVA

показывает гистологические срезы легких мышей из разных групп на микрофотографиях, сделанных при 40-кратном увеличении. показывает срез чистого контрольного животного, не зараженного OVA, на котором можно наблюдать чистую паренхиму без инфильтрации. Напротив, анализ гистологических срезов легких мышей в группе OVA показывает интенсивную перибронховаскулярную инфильтрацию и десквамацию эпителия (2).Процедуры DEXA (), P50 () и P200 () восстанавливали нормальный паттерн архитектуры легких, предотвращая воспалительную инфильтрацию и десквамацию эпителия.

Гистопатологические срезы легких мышей BALB / c, окрашенные гематоксилином / эозином. Мышей иммунизировали в дни 0 и 7 подкожно. инъекции 4 мкг г OVA / 1,6 мг квасцов. На 14 и 21 дни мышей заражали инъекцией 10 мкг г OVA. Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. Было дано два увеличения (400 и 100x) для чистого контроля (a), группы, иммунизированной OVA (b), обработанной DEXA (c) и обработанной PHE, в дозе 50 мг / кг (d) или 200 мг / кг ( д).Стрелками обозначены участки воспаления.

3.3. Влияние обработки PHE на циркулирующий IFN-

γ у мышей, иммунизированных и зараженных OVA

. Учитывая роль IFN-g в патогенезе астмы, мы измеряем этот цитокин в сыворотке. показывает, что у мышей, получавших PHE, наблюдалось значительное дозозависимое снижение сывороточного IFN-γ , которое было более интенсивным, чем наблюдаемое в группе DEXA.

Влияние обработки PHE S. aff postica на циркулирующий сывороточный IFN-γ мышей, иммунизированных и зараженных OVA.Мышей в группах Р50 и Р200 перорально вводили ПГЭ (50 или 200 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа DEXA лечилась внутрибрюшинно. с DEXA (1 мг / кг / животное) в течение 14 дней подряд. Группа OVA получала только физиологический раствор орально. Эксперименты проводили через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

3.4. Влияние обработки PHE на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA

Обработка PHE не вызвала изменений количества клеток в костном мозге (), лимфатическом узле (), селезенке () , или брюшина ().По сравнению с контролем OVA, обработка DEXA значительно уменьшала количество клеток в лимфатическом узле, селезенке и брюшине, но не в костном мозге.

Эффект обработки PHE S. aff postica на приток клеток в брюшную полость и лимфоидные органы мышей, иммунизированных и зараженных OVA, соответствует костному мозгу (a), лимфатическому узлу (b) и клеткам селезенки (c ), соответственно. Клетки брюшной полости собирали и подсчитывали для оценки миграции клеток (d).Эксперименты проводились через 24 часа после последнего заражения. * P ≤ 0,05 по сравнению с группой OVA.

4. Обсуждение

Настоящее исследование показывает, что лечение ПГЭ, вводимое перорально, значительно уменьшало аллергическое воспаление легких на мышиной модели астмы. Оба лечения с помощью ПГЭ (50 и 200 мг / кг) изменили структуру воспалительных клеток в легких и уменьшили приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхиму, изменив структуру воспалительных клеток в легких и уменьшив приток полиморфно-ядерных воспалительных клеток в паренхима.Аналогичным образом было показано, что у мышей, получавших прополис, наблюдалось снижение количества воспалительных клеток в перитонеальных бронхоальвеолярных областях по сравнению с группой, не получавшей лечения [22]. Этот результат также согласуется с предыдущим исследованием, которое показало, что добавление прополиса к пище больных астмой в качестве дополнительной терапии при лечении этого заболевания дало определенные преимущества за счет снижения частоты кризов и необходимости в спасательных препаратах. , возможно, улучшая иммунный ответ пациентов [23].

Кроме того, лечение ПГЭ значительно снижает концентрацию IFN- γ , которая считается решающей в патогенезе астмы [4, 5]. Этот результат согласуется с некоторыми исследованиями, которые продемонстрировали, что введение прополиса мышам в течение короткого времени влияет как на базальную, так и на стимулированную продукцию IFN-γ и баланс Th2 / Th3 [24–26], что может быть связано с его противовоспалительные свойства. Таким образом, это снижение IFN-γ, наблюдаемое в группах, получавших PHE, могло вызвать улучшение легочного воспалительного состояния.Эта гипотеза подтверждается исследованиями, которые показали, что прополис и его продукты вызывают ингибирование синтеза простагландинов, лейкотриенов и гистаминов, высвобождаемых клетками легких свиней in vitro [23] и во время индуцированного острого воспаления брюшины in vivo [27]. .

Помимо ингибирующего действия прополиса на IFN-γ и на рекрутинг воспалительных клеток, другим объяснением действия прополиса в модели, использованной здесь, является его антиоксидантный эффект.Воспалительный процесс астмы может быть связан с большим выбросом свободных радикалов, поскольку множество воспалительных клеток, включая эозинофилы, нейтрофилы и макрофаги, способны генерировать активные формы кислорода в очагах воспаления. Следовательно, лечение астмы антиоксидантами было успешной терапевтической стратегией. Ли и др. [28], например, продемонстрировали, что окислительный стресс является решающей детерминантой астмы и что лечение антиоксидантами может быть полезной терапевтической стратегией.Недавние исследования показали, что этанольный экстракт прополиса способен влиять на уровни активных форм кислорода [29]. Прополис также уменьшал индуцированное свободными радикалами перекисное окисление липидов, а также увеличивал активность супероксиддисмутазы [30]. Считается, что компоненты прополиса, нейтрализующие свободные радикалы и супероксид, ответственны за основные регенеративные и противовоспалительные эффекты этого вещества [31].

Образцы прополиса, использованные в настоящем исследовании, показали в основном фенольную кислоту и общий фенол, как сообщалось ранее [20].Эти вещества, которые были обнаружены в других образцах прополиса, были определены как основные соединения с противовоспалительной активностью [32], а также могут быть связаны с полезным применением прополиса при аллергии и астме [33]. Следовательно, поскольку состав прополиса может варьироваться в зависимости от района, считается, что противоаллергическая и противовоспалительная активность прополиса может зависеть от сложного взаимодействия между различными природными фенольными соединениями, а не от одного соединения [34].

Важно подчеркнуть, что подавление воспаления легких было аналогично тому, которое наблюдалось при лечении дексаметазоном, мощным ингибитором воспаления дыхательных путей [6]. Однако иммуносупрессивный эффект дексаметазона не наблюдался у животных, получавших прополис, поскольку количество клеток в лимфатическом узле, костном мозге, селезенке и брюшной полости не было затронуто в обеих группах, получавших прополис. Таким образом, прополис кажется более безопасным лечением по сравнению с дексаметазоном.

Наконец, настоящее исследование показывает, что прополис оказывает ингибирующее действие на воспаление дыхательных путей на модели мышиной астмы, что оправдывает его использование в качестве альтернативного / дополнительного и недорогого лечения практически без побочных эффектов. Поэтому есть надежда, что настоящая работа поможет стимулировать и обогатить дискуссии и исследования по Scaptotrigona aff. postica прополис, а также приведет к его валидации и биологическому применению, а также будет способствовать сохранению местных видов, которые в последние годы продемонстрировали возросшую научную и экономическую ценность.

5. Заключение

Пероральное лечение прополисом производства Scaptotrigona aff. postica уменьшает патологию, связанную с мышиной астмой, подавляя как приток воспалительных клеток в альвеолярное пространство, так и системное прогрессирование аллергического воспаления.

Благодарности

Авторы благодарят бразильские финансовые агентства FAPEMA, CNPq, CAPES и FINEP за финансовую поддержку.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в отношении публикации данной статьи.

Вклад авторов

Хосе Хидельбланд Кавальканте де Фариас и Арамис Сильва Рейс выполнили экспериментальную работу и внесли равный вклад в работу. В интерпретации и подготовке статьи участвовали Марсио Антонио Родригес Араужу, Мария Хосе Абигайль Мендес Араужу, Джардел Кавальканте де Фариас, Эдер Магальяйнс Сильва Фиалью, Анн Карине Мартинс Ассунсао, Грасиомар да Консейсау Коста и Люсилен Аморим Силва. Розан Нассар Мейрелеш Герра, Мария Нильсе Соуза Рибейру и Флавия Ракель Фернандес ду Насименту разработали эксперименты и внесли свой вклад в интерпретацию и подготовку статьи.

Ссылки

1. Bateman ED, Hurd SS, Barnes PJ, et al. Глобальная стратегия лечения и профилактики астмы: краткое изложение GINA. Европейский респираторный журнал . 2008. 31 (1): 143–178. [PubMed] [Google Scholar] 2. Стирбулов Р., Бернд ЛАГ, Соле Д. IV Бразильские рекомендации по лечению астмы (Diretrizes Brasileiras para o Manejo da Asma) Revista Brasileira de Alergia e Imunopatologia . 2006. 29 (5): 222–245. [Google Scholar] 3. Бохнер Б.С., Буссе WW. Аллергия и астма. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 2005. 115 (5): 953–959. [PubMed] [Google Scholar] 4. Ten Hacken NH, Oosterhoff Y, Kauffman HF и др. Повышенный уровень интерферона- γ в сыворотке крови при атопической астме коррелирует с повышенной реактивностью дыхательных путей и вариациями пикового циркадного потока выдоха. Европейский респираторный журнал . 1998. 11 (2): 312–316. [PubMed] [Google Scholar] 5. Cohn L, Homer RJ, Niu N, Bottomly K. Т-хелперные клетки 1 и интерферон γ регулируют аллергическое воспаление дыхательных путей и выработку слизи. Журнал экспериментальной медицины . 1999. 190 (9): 1309–1318. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 6. Швиберт Л.М., Бек Л.А., Стеллато С., Бикель КА, Бохнер Б.С., Шлеймер Р.П. Подавление выработки цитокинов глюкокортикостероидами: отношение к противоаллергическому действию. Журнал аллергии и клинической иммунологии . 1996. 97 (1-2): 143–152. [PubMed] [Google Scholar] 7. Baschant U, Tuckermann J. Роль рецептора глюкокортикоидов в воспалении и иммунитете. Журнал биохимии стероидов и молекулярной биологии .2010; 120 (2-3): 69–75. [PubMed] [Google Scholar] 8. Kleiman A, Tuckermann JP. Действие глюкокортикоидных рецепторов при благоприятных и побочных эффектах стероидной терапии: уроки на мышах с условным нокаутом. Молекулярная и клеточная эндокринология . 2007. 275 (1-2): 98–108. [PubMed] [Google Scholar] 9. де Сикейра А.Л., Руссо М., Стейл А.А., Фачинконе С., Мариано М., Янкар С. Новая мышиная модель легочной эозинофильной гиперчувствительности: вклад в экспериментальную астму. Журнал аллергии и клинической иммунологии .1997. 100 (3): 383–388. [PubMed] [Google Scholar] 10. Байс Д.Е., Сигрейв Дж., Грин Ф.Х. Модели астмы на животных: потенциальная полезность для изучения воздействия на здоровье вдыхаемых частиц. Ингаляционная токсикология . 2000. 12 (9): 829–862. [PubMed] [Google Scholar] 11. Добровольски Ю.В., Вохора С.Б., Шарма К., Шах С.А., Накви САХ, Дандия ПК. Противовоспалительные, антибактериальные, противогрибковые, антиамебные и жаропонижающие исследования продуктов пчеловодства на основе прополиса. Журнал этнофармакологии . 1991. 35 (1): 77–82.[PubMed] [Google Scholar] 12. Буэно-Силва Б., Аленкар С.М., Ку Х. и др. Противовоспалительная и антимикробная оценка неовестита и вестита, выделенных из бразильского красного прополиса. Журнал сельского хозяйства и пищевой химии . 2013. 61 (19): 4546–4550. [PubMed] [Google Scholar] 13. Паулино Н., Абреу С.Р., Уто Й. и др. Противовоспалительное действие биодоступного соединения артепиллина С в бразильском прополисе. Европейский журнал фармакологии . 2008. 587 (1–3): 296–301. [PubMed] [Google Scholar] 14.Араухо МАР, Либерио С.А., Герра РНМ, Рибейро Миннесота, Насименто ФРБ. Механизмы действия, лежащие в основе противовоспалительного и иммуномодулирующего действия прополиса: краткий обзор. Revista Brasileira de Farmacognosia . 2012. 22 (1): 208–219. [Google Scholar] 15. Димов В., Ивановская Н., Манолова Н., Банкова В., Николов Н., Попов С. Иммуномодулирующее действие прополиса. Влияние на противоинфекционную защиту и функцию макрофагов. Апидология . 1991. 22 (2): 155–162. [Google Scholar] 16.Араужо МДЖАМ, Дутра Р.П., Коста ГК и др. Эффект от лечения препаратом Scaptotrigona aff. postica прополис о развитии опухолей Эрлиха у мышей (Efeito do tratamento com própolis de Scaptotrigona aff. postica sobre o desenvolvimento do tumour de Ehrlich em camundongos) 2010. 20 (4): 580–587. [Google Scholar] 17. Оршолич Н., Башич И. Водорастворимое производное прополиса и его полифенольные соединения усиливают опухолевую активность макрофагов. Журнал этнофармакологии . 2005. 102 (1): 37–45. [PubMed] [Google Scholar] 18. Urquiaga I, Leighton F. Растительные полифенольные антиоксиданты и окислительный стресс. Биологические исследования . 2000. 33 (2): 55–64. [PubMed] [Google Scholar] 19. Маркеле Ф.Д., ди Мамбро В.М., Джорджетти С.Р., Касагранде Р., Валим YML, Фонсека MJV. Оценка антиоксидантной активности бразильских экстрактов прополиса отдельно и в фармацевтических препаратах для местного применения. Журнал фармацевтического и биомедицинского анализа .2005. 39 (3-4): 455–462. [PubMed] [Google Scholar] 20. Араужо МДЖАМ, Маттар Н.С., Рейс А.С. и др. Фармакогностическая и острая токсикологическая оценка Scaptotrigona aff. postica экстракт прополиса в доклинических исследованиях. Исследование природных продуктов . 2011. 25 (11): 1037–1046. [PubMed] [Google Scholar] 21. Руссо М., Нахори М.А., Лефорт Дж. И др. Подавление астматических реакций у разных линий мышей пероральной толерантностью. Американский журнал респираторной клетки и молекулярной биологии .2001. 24 (5): 518–526. [PubMed] [Google Scholar] 22. Sy LB, Wu Y-L, Chiang B-L, Wang Y-H, Wu W-M. Экстракты прополиса проявляют иммунорегуляторную активность на модели животных с воспалением дыхательных путей, сенсибилизированных OVA. Международная иммунофармакология . 2006. 6 (7): 1053–1060. [PubMed] [Google Scholar] 23. Хайял М.Т., Эль-Газали М.А., Эль-Хатиб А.С. Механизмы противовоспалительного действия экстракта прополиса. Лекарственные препараты, находящиеся в стадии экспериментальных и клинических исследований . 1993. 19 (5): 197–203. [PubMed] [Google Scholar] 24.Pagliarone AC, Orsatti CL, Búfalo MC и др. Влияние прополиса на выработку провоспалительных цитокинов и экспрессию Toll-подобных рецепторов 2 и 4 у стрессированных мышей. Международная иммунофармакология . 2009. 9 (11): 1352–1356. [PubMed] [Google Scholar] 25. Orsatti CL, Missima F, Pagliarone AC, Sforcin JM. Экспрессия и продукция цитокинов Th2 / Th3 у мышей, получавших прополис. Журнал этнофармакологии . 2010. 129 (3): 314–318. [PubMed] [Google Scholar] 26. Missima F, Pagliarone AC, Orsatti CL, Araújo JP, Jr., Sforcin JM. Влияние прополиса на экспрессию и продукцию цитокинов Th2 / Th3 у мышей с меланомой, подвергшихся стрессу. Фитотерапевтические исследования . 2010. 24 (10): 1501–1507. [PubMed] [Google Scholar] 27. Мирзоева О.К., Колдер П.С. Влияние прополиса и его компонентов на выработку эйкозаноидов во время воспалительной реакции. Простагландины, лейкотриены и незаменимые жирные кислоты . 1996. 55 (6): 441–449. [PubMed] [Google Scholar] 28. Ли Ю.К., Ли К.С., Пак С.Дж. и др. Блокада гиперчувствительности дыхательных путей и воспаления на морской модели астмы пролекарством цистеина, L-2-оксотиазолидин-4-карбоновой кислоты. Журнал FASEB . 2004; 18 (15): 1917–1919. [PubMed] [Google Scholar] 29. Xuan H, Zhu R, Li Y, Hu F. Ингибирующий эффект китайского прополиса на фосфатидилхолин-специфическую активность фосфолипазы C в эндотелиальных клетках сосудов. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2011; 2011: 8 страниц. 985278 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 30. Ясприка I, Морнар А., Дебеляк З. и др. In vivo исследование влияния добавок прополиса на антиоксидантный статус и эритроциты. Журнал этнофармакологии . 2007. 110 (3): 548–554. [PubMed] [Google Scholar] 31. Крол В., Шеллер С., Чуба З. и др. Ингибирование хемилюминесценции нейтрофилов этанольным экстрактом прополиса (EEP) и его фенольными компонентами. Журнал этнофармакологии . 1996. 55 (1): 19–25. [PubMed] [Google Scholar] 32. Банкова В.Б. Последние тенденции и важные достижения в исследованиях прополиса. Доказательная дополнительная и альтернативная медицина . 2005. 2 (1): 29–32. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 33.Медик-Сарич М., Растия В., Бойич М., Мужчины З. От функциональной пищи к лекарственному средству: систематический подход к анализу полифенолов из прополиса и вина. Журнал питания . 2009; 8 (1, статья 33) [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 34. Chirumbolo S. Прополис как противовоспалительное и противоаллергическое соединение: какова роль флавоноидов? Международная иммунофармакология . 2011; 11 (9): 1386–1387. [PubMed] [Google Scholar].
Настойка прополиса для небулайзера: Ингаляции с прополисом в небулайзере для ребенка и взрослого

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *