Содержание

Симптом папоротника

Симптом папоротника — название феномена кристаллизации слизи шейки матки.

Если на 7-8 дня менструального цикла поместить цервикальную слизь под микроскоп, можно увидеть картину, напоминающую листья папоротника. Максимальной эффект наблюдается в момент овуляции. Этот рисунок представляет собой кристаллизацию хлорида натрия (соли) на волокнах слизи.

Этот эффект проявляется при высоких уровнях женских половых гормонов — эстрогенов, что наблюдается перед и во время овуляции. При снижении влияния эстрогенов во второй половине цикла симптом уменьшается, окончательно исчезая в пременструальный период.

Симптом папоротника является косвенным признаком овуляции и фертильности.

a – отдельные элементы в раннюю фолликулярную фазу;
b – выраженный симптом в среднюю фолликулярную фазу;

c – густой рисунок папоротника в период овуляции;
d – отрицательный симптом папоротника.

Другие статьи раздела

  • Распространенный возбудитель инфекций дыхательных путей (фарингиты, синуситы, отиты, бронхиты и пневмонии). Анализы на антитела используются для диагностики инфекции Chlamydophila pneumoniae при длительных инфекциях дыхательных путей.

  • Mycoplasma pneumoniae — возбудитель пневмонии человека, острых респираторных заболеваний (ОРЗ), заболеваний верхних дыхательных путей (фарингита, бронхита), а также некоторых нереспираторных заболеваний. 

  • Азооспермия (azoospermia) — отсутствие сперматозоидов в эякуляте

  • Бактерии – одноклеточные микроорганизмы, некоторые из которых могут вызывать заболевания.

  • Mycoplasma pneumoniae (микоплазма пневмонии), Chlamydohpila pneumoniae (хламидофила пневмонии, прежнее название Chlamydia pneumoniae)

  • Гемоглобин (от др. -греч. Гемо — кровь и лат. globus — шар) – это сложная белковая молекула внутри красных клеток крови – эритроцитов (у человека и позвоночных животных). Гемоглобин составляет примерно 98% массы всех белков эритроцита.
  • Гипофиз – непарная железа внутренней секреции, расположенная на основании головного мозга в костном кармане – гипофизарной ямке турецкого седла. Гипофиз вырабатывает гормоны, оказывающие влияние на работу всего организма – рост и развитие, обмен веществ, половую функцию.

  • Повышенный рост волос (гирсутизм) может быть следствием не только повышенного уровня андрогенов (см. «

    гиперандрогения»), но и высокой активности 5-альфа-редуказы в коже (фермента волосяных фолликулов, превращающего тестостерон в гораздо более активный дигидротестостерон.

  • По данным ВОЗ (Всемирная организация здравоохранения) заболеваемость в России составляет более 50 человек на 100 000 населения. Имеет важное значение то, что у женщин значительно чаще чем у мужчин (50-90% против 10%) возможно бессимптомное течение заболевания.

  • Делеция (ген.) – вид хромосомных мутаций, при котором происходит потеря какого-либо участка хромосомы.

Симптом папоротника — Справочник по медицине PRO7

Периоды Образование слизи Натяжение Симптом папоротника Цервикальный канал… [Стр.20]

Фото 1. Симптом кристаллизации слизи канала шейки матки ( лист папоротника )… [Стр.362]

Феномен арборцизации (симптом папоротника) заключается в том, что шеечная слизь, нанесенная на предметное стекло и высушенная на воздухе, образует кристаллы в виде листа папоротника. -… [Стр.213]

СИМПТОМ ПАПОРОТНИКА (феномен арборизации шеечной слизи)… [Стр.185]

Симптом кристаллизации шеечной слизи (симптом «папоротника»). [Стр.46]

Данный феномен максимально выражен в период овуляции за счет высокой концентрации солей натрия, выпадающих в кристаллы (симптом кристаллизации), внешне напоминающие поверхность в виде дерева или папоротника (рис. 12). [Стр.34]

Симптом папоротника (кристаллизация натрия хлорида в амниотической жидкости) обычно подтверждает разрыв оболочек. Если разрыв оболочек еще не подтвержден, то выполняется ультрасо-… [Стр.2813]

Симптом листа папоротника Отсутствует Мелкие кристаллы в виде тонких стеблей Четкий рисунок листа Грубые кристаллы, лист крупный, с толстым стеблем… [Стр.185]

Симптом листа папоротника — (англ.) — см. раздел 5.3.2… [Стр.947]

Показатели Симптом папоротника Симптом зрачка Натяжение слизи Количество слизи ШИ, баллы… [Стр.47]

Диагностика функциональные пробы (двухфазная базальная температура, положительный симптом зрачка и папоротника , уровень гормонов в крови в норме), гормональные пробы с прогестероном отрицательные. [Стр.173]


Смотреть другие источники с термином Симптом папоротника: [Стр.245]    [Стр.224]    [Стр.41]    [Стр.126]    [Стр. 2685]    [Стр.2695]    [Стр.85]    [Стр.40]    [Стр.40]    [Стр.389]    [Стр.185]    [Стр.111]    [Стр.46]    [Стр.47]    [Стр.245]    [Стр.224]    [Стр.41]    [Стр.126]    [Стр.2685]    [Стр.2695]    [Стр.85]    [Стр.40]    [Стр.40]    [Стр.389]    [Стр.185]    [Стр.111]    [Стр.46]    [Стр.47]    [Стр.251]    [Стр.346]    [Стр.346]    [Стр.524]    [Стр.157]    [Стр.300]    [Стр.105]    [Стр.173]    [Стр.40]    [Стр.402]    [Стр.199]    [Стр.198]    [Стр.150]    [Стр.184]    [Стр.180]    [Стр.
182]    [Стр.182]    [Стр.185]    [Стр.220]    [Стр.275]   

2.3. Лабораторные диагностические исследования / КонсультантПлюс

2.3. Лабораторные диагностические исследования

При ПРПО рекомендовано исследование уровня лейкоцитов в крови и исследование уровня C-реактивного белка в сыворотке крови для своевременной диагностики септических осложнений [41], [42].

Уровень убедительности рекомендаций B (уровень достоверности доказательств — 2).

Комментарии: Число лейкоцитов возрастает через 24 часа после введения кортикостероидов (КС) и постепенно возвращается к исходному уровню через 3 дня после профилактики респираторного дистресс-синдрома (РДС) плода. Наиболее точным маркером является C-реактивный белок, его чувствительность составляет 68,7%, специфичность — 77,1% [42].

— При угрожающих, начавшихся ПР и при ПРПО рекомендовано определение антигена стрептококка группы B (СГB) (S. agalactiae) в отделяемом цервикального канала или микробиологическое (культуральное) исследование отделяемого женских половых органов на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы (оптимально — в вагино-ректальном посеве) для своевременной диагностики и профилактики септических осложнений [43]. <2>

———————————

<2> Care of Women Presenting with Suspected Preterm Prelabour Rupture of Membranes from 24+0 Weeks of Gestation: Green-top Guideline No. 73, 2019

Уровень убедительности рекомендаций B (уровень достоверности доказательств — 2).

Комментарий: Связь между колонизацией СГB во время беременности и ПР не доказана, однако имеет место повышенный риск неонатального сепсиса, что делает данное исследование клинически целесообразным [44].

— Для уточнения диагноза ПР в 240 — 336 недель беременности рекомендовано (при возможности) определение фосфорилированной формы протеин-1 связанного инсулиноподобного фактора роста (ПСИФР-1) или плацентарного альфа-микроглобулина-1 (ПАМГ-1) в цервикальной слизи [45 — 47].

Уровень убедительности рекомендаций A (уровень достоверности доказательств — 2).

Комментарии: ПСИФР-1 продуцируется плацентарными децидуальными клетками и определяется в цервикальной слизи в результате повреждения хориодецидуальной зоны [45]. Отрицательный результат указывает на низкий риск ПР в течение 7 дней после проведения теста (PPV = 94%) [48]. Чувствительность теста на ПАМГ-1 у пациенток с угрожающими ПР и интактным плодным пузырем составляет 84%, специфичность — 95%, PNV — 93 — 97%. Чувствительность и NPV в отношении ПР через 7 дней у пациенток с длиной шейки матки 15 — 30 мм составляют 100%. Для прогноза ПР менее 34 недели PNV составляет 93% <3> [46].

———————————

<3> Preterm Labor and Birth Management: Recommendations from the European Association of Perinatal Medicine, 2017.

— При ПРПО рекомендован осмотр шейки матки в зеркалах для идентификации подтекания околоплодных вод 46 <4>, [38].

———————————

<4> ACOG, Practice Bulletin No. 172: Premature Rupture of Membranes, 2016.

Уровень убедительности рекомендаций C (уровень достоверности доказательств — 5).

Комментарий: К лабораторным экспресс-тестам относится «цитологический тест» (симптом «папоротника», частота ложноотрицательных результатов более 20%), нитразиновый тест (частота ложноположительных результатов 5 — 30%) и тест на ПСИФР-1 и ПАМГ-1 [45 — 50] (Таблица 2).

Открыть полный текст документа

роль методов определения овуляторного периода

Авторы: В.Н. Пидвальнюк, к.м.н., кафедра акушерства и гинекологии Одесского государственного медицинского университета

В структуре бесплодного брака эндокринное женское бесплодие, вызванное нарушением созревания и овуляцией ооцитов, занимает около 30-40% и характеризуется полиморфностью клинических и лабораторных проявлений [16,17,18]. Знание дня овуляции чрезвычайно важно, так как овулировавшая яйцеклетка может быть успешно оплодотворена лишь в течение 20-24 часов после выхода из яичника. Определение момента овуляции не может рассматриваться как достаточно достоверное, так как овуляция может происходить на 8-9-й день при 21-дневном цикле, при 35-дневном – на 21-23-й день. 
При этом не исключена возможность сдвига овуляции на 2-3, иногда и более суток, спровоцированной внешними факторами.

Момент овуляции чрезвычайно важен для определения дня зачатия (или наоборот – для предохранения от нежелательной беременности) не только в естественных условиях, но и при применении искусственных методов преодоления бесплодия – экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) и искусственной инсеминации (ИИ). Вместе с тем, определение момента овуляции у женщин имеет определенные трудности в виду отсутствия достоверных клинических симптомов и доступных методов прогнозирования и диагностики овуляторного периода.
Для млекопитающих в момент овуляции характерно особое поведение, направленное на привлечение самца. Такое состояние самки во время овуляции называется эструсом, а поведение – эструсным. Единственный вид млекопитающих, которому не свойственно эструсное поведение, – человек. В связи с этим, половое поведение женщины в предовуляторный и овуляторный периоды не имеет поведенческих особенностей, хотя иногда сопровождается определенными реакциями, недостаточно явными и однозначными, что приводит к ошибкам в определении овуляторного периода. 
Необходимость знания момента овуляции обусловлена тем, что для успешного оплодотворения при использовании ЭКО ооциты необходимо извлечь из граафова пузырька не позднее чем за несколько часов до овуляции, что, в виду отсутствия точных критериев зрелости ооцитов, составляет определенные трудности [2,3,15]. По этой причине эффективность такой технологии остается недостаточно высокой. Так, при анализе литературных данных, по разным источникам, частота наступления беременности при ЭКО варьирует от 12 до 27% [15,16,23].  

Методы определения овуляторного периода
Для определения овуляторного периода используют различные методы, каждый из которых имеет определенные недостатки. Известные способы прогнозирования овуляции и определения зрелости фолликула с целью его пункции и получения ооцитов при проведении ЭКО основываются на том, что для прогнозирования зрелости ооцитов проводят ультразвуковое исследование, тесты функциональной диагностики и определяют уровень гормонов в моче и сыворотке крови [2,3,7,9,10,21]. 
Недостатком этих методов является необходимость проведения трудоемких, дорогостоящих процедур с использованием сложной аппаратуры в специальной лаборатории. Кроме того, при данной методике сохраняется большой риск потери или получения незрелых ооцитов во время пункции в связи с невозможностью точно рассчитать время полного созревания фолликула, а привязанность лаборатории к моменту ожидаемой овуляции приводит к низкой частоте наступления беременности [1,11,27].
Одним из традиционных методов, применяемых в домашних условиях и клинической практике для определения овуляции, является измерение базальной (ректальной) температуры тела [10]. Данный метод прост, но требует кропотливого и точного соблюдения регулярности и порядка измерений. Существенный недостаток данной методики, не позволяющий использовать его при ЭКО, заключается в том, что он позволяет определять завершившуюся овуляцию, но не обладает прогностическими возможностями. 
Метод биохимического мониторинга уровня гормонов в сыворотке крови достаточно эффективен, но при этом необходимо задействовать соответствующую лабораторию, и не все пациентки соглашаются на проведение повторных, динамических исследований. 
При ультразвуковом исследовании определение размера фолликула не является достоверно точным диагностическим признаком его зрелости, так как зрелым может считаться фолликул достигший размеров от 23 до 32 мм [22]. Степень же зрелости определяется гормональными изменениями, происходящими в самом фолликуле. Непосредственно перед овуляцией преовуляторный фолликул содержит высокие уровни фолликулостимулирующего и лютеинизирующего гормонов, прогестерона и простагландинов, а также пониженный уровень эстрадиола, которые и играют основную роль в разрыве фолликула и выходе ооцитов за его пределы.  
Известен еще один метод, который давно используется для определения овуляции, – исследование цервикальной слизи. При этом используется свойство цервикальной слизи при высушивании изменять структуру (кристаллизоваться). Основой кристаллизации являются хлориды щелочных металлов, которые при высыхании образуют мелкие единичные кристаллы в виде листьев папоротника в зависимости от количества эстрогенов и прогестерона в организме женщины. За некоторое время перед овуляцией картина меняется: кристаллы при высыхании начинают формировать сначала тонкие комплексы, а затем четко определяемые структуры – «листья папоротника». Под действием эстрогенов консистенция слизи меняется, что позволяет прогнозировать наступление овуляции. Однако процедура получения цервикальной слизи не слишком приятна, требует участия медицинского работника. Морфологический же анализ структуры слизи с целью определения шеечного индекса имеет довольно большие погрешности за счет искажения симптома «папоротника», вызванного нарушением влагалищного микробиоценоза при воспалительных изменениях стенок влагалища [20].
В последние полтора десятилетия появился еще один метод, очень простой и потому весьма перспективный, основанный на исследовании еще одной биологической жидкости – слюны. В слюне находятся те же стероидные гормоны, что и в цервикальной слизи, неорганические соединения кальция, калия и хлора. 
К сожалению, биохимическое определение стероидных гормонов требует определенного времени. Более простой и быстрый метод учитывает способность слюны изменять структуру, кристаллизоваться в зависимости от уровня эстрогенов и прогестерона в организме пациентки в разные периоды менструального цикла. Большую часть времени цикла минеральные соли при высыхании образуют единичные кристаллы. За некоторое время перед овуляцией картина меняется: кристаллы при высыхании начинают формировать более крупные кристаллы, определяемые перед овуляцией структуры в виде листьев папоротника. С уменьшением эстрогенов после овуляции симптом «папоротника» критически падает и через сутки перестает существовать. Чем больше эстрогенных гормонов в организме, тем больше выраженность феномена кристаллизации, достигающего пика за несколько часов до предстоящей овуляции. 
Учитывая такую четкую корреляцию морфологической картины кристаллизации слюны и концентрации гормонов в крови, нами предложено использование данного феномена при проведении ЭКО для повышения прогнозирования зрелости ооцитов [21]. 
В последнее время феномен кристаллизации стал одним из наиболее перспективных и простых способов определения момента овуляции в домашних условиях. Связано это с тем, что разработаны и выпущены на потребительский рынок мини-микроскопы. Они позволяют любой женщине, без особых знаний, навыков и затрат времени, используя подробную инструкцию, провести все необходимые манипуляции и оценить полученный результат самостоятельно.
Анализ безопасен, неинвазивен, прост в применении. На украинском рынке представлен мини-микроскоп «Арбор», он разработан и изготовлен научно-производственным центром «Виатех» при медицинском сопровождении кафедры акушерства и гинекологии №2 Киевской академии последипломного образования им. П.Л. Шупика. 
В России используют подобный мини-микроскоп Maybe Baby, который производит компания Optix (Белград, Югославия). Преимущество украинской разработки не только в простоте конструкции, но и в наличии 32 предметных стекол, длительно хранящих информацию, что позволяет расширить возможности метода и увеличить достоверность проводимых исследований. 
Не меньшее значение имеет время овуляции при применении другой репродуктивной технологии – искусственной инсеминации – инструментальном введении мужских половых клеток в половые пути женщины. Эту процедуру необходимо проводить в период, когда яйцеклетка жизнеспособна и может быть реально оплодотворена. Эта методика приобретает большое значение, когда причиной бесплодия является мужской фактор, вызванный снижением жизнеспособности сперматозоидов, а также в случае идиопатического бесплодия [4,14,18,25]. При снижении продолжительности жизни сперматозоидов плодный период, составляющий в норме от 3 до 5 суток, может снижаться до нескольких часов.
Низкая частота наступления беременности при интрацервикальной инсеминации обусловлена отсутствием точных критериев определения овуляторного периода. Овариальная контролируемая стимуляция имеет статистическое достоверное преимущество в плане наступления беременности [3,14]. 
Овариальную стимуляцию на первых порах проводили преимущественно с помощью антиэстрогена кломифенцитрата. В последующем более широко использовали гонадотропин или в комбинации с препаратами ФСГ.
При анализе частоты наступления беременности в программах внутриматочной инсеминации спермой мужа выяснено, что она колеблется от 2,2 до 7,2% при использовании кломифенцитрата, 11,5-12,8% – применении гонадотропинов и 11,3-13% – при комбинированной схеме [1,3,14,23].
Кроме низкой частоты наступления беременности, к недостаткам этих методик, вызывающих серьезные осложнения в циклах вспомогательных репродуктивных технологий, относится гиперстимуляция яичников, возникающая в результате неконтролируемого ответа яичников на введение гонадотропинов [18]. Клиническая картина этого осложнения характеризуется высокой концентрацией стероидных гормонов в плазме крови и формированием фолликулярных и лютеиновых кист. 
Одной из методик, позволяющих прогнозировать быстрый рост стероидных гормонов, прогнозировать гиперстимуляцию яичников и тем самым избежать формирования объемных образований яичников путем коррекции назначенных ФСГ и кломифенцитрата, является предложенная методика ежедневного динамического мониторинга показателей слюны с учетом выраженности симптома «папоротника» с помощью мини-микроскопа «Арбор». При этом насыщенность феномена кристаллизации выражается в условных обозначениях (–, +, ++, +++). Чем больше стероидных гормонов в организме, тем больше выраженность феномена кристаллизации. В случае повышенного роста стероидных гормонов наблюдается более быстрое нарастание феномена кристаллизации, которое и позволяет прогнозировать гиперстимуляцию яичников. 
Несмотря на имеющиеся недостатки, внедрение в клиническую практику новых вспомогательных репродуктивных технологий существенно расширило возможность получения потомства при ранее неизлечимых формах бесплодия. Однако остается группа женщин, которые по экономическим соображениям отказываются от проведения вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). 
Учитывая неопределенность в отношении места ВРТ среди методов преодоления бесплодия, нами проведен анализ собственного использования прибора «Арбор» и феномена кристаллизации для преодоления умеренного мужского фактора бесплодия, идиопатического и сочетанного бесплодия в естественных физиологических условиях, без применения вспомогательных репродуктивных технологий. 

Материалы и методы исследования
В исследование были включены 29 пациенток в возрасте до 34 лет. Длительность бесплодия составила 7,5 ± 1,3 года. Анализ проведенных исследований показал, что среди причин бесплодия мужской фактор присутствовал в 9 (31%) случаях, сочетанное бесплодие – в 16 (55,2%) и в 4 (13,8%) случаях причину бесплодия выявить не удалось (идиопатическое бесплодие). 
Обследование женщин включало: сбор анамнестических данных, определение уровня фолликулостимулирующего, лютеинизирующего гормонов, эстрадиола, а также уровня пролактина и прогестерона. Для оценки состояния внутренних органов проводили ультразвуковое исследование. Обследование мужчин включало оценку сперматограммы и бактериологическое исследование спермы. 
В течение шести менструальных циклов пациенткам рекомендовали проводить исследование слюны с помощью мини-микроскопа «Арбор» с целью определения овуляторного периода по степени выраженности симптома кристаллизации. Максимально выраженная кристаллизация (+++) свидетельствовала о дне предстоящей овуляции. Произошедшую овуляцию констатировали по данным УЗИ (исчезновение доминантного фолликула, появление жидкости в позадиматочном пространстве) и исчезновении симптома «папоротника» по данным исследования слюны. В случае сохранения умеренно выраженного симптома папоротника (+, ++), что свидетельствует об относительной гиперэстрогении и недостаточности второй фазы менструального цикла, рекомендовали прием гестагенов (Дюфастон, Утрожестан). Через 14-16 дней после активного коитуса проводили мочевой тест на беременность, при положительном результате поддержку лютеиновой фазы продолжали. Через 28-30 дней проводили ультразвуковую сонографию с целью подтверждения наличия клинической беременности.
В случае умеренного мужского бесплодия, вызванного снижением продолжительности жизни сперматозоидов, половую жизнь рекомендовали за один день или в день предполагаемой овуляции.

Результаты исследования
В группе «мужское бесплодие» было получено 2 (22,2%) случая клинической беременности, в группе «сочетанное бесплодие» – 2 (12,5%) и в группе «идиопатическое бесплодие» – 1 (25%). Часть пациенток, начавших лечение с применения физиологического метода преодоления бесплодия с неудачным исходом, в последствии направлена на проведение вспомогательных репродуктивных технологий в специализированные лечебные учреждения. 

Заключение
В заключение следует отметить, что внедрение в клиническую практику метода определения момента овуляции по кристаллизации слюны в общей схеме терапевтических мероприятий по преодолению умеренно выраженного мужского, смешанного и идиопатического бесплодия позволяет повысить частоту наступления беременности в естественных физиологических условиях без применения вспомогательных репродуктивных технологий. Эта методика имеет существенные клинические и экономические преимущества у женщин, отказавшихся от применения вспомогательных репродуктивных технологий или на этапе подготовки к проведению искусственной инсеминации и экстракорпорального оплодотворения. 
Хочется надеяться, что приборы, позволяющие с той или иной степенью точности определять вероятность овуляции и доступные для самодиагностики в домашних условиях, помогут успешно решить проблему преодоления бесплодия у многих супружеских пар. 

Список литературы находится в редакции.

СТАТТІ ЗА ТЕМОЮ

19.02.2022 Терапія та сімейна медицина Антибіотикотерапія при COVID-19: що, де, коли?

Наприкінці минулого року у форматі онлайн відбувся «Науковий семінар: актуальні питання пульмонології. COVID-19 – виклик сьогодення». Серед багатьох обговорюваних аспектів лікування пацієнтів із коронавірусною хворобою чимало уваги було приділено питанням антибіотикотерапії при COVID-19. Про показання до призначення антибактеріальних засобів хворим на COVID-19 розповіла завідувачка кафедри внутрішньої медицини № 1 ДЗ «Дніпровський державний медичний університет», кандидат медичних наук Олена Валеріївна Мироненко….

19.02.2022 Терапія та сімейна медицина Цефподоксим в амбулаторному лікуванні інфекцій нижніх дихальних шляхів: європейський досвід

Інфекція нижніх дихальних шляхів (ІНДШ) – ​гостре захворювання (триває протягом ≤21 дня) з основним симптомом – ​кашлем і щонайменше одним з інших симптомів з боку дихальних шляхів (відходження мокротиння, задишка, хрипи чи дискомфорт / біль у грудях), що не має альтернативних пояснень (наприклад, астми/синуситу). ІНДШ включає різні захворювання, як-от гострий бронхіт (ГБ), грип, позалікарняна пневмонія (ПЛП), загострення хронічного обструктивного захворювання легень (ХОЗЛ) і бронхоектатичної хвороби (БЕХ)….

18.02.2022 Гастроентерологія Роль сучасних пробіотиків у лікуванні гострої діареї

Щороку в світі реєструються близько 1,5 млрд випадків гострої діареї, яка є причиною загибелі >2 млн людей, причому в структурі летальності від діареї переважають діти перших 5 років життя. Високий рівень захворюваності та смертності, надзвичайне різноманіття етіологічних збудників гострої діареї значно ускладнюють обрання тактики дії та підбір адекватного лікування в умовах первинної медичної практики….

18.02.2022 Діагностика Критичні значення результатів лабораторних тестів для термінового повідомлення лікаря-клініциста

В основі клінічної практики лежать об’єктивні дані лабораторної медицини, які стосуються діагностики, прогнозу та терапії різних захворювань. Відомо, що приблизно 60-70% рішень у медицині приймаються на підставі результатів лабораторних тестів [1]. На нинішньому етапі клінічна лабораторія перейшла від пасивної ролі, зосередженої на аналітичній якості своїх результатів, що визначаються точністю та правильністю, до активної ролі, що полягає у взаємодії з лікарями для визначення своєчасних і клінічно корисних тестів, що в підсумку орієнтовано на лікування пацієнтів. У контексті лабораторної медицини запит на проведення тестів для клінічної лабораторії розглядають як медичну консультацію [2-5]….

Симптом зрачка в гинекологии положительный: причины, что делать

Все женщины знают, что такое менструальный цикл и овуляция. Но мало кому знакомо понятие «симптом зрачка». В гинекологии под ним подразумевают процесс, при котором на шейке матки скапливается большое количество прозрачной стекловидной слизи, а само отверстие снаружи становится темным и напоминает зрачок.

Симптом зрачка в гинекологии — явный признак начала овуляции.

Менструальный цикл

Средняя продолжительность цикла составляет от 23 до 35 дней. Отсчет принято начинать с первого дня месячных, которые длятся 3-7 дней. У большинства женщин в это время отмечаются боли внизу живота. Они спровоцированы гормонами, которые помогают отделиться слизистой оболочке матки.

В это же время активно вырабатывается гормон, стимулирующий рост фолликул. Последние представляют собой пузырьки с еще не созревшими яйцеклетками. Для их дальнейшего развития нужен эстроген, чья концентрация в крови постепенно возрастает параллельно с созревающими фолликулами.

Как правило, до последней стадии доходит только один фолликул, в нем и происходит созревание яйцеклетки.

Повышенный уровень эстрогена провоцирует поступление питательных веществ в слизистую шейки матки. В результате, количество стекловидной слизи заметно увеличивается, благодаря этому, сперматозоиды могут легко проникнуть в матку и сохранять активность в течение нескольких дней.

Овуляция. Что это такое?

Под влиянием гормонов происходит разрыв фолликула. Из него выходит яйцеклетка, которая устремляется в фаллопиеву трубу. Именно этот процесс и принято называть овуляцией. Обычно она происходит на 14 день цикла.

Симптом папоротника

Такое название носит феномен кристаллизации слизи в шейке матки. Процесс начинается на 7-8 день цикла. Если в это время цервикальную слизь рассмотреть под микроскопом, то можно увидеть узоры, напоминающие листья папоротника.

Этот эффект усиливается до и во время овуляции. Затем он уменьшается и окончательно пропадает перед менструацией. Этот процесс стал основой для метода, иногда используемого для установления точной даты овуляции при планировании беременности.

С 5 дня цикла начинает раскрываться шейка матки. Это явление наблюдается до самого созревания яйцеклетки. Здесь же можно увидеть и цервикальную жидкость. Своего максимального размера шейка матки достигает примерно на девятый день цикла. Если в ходе осмотра на отверстие направить свет, то оно темнеет и внешне становится похоже на зрачок.

Стадии

Существует четыре степени данного симптома. Все они определяют количество выделений и размер цервикального канал:

  1. Отрицательный — слизь отсутствует.
  2. Слабоположительный — стекловидные выделения слегка заметны, шеечный канал начал расширяться.
  3. Положительный симптом зрачка — раскрытие менее 20 мм.
  4. Резко положительный — характерны обильные выделения, раскрытие достигло 30 мм.

Если симптомы выражены слабо на протяжении всего цикла, то можно заподозрить пониженный уровень эстрогенов. Подтвердить это можно с помощью лабораторных анализов.

Завершение овуляции

С момента высвобождения, яйцеклетка живет всего сутки. Это лучшее время для зачатия. В организме растет уровень прогестерона, это готовит слизистую матки для оплодотворенной яйцеклетки.

Женщина в это время может ощущать слабость, сонливость, раздражительность, дискомфорт в области молочных желез.

Если произошло оплодотворение, то яйцеклетка соединится со слизистой матки в течение недели. Произошло это или нет можно узнать по уровню гормона ХГЧ. В течение первых трех месяцев он стремительно растет. Затем, после образования плаценты, начинает падать.

Большинство изменений в женском организме проходят практически незаметно. Если вы планируете беременность и хотите точно определить день овуляции, обратитесь к опытному гинекологу. У специалистов есть масса способов, чтобы вам помочь.

Видео

Читайте также: разрыв матки при родах

Как повысить влажность дома во время отопительного сезона

При недостаточной влажности воздуха возрастает риск развития многих заболеваний, включая ОРЗ, пересыхает слизистая оболочка носа, появляются предпосылки для аллергии.

Кроме того, врачами диагностируется синдром сухого глаза, снижение работоспособности и быстрая утомляемость.

ТОП-4 способа для увлажнения воздуха квартире

1. Регулярное проветривание комнат

Наиболее доступный и простой, а также обязательный метод, но не недостаточный. Проветривание – необходимая мера, которую следует дополнять другими способами, независимо от времени года.

2. Сосуды с жидкостью

Вода в емкостях – тоже простой способ, дающий эффект (в случае регулярного ее подливания по мере испарения). Но в емкостях неизбежно со временем развиваются микробы, появляется неприятный запах, поэтому старую воду нужно часто заменять свежей, а посуду хорошо промывать под проточной водой. Из-за не гигиеничности метода им можно пользоваться только время от времени.

3. Разведение комнатных растений

Вазоны – это не только эстетика помещения и особый микроклимат, но и естественное увлажнение помещений. Комнатные растения обеспечивают полезную ионизацию и дезинфекцию, поэтому комнатное цветоводство – отличное занятие для здоровья и настроения. Задумайтесь о разведении дома домашнего папоротника, фатсии, циперуса, комнатной липы, фикуса, драцены, гибискуса.

4. Прибор для увлажнения воздуха

Устройство для увлажнения воздуха – лучший современный метод, с помощью которого достигается положенная влажность, поддерживаются необходимые ее показатели. Это очень удобно для хозяйки, так как увлажнитель воздуха прост в эксплуатации, не требует никаких сложных способов очистки и манипуляций по уходу.

Сейчас предлагается множество качественных устройств разных видов, каждое из которых имеет свои преимущества: паровой с ионизатором, традиционный, прогоняющий пересушенный воздух через влажные фильтры, ультразвуковой с функцией распыления и т.д. Следует подумать о приобретении такого устройства, особенно, если в доме есть дети, а также покупать качественные средства для увлажнения слизистых оболочек носа. Любые необходимые вам препараты вы найдете в сети аптек Столички по доступным ценам.

Как понять, есть ли овуляция?

Овуляция это выход яйцеклетки из доминантного фолликула, образующегося после процессов предшествующих овуляции. Это крайне важно для женщин планирующих беременности, так как без этого не может быть и беременности!

Определенной нормы, в какой день цикла она происходит, нет. Календари менструации подсчитывают средний показатель — это середина цикла, например, ваш менструальный цикл 28 дней, значит овуляция будет происходить примерно на 14-й день цикла. Но есть женщины у которых цикл 35 дней или 22 дня, и т. д, и у таких пациентов овуляция может быть и на 7 й день цикла и на 25 й день, поэтому важны методы, и мы вас с ними ознакомим ниже.

Есть несколько методов для определения свершившейся овуляции:

  1. Симптомы: тянущая боль внизу живота, изменение характера выделений (белые либо прозрачные, обильные и густые), повышение либидо, чувствительность молочных желез; если у вас начались подобные симптомы, то примерно через 2−3 дня у вас начнется овуляция
  2. Измерение базальной температуры — проводится ртутным градусником, с определением температуры в прямой кишке, утром (идеально около 7 утра) Повышение температуры тела в момент овуляции происходит на 0. 5 -1 градус (до 37.5−38). Помимо этого может повышаться и температура тела в подмышечной области до 37 градусов.
  3. Тесты на овуляцию — определение в моче лютенизирующего гормона, чем ближе овуляция, тем ярче полоска
  4. Есть также функциональные методы:

симптомом папоротника — это определение рисунка цервикальной слизи под микроскопом, во время овуляции появляется сложный рисунок папоротника

  1. Симптом зрачка — при осмотре на кресле: цервикальный канал приоткрыт, внутри шейки визуализируется цервикальная слизь, в зависимости от выраженности это симптома можно сказать о моменте овуляции.
  2. Симптом растяжения шеечной слизи — проводит гинекологом, осматривается растяжение слизи при помощи корцанга.

Все вышеперечисленные методы являются неточными, трудоемкими, обследования проводят ежедневно до момента овуляции и после, для контроля.

На сегодняшний день самым точным методом определения овуляции является УЗИ-метод:

Фолликулометрия — она проводится трансвагинально, начиная с 5-го дня цикла и далее каждые 2−3 дня, до момента овуляции. Оценивается количество разных видов фолликулов, образование доминантного фолликула, овуляция либо патологии связанные с отсутствием овуляции.

Будьте здоровы!

Записаться на прием к гинекологу

Врач акушер-гинеколог — Ашурова Назлы Рашадовна

Записаться можно по телефону (391) 205−00−48 или через личный кабинет

Симптомы синдрома деформации папоротника в результате инокуляции условно-патогенной эндофитной флуоресцентной Pseudomonas spp.

Аннотация

Фон

Синдром деформации папоротника (FDS) — серьезное заболевание папоротника Кожанолистного ( Rumohra adiantiformis ). Основным признаком ФДС является деформация листьев, что делает их непригодными для продажи. Дополнительные симптомы включают задержку роста, неравномерное спороношение, уменьшение диаметра корневища и внутреннее обесцвечивание корневища.Ранее мы сообщали о связи симптомов с увеличением популяций эндофитных корневищ флуоресцентных псевдомонад (FP). Цель текущего исследования состояла в том, чтобы определить, будут ли FP из папоротников в Коста-Рике с типичными симптомами FDS воссоздавать симптомы FDS.

Методология и выводы

За 29 месяцев проведено

тепличных испытаний. Микроразмноженные папоротники, полученные из культуры тканей, сначала выращивали в течение одного года для получения корневищ. Затем, используя план эксперимента с рандомизированными полными блоками 8×9, 8 повторяющихся корневищ инокулировали путем погружения в 9 различных обработок перед посадкой.Обработка включала воду без бактерий (контроль) и четыре разные группы ФП, каждая в двух концентрациях. Четыре группы FP включали одну группу здоровых папоротников без симптомов (еще одна контрольная обработка), две группы, выделенные из корневищ симптоматических папоротников, и одну группу, выделенную из внутренних корней симптоматических папоротников. Симптомы оценивали через 12 и 17 мес, а популяции ФП внутри новообразованных корневищ определяли через 17 мес. Результаты показали, что инокуляция смесями ФП от папоротников с симптомами ФДС, но не от здоровых папоротников, воссоздает первичный симптом деформации вайи, а также вторичные симптомы неправильного спороношения, уменьшения диаметра корневища и внутреннего обесцвечивания корневища.

Выводы

Эти результаты предполагают модель причинно-следственной связи FDS, в которой симптомы возникают в результате латентных инфекций несколькими видами условно-патогенных эндофитных бактерий, содержащих гены вирулентности, которые экспрессируются, когда популяции внутри растения достигают минимального уровня.

Образец цитирования: Kloepper JW, McInroy JA, Liu K, Hu C-H (2013) Симптомы синдрома искажения папоротника в результате инокуляции условно-патогенным эндофитным флуоресцентным Pseudomonas spp.ПЛОС ОДИН 8(3): е58531. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058531

Редактор: Лео ван Овербик, Вагенингенский университет и исследовательский центр, Нидерланды

Поступила в редакцию: 20 ноября 2012 г. ; Принято: 5 февраля 2013 г.; Опубликовано: 13 марта 2013 г.

Авторское право: © 2013 Kloepper et al. Это статья с открытым доступом, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Финансирование: Финансирование предоставила Алабамская сельскохозяйственная экспериментальная станция (AAES). Спонсоры не участвовали в разработке исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: Авторы заявили об отсутствии конкурирующих интересов.

Введение

Кожанолистный папоротник ( Rumohra adiantiformis ) – ценное декоративное растение, используемое в композициях из цветов благодаря длительному сроку хранения и симметричным пирамидальным ветвям. Области со значительным производством папоротника Leatherleaf включают Флориду, Коста-Рику и другие страны Центральной Америки. С 1980-х годов производители сообщали об искажениях папоротников и других признаках повреждения. Заболевание было названо синдромом искажения папоротника (FDS) в 2010 году [1]. Основными надземными симптомами ФДС являются скручивание и деформация ваий, делающие их непригодными для продажи. Другие симптомы FDS включают нерегулярный характер спороношения и уменьшение диаметра корневища с редким внутренним обесцвечиванием [1].

Заболеваемость и тяжесть FDS были связаны со значительно большей популяцией флуоресцентных псевдомонад внутри корневищ растений с деформированными вайями, чем у растений с нормальными вайями [1]. На основании результатов была предложена модель [1], согласно которой FDS возникает в результате латентных инфекций вредоносными флуоресцентными псевдомонадами, которые вызывают повреждение при достижении пороговой популяции. Эта модель могла бы объяснить сообщения производителей о том, что FDS распространяется вегетативным размножением корневищ с пораженных полей.

Однако в связи с моделью возникают два основных вопроса. Во-первых, что является триггером или индуцирующим фактором для увеличения популяций эндофитных вредоносных псевдомонад? Фермеры, занимающиеся выращиванием папоротников, отметили, что увеличение деформации листьев во Флориде, как сообщалось, совпало с широким использованием системного фунгицида Benlate [2]. Подтверждением предположения о том, что Бенлат может быть индуцирующим фактором СВД, стало недавнее исследование [3], показывающее, что через 24 месяца после лечения Бенлатом наряду с увеличением эндофитных популяций флуоресцентных псевдомонад присутствовали нарушения роста вайи и другие симптомы, связанные с СВД. внутри корневища.Второй вопрос, вытекающий из модели, заключается в том, воссоздают ли флуоресцентные псевдомонады, выделенные из папоротников с симптомами FDS, симптомы при инокуляции в бессимптомные папоротники?

Соответственно, основная цель настоящего исследования состояла в том, чтобы определить, воссоздают ли флуоресцентные псевдомонады, выделенные из растений с типичными симптомами FDS в Коста-Рике, первичные симптомы искажения при инокуляции в бессимптомные папоротники. В этом исследовании корневища, используемые для инокуляции тест-бактериями, были получены с поля во Флориде.Для настоящего исследования были собраны корневища папоротников, размножаемых микроорганизмами, чтобы все инокуляции можно было проводить на растениях папоротника одинакового возраста, чтобы повысить точность результатов и исключить возможность того, что местные бактерии в укоренившемся папоротнике будут способствовать возникновению симптомов, которые развиваются. после прививки.

Материалы и методы

Источники папоротников и условия роста

растений папоротника Leatherleaf, инициированных из культуры тканей растущих кончиков здоровых корневищ, были получены от Casa Flora, Даллас, Техас.Растения содержали по методике Страндберга [4] с использованием больших пластиковых горшков и посадочной смеси, состоящей из 60 % сосновой коры, 20 % торфа и 20 % песка с добавлением доломитовой извести и микроэлементов. Папоротники выращивали в теплице под затеняющей тканью, которая обеспечивала 55% затенения, и их еженедельно удобряли 250 ppm водорастворимого удобрения 20-10-20. Микроудобрения вносили каждые 4 месяца. Папоротники из тканевой культуры выращивали в течение 12 месяцев для образования корневищ. После инокуляции корневищ (описано ниже) растения содержались таким же образом в теплице.

Выделение, идентификация и характеристика флуоресцентных псевдомонад, выделенных из полевых папоротников и используемых для прививок

А. Изоляция.

Флуоресцентные псевдомонады, используемые для инокуляции корневищ (таблица 1), были выделены либо из папоротников с симптомами FDS в Коста-Рике, либо из папоротников, выглядящих здоровыми, без симптомов FDS во Флориде. Как указано в таблицах 1 и 2, бактерии были выделены либо из корневища (эндофитные бактерии), либо из ризосферы.Методы выделения подробно описаны ранее [1]. Таким образом, эндофитные флуоресцентные псевдомонады (обработки 2А, 2В, 3А, 3В, 4А и 4В в таблицах 1 и 2) выделяли путем удаления участка длиной 4 см с растущего конца каждого корневища. Эти срезы вымачивали в течение 3 мин в 70% этаноле с последующим прокаливанием. После охлаждения корневища прижимали к чашкам с агаром, содержащим 10% триптического соевого агара, чтобы подтвердить, что поверхностные бактерии были уничтожены. Срезы поверхностных обеззараженных корневищ массой 1 г.5–2,5 г асептически растирали в течение 1 мин в 10 мл стерильной дистиллированной воды в автоклавных контейнерах шаровой мельницы из нержавеющей стали с использованием измельчителя тканей Kleco (Garcia Manufacturing, Visalia, California). Делали серийные разведения до 10 -2 и высевали на 50% среду Кинга B (KB). Ризосферные бактерии (обработки 5А и 5В в таблицах 1 и 2) выделяли путем встряхивания собранных в поле корневищ с прикрепленными корнями для удаления слабо прикрепленной почвы. Затем 2,0 г корней с оставшейся на них почвой встряхивали в течение 20 мин в 50 мл стерильной воды в колбах Эрленмейера вместимостью 125 мл.Делали серийные разведения и высевали на KB. После инкубации в течение 48 часов при 28°C отбирали репрезентативные типы колоний, которые флуоресцировали в ультрафиолетовом свете, очищали и хранили при -80°C.

Б. Идентификация.

Таксономическая классификация каждого штамма флуоресцентных псевдомонад, используемых для инокуляции корневищ, была основана на частичной последовательности гена 16S рРНК. ДНК выделяли и амплифицировали с универсальными бактериальными праймерами: 8F (5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′) и 1492R (5′-ACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′).ПЦР проводили с использованием мастер-микса Lucigen EconoTaq Plus Green 2× (Lucigen Corp.) со следующими параметрами циклирования: начальная денатурация при 95°C в течение 5 мин; 31 цикл: 94°С в течение 1 мин, 57°С в течение 45 с, 70°С в течение 2 мин; и окончательное удлинение при 70°С в течение 10 мин.

последовательностей ДНК были подвергнуты анализу типовых штаммов в проекте рибосомной базы данных с использованием SEQMATCH для идентификации бактериальных таксонов каждого штамма. Частичные последовательности гена 16S рРНК инокулированных штаммов и штаммов близкородственного типа Pseudomonas spp.были сопоставлены с ClustalW, а филогенетический анализ был проведен с помощью MEGA версии 5 [5]. Данные были проанализированы путем объединения соседей (NJ), а матрица расстояний была рассчитана с помощью модели параметров Kimura 2-K. Для оценки достоверности филогенетического дерева использовали бутстрап-тест с 1000 повторов. После построения филогенетического дерева была подготовлена ​​сводная таблица, показывающая процентное содержание изолятов из трех источников выборки (корневища здоровых папоротников [HRZ], корневища симптоматических папоротников [SRZ] и ризосферы симптоматических папоротников [SRS]).

C. Характеристика, выявление HR, мацерация ломтиков картофеля и продукция ИУК.

Все штаммы флуоресцентных псевдомонад, используемые для инокуляции корневищ, были оценены по трем признакам, ранее связанным с бактериальной способностью повреждать растения. Классическая тест-система на гиперчувствительность к табаку (HR), которая использовалась для определения фитопатогенного потенциала растительно-ассоциированных бактерий [6], была адаптирована из работы Campbell et al. [7] и Гарднер и соавт. [8]. Табак ср.Использовался самсун, и тест проводился с использованием второго и третьего полностью распустившихся листьев на разных растениях. В межжилковое пространство листьев табака вводили суспензии штаммов бактерий в стерильной дистиллированной воде в количестве от 10 8 до 10 9 КОЕ/мл. Контроль стерильной воды был включен в каждый тест. Результаты регистрировали через 24 и 48 часов после инокуляции [8]. Наличие сухого некроза в области инъекции через 24 часа регистрировали как реакцию ++, а наличие влажного некроза через 48 часов после инокуляции — как реакцию +.

В качестве меры активности пектинолитического фермента использовали тест на мацерацию ломтиков картофеля. Процедура была изменена из González et al. [9]. Бактериальные штаммы наносили штрихами на верхнюю часть ломтиков картофеля, помещенных в чашки Петри с 5 мл стерильной воды вокруг дна ломтиков. Из каждого клубня, используемого для получения ломтиков, брали один неинокулированный ломтик картофеля. Развитие мягкой гнили исследовали после инкубации при комнатной температуре в течение 24 и 48 часов.

Бактериальная продукция индол-3-уксусной кислоты (ИУК) определялась качественно и количественно на основе ранее описанных методов [10], [11].Тестовые штаммы бактерий выращивали в течение 24 часов в питательном бульоне при встряхивании при комнатной температуре. Для качественного получения 10 мкл бактериальной культуры инокулировали в 1,0 мл минимально солевой среды с добавлением 5 мМ/л L-триптофана и затем инкубировали при встряхивании в течение 48 часов. Культуру центрифугировали при 12000 об/мин в течение 5 мин, затем 50 мкл супернатанта добавляли к 100 мкл реагента FeCl 3 -HClO 4 , который хранили в темноте. Развитие розового окрашивания через 25 мин указывало на образование ИУК.Продуцирование IAA количественно определяли путем инокуляции 200 мкл 24-часовой культуры питательного бульона в 20 мл минимальной солевой среды с добавлением 5 мМ/л L-триптофана и последующего встряхивания при комнатной температуре в течение 48 часов. После центрифугирования при 12000 об/мин в течение 5 мин 1,0 мл супернатанта добавляли к 2 мл реагента FeCl 3 -HClO 4 . Через 25 мин определяли оптическую плотность при 530 нм в УФ-спектрофотометре и определяли концентрацию ИУК в мкг/мл по стандартной кривой.

Инокуляция корневищ и влияние флуоресцентных псевдомонад на развитие симптомов ФДС

Эксперимент был разработан, чтобы определить, воссоздают ли флуоресцентные псевдомонады, выделенные из растений с типичными симптомами FDS в Коста-Рике, первичные симптомы искажения при инокуляции в бессимптомные папоротники. Эксперимент представлял собой рандомизированный полный блочный дизайн с 9 обработками и 8 повторениями на обработку, при общем числе экспериментальных растений 72. Обработки, показанные в таблице 1, включали контроль, инокулированный водой, и четыре группы флуоресцентных псевдомонад (обработки 2–5), каждая при двух концентрациях бактерий (log 6.0 и log 8,0 КОЕ/мл). Штаммы флуоресцентных псевдомонад в варианте 2 были выделены из корневищ здоровых бессимптомных папоротников, собранных на папоротниковом заводе во Флориде, где ранее не применялся фунгицид Benlate. Штаммы в обработках 3 и 4 были выделены из корневищ папоротников, проявляющих симптомы FDS в Коста-Рике. Штаммы в варианте 5 были получены из ризосферы папоротников с симптомами FDS в Коста-Рике. Концентрации бактерий в каждой лечебной группе готовили путем выращивания бактериальных штаммов по отдельности на KB в течение 48 часов при 28°C, а затем доводили оптическую плотность стерильной водой до получения заявленных плотностей клеток.

Корневища одинакового размера папоротников, полученных из культуры тканей и выращенных в течение 12 месяцев в теплице Обернского университета, как описано выше, отбирали по 8 корневищ на обработку. Корневища погружали в обработки на 5 минут непосредственно перед высадкой в ​​теплицу. Горшки рандомизировали в теплице и выращивали, как описано выше.

Влияние бактериальной обработки на развитие симптомов FDS оценивали через 12 месяцев после инокуляции при неразрушающем отборе образцов растений папоротника.Среднюю степень выраженности ФДС определяли для самой молодой полностью развитой вайи на каждом растении по четырехбалльной шкале, разработанной ранее [1] для оценки выраженности нарушений в коммерческих папоротниках. По этой шкале 0 указывает на нормальный внешний вид с симметричной вайей; 1 указывает на легкое искажение формы вайи с изгибом кончика вайи или некоторым искривлением стержня вайи; 2 указывает на более сильное искажение формы вайи с явной асимметричной формой в целом и, в частности, с искаженным внешним видом кончика вайи; 3 указывает на сильное искривление стержня и потерю треугольной формы вайи.Дополнительные измерения, проведенные для количественной оценки аспектов роста папоротника, связанных с симптомами FDS, включали оценку средней высоты растений, средней ширины самой большой ветви на каждом растении, среднего числа 5 самых больших листьев с искривленным стержнем, среднего числа 5 самых больших листьев. вайей пирамидальной формы, количество растений с карликовостью, среднее число 5 самых крупных вайй с листочками, вывернутыми из плоскости вайи, и количество растений с хрустящими, утолщенными вайями.

Через 17 месяцев после инокуляции влияние бактериальной обработки на рост растений и плотность популяции флуоресцентных псевдомонад внутри корневища (описано ниже) определяли путем деструктивного отбора проб инокулированных растений. Измерение роста растений включало общий сырой вес растения, количество корневищ на растение, штангенциркуль трех корневищ на растение (как способ оценки размера корневища) и сухую массу корней и листьев.

Для каждого измерения, проведенного через 12 и 17 месяцев после посева, данные были проанализированы на наличие значительных эффектов обработки с использованием двустороннего дисперсионного анализа с SAS. Когда было определено значимое значение F, значения LSD были рассчитаны как P  = 0,01.

Повторная изоляция флуоресцентных псевдомонад через 17 месяцев после инокуляции здоровых корневищ: количественная оценка эндофитных популяций внутри корневищ, идентификация и характеристика

Выделение бактерий было проведено через 17 месяцев после инокуляции для количественного определения и характеристики флуоресцентных псевдомонад внутри корневищ растений, у которых развились симптомы FDS (обработки 3A, 3B, 4A, 4B и 5B).Из этих обработок для отбора проб отбирали по три корневища от каждого повторного растения каждой обработки. После поверхностной дезинсекции, как описано выше, для каждой повторности готовили объединенную пробу 0,5–1,5 г ткани корневища. Образцы обрабатывали, как описано выше, готовили серийные 10-кратные разведения и высевали на 50% KB. После инкубации в течение 48 часов при 28°С подсчитывали флуоресцентные колонии в ультрафиолетовом свете и рассчитывали среднее значение log КОЕ/г корневища для каждой обработки.Данные были проанализированы на наличие значительных эффектов лечения с использованием двустороннего дисперсионного анализа, как описано выше.

Собрана коллекция из 350 штаммов флуоресцентных псевдомонад из симптоматических папоротников. Объединенные коллекции из 100 штаммов из обработок 3А и 3В, 100 из обработок 4А и 4В и 100 из обработок 5А и 5В были сделаны из чашек для разведения, используемых для количественного определения флуоресцентных псевдомонад внутри корневищ. Кроме того, была создана коллекция из 50 штаммов (обозначенных в результатах как 5INT) из корневищ, полученных в результате обработок 5A и 5B, которые показали внутреннее обесцвечивание, о котором ранее сообщалось внутри корневищ папоротников с симптомами FDS в Коста-Рике (рис. B в Kloepper). и другие.[1]). Каждый из 350 штаммов был идентифицирован с использованием филогенетического анализа секвенирования гена 16S рРНК, как описано выше. Все штаммы также тестировали на возникновение HR, пектинолитическую активность (мацерация ломтиков картофеля) и продукцию IAA, как описано выше.

Результаты

Выделение, идентификация и характеристика флуоресцентных псевдомонад, первоначально выделенных из полевых папоротников и использованных для прививок

А. Идентификация.

Идентификация штаммов флуоресцентных псевдомонад, выделенных из полевых папоротников с симптомами FDS или без них (таблица 1, рисунок 1 и таблица 2), выявила четкие различия между штаммами здоровых папоротников и штаммами папоротников с симптомами.Например, 88% штаммов из здоровых корневищ (вариант 2) имели уникальные последовательности гена 16S рРНК по сравнению с 47% штаммов из симптоматических корневищ (варианты 3+4) и 7% штаммов из ризосферы симптоматических папоротников (табл. 2). Филогенетический анализ показал, что штаммы из всех источников укладываются в пять филогенетических кластеров (рис. 1). Отмечены различия в частоте попадания в эти кластеры штаммов псевдомонад из разных вариантов обработки. Из штаммов, выделенных из корневищ бессимптомных папоротников, 58.8% принадлежали к кластеру C. Однако ни один из штаммов из корневищ или ризосферы симптоматических папоротников не принадлежал к этому кластеру. Штаммы, попадающие в кластеры А и В, доминировали среди штаммов симптоматических папоротников, составляя 90,9% штаммов при обработке 3, 100% при обработке 4 и 78,6% при обработке 5. Напротив, 41,7% штаммов от бессимптомных корневищ папоротников соответствуют в эти самые кластеры.

Рис. 1. Консенсусное дерево с присоединением к соседям (NJ) частичного гена 16S рРНК (1412 п.н.).

На этом рисунке показаны филогенетические отношения между флуоресцентными Pseudomonas spp. используют для прививки корневища папоротника. Коды штаммов перечислены в условных обозначениях Таблицы 1. Анализы проводились с помощью MEGA версии 5 [6], и числа в каждом узле представляют значение начальной загрузки (1000 повторов). Масштабная линейка: замещения/участок.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058531.g001

B. Характеристика, выявление HR, мацерация ломтиков картофеля и производство IAA.

Результаты характеристики флуоресцентных штаммов, выделенных из полевых папоротников и использованных для инокуляции корневищ в теплице, выявили различия между группами бактерий по частоте некоторых признаков, связанных с вирулентностью. Например, ни одна из псевдомонад, выделенных из корневищ внешне здоровых, бессимптомных растений без истории использования Benlate, не вызывала HR в листьях табака (таблица 1). Напротив, HR вызывали 77% флуоресцентных псевдомонад, выделенных изнутри корневищ или из ризосферы больных папоротников с симптомами в течение 24–48 часов после инокуляции (таблица 1).Из этих штаммов 17% продуцировали классический HR, состоящий из сухого коричневого межжилкового некроза через 24–36 часов, что свидетельствует о патогенности бактериального штамма [6], а 60% давали влажный черный межжилковый некроз через 48 часов. часы. Этот черный влажный некроз напоминал симптомы бактериальной мягкой гнили, вызванной пектинолитическими ферментами, и побудил нас исследовать частоту продукции пектинолитических ферментов с помощью теста на мацерацию ломтиков картофеля.

При тесте на мацерацию ломтиков картофеля ни один из штаммов флуоресцентных псевдомонад из корневищ бессимптомных растений не обладал выраженной пектинолитической активностью (вызывает мягкую гниль ломтиков картофеля через 24 часа) (табл. 1), в то время как 46% штаммов, выделенных изнутри корневища или из ризосферы больных папоротников обладали выраженной пектинолитической активностью.Кроме того, доля штаммов от больных растений, обладающих более слабой пектинолитической активностью (вызывающих мягкую гниль через 48 часов), составила 83 % по сравнению с 35 % штаммов от здоровых растений (табл. 1). Продукция IAA in vitro отмечена для всех протестированных штаммов (табл. 1). В отличие от проявления HR и пектинолитической активности уровень продукции ИУК был не ниже у штаммов, выделенных из здоровых растений.

Влияние флуоресцентных псевдомонад на развитие симптомов СВД

В коммерческих папоротниках здоровые папоротники Leatherleaf дают очень симметричный рост с прямым или слегка изогнутым центральным стержнем, заканчивающимся дефинитивной верхушкой и имеющим в целом пирамидальную форму.Наиболее характерным зарегистрированным симптомом FDS является искаженный рост ветвей [1], который варьируется от изгиба кончика до более сильного скручивания позвоночника, вызывающего потерю пирамидальной формы. Кроме того, перья (листообразные сегменты вайи) часто вырастают из плоскости вайи, что приводит к группированию роста. По мере взросления пораженные ветви могут иметь сильно деформированную форму. Все эти симптомы воссоздавались через 12 мес после инокуляции штаммами флуоресцентных псевдомонад, выделенных из больных, а не из здоровых растений (табл. 3 и рис. 2).В частности, инокуляция обеих концентраций псевдомонад, выделенных из внутренней части листьев или ризосферы папоротников с симптомами FDS (обработки 3A, 3B, 4A, 4B, 5A и 5B), приводила к статистически значимому ( P  = 0,01) увеличению по сравнению с контроль (варианты 1, 2А и 2Б) по тяжести FDS, количеству пяти самых больших листьев с искривленным стержнем и количеству пяти самых больших листьев с перьями, вывернутыми из плоскости листа. Все обработки, инокулированные бактериями из больных папоротников, привели к значительно меньшему количеству пяти самых больших листьев пирамидальной формы по сравнению с контролем.Соответствующие фотографии деформированного роста вайи в результате инокуляции псевдомонадами от растений с симптомами FDS (рис. 2) показывают ряд деформаций, подобных тем, которые были зарегистрированы в полевых условиях в Коста-Рике [1].

Рис. 2. Воссоздание симптомов FDS деформации вайи путем инокуляции флуоресцентными псевдомонадами из больных растений.

Примеры деформации, проявляющиеся через 12 месяцев после инокуляции. А = водный контроль (вариант 1), B = бактерии из корневищ здоровых папоротников (вариант 2B), C–F = бактерии из корневищ папоротников с симптомами ФДС (варианты 3A, 3B, 4A и 4B), G– H = ризосферные бактерии папоротников с симптомами FDS (обработки 5A и 5B).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058531.g002

В дополнение к основному симптому искаженного роста листьев, другие симптомы, связанные с FDS, включают утолщение листьев, что приводит к хрустящей текстуре, снижение общего роста в пределах к карликовости растений, наличию красных или желтых полос на перьях, неравномерному рисунку спороношения на нижней стороне листьев, уменьшенному диаметру корневища и внутреннему обесцвечиванию корневищ, что приводит к искажению листьев [1]. Каждый из этих симптомов наблюдался через 12 или 17 месяцев после инокуляции штаммами флуоресцентных псевдомонад из папоротников с симптомами СВД, но не из контрольных (как обработанных водой, так и инокулированных бактериями из здоровых папоротников) (табл. 3, рис. 3, 4, 5 и 6). В частности, утолщение листьев и хрустящая текстура наблюдались у 25–37,5% растений, инокулированных бактериями из больных папоротников, но ни у одного из контрольных растений; карликовость развилась у 25–75% растений, инокулированных бактериями из больных папоротников, но ни у одного из контрольных растений; и значительно сниженный рост, определяемый как средней высотой растений, так и шириной 5 самых больших листьев, в результате всех обработок, инокулированных бактериями из больных папоротников, по сравнению как с водным контролем, так и с инокуляцией бактериями из здоровых папоротников (таблица 3). .На некоторых ветвях, инокулированных флуоресцентными псевдомонадами изнутри корневищ больных папоротников, развилась неравномерная споруляция (рис. 3) или красноватые полосы перьев (рис. 4), симптом, называемый в Коста-Рике vena roja [1]. Подземные симптомы уменьшения диаметра корневища (рис. 5) и внутреннего обесцвечивания корневища (рис. 6) появились через 17 месяцев после инокуляции псевдомонадами, выделенными изнутри корневища и из ризосферы больных папоротников, но не при контроле воды или изолированных псевдомонадах. изнутри здоровых корневищ.

Рисунок 3. Воссоздание симптомов FDS неправильного спорообразования.

Инокуляция флуоресцентными псевдомонадами из корневищ больных растений. На каждом изображении разные растения, демонстрирующие асимметричный рисунок спороношения на нижней стороне листьев.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058531.g003

Рисунок 4. Воссоздание симптомов FDS roja vena.

Инокуляция флуоресцентными псевдомонадами из корневищ больных растений.На каждом изображении разные растения с красноватыми полосами на перьях.

https://doi. org/10.1371/journal.pone.0058531.g004

Рисунок 5. Воссоздание симптомов FDS с уменьшенным диаметром корневища.

Инокуляция флуоресцентными псевдомонадами из корневищ и ризосферы больных растений. Репрезентативные примеры корневищ папоротников через 17 месяцев после инокуляции. А, В = бактерии из корневищ папоротников с симптомами ФДС (варианты 3А и 4А), С = ризосферные бактерии из папоротников с симптомами ФДС (вариант 5А), D = бактерии из корневищ здоровых папоротников (вариант 2Б), Е = контроль воды.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058531.g005

Рис. 6. Воссоздание симптомов FDS внутреннего обесцвечивания корневищ.

Инокуляция флуоресцентными псевдомонадами из корневищ и ризосферы больных растений. A, B = бактерии из корневищ здоровых папоротников (варианты 2A и 2B), C = водный контроль, D, E = бактерии из корневищ папоротников с симптомами FDS (варианты 3A и 4A), F = ризосферные бактерии из папоротников с Симптомы СВД (лечение 5А).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058531.g006

Данные, собранные во время последней деструктивной выборки через 17 месяцев после инокуляции (таблица 4), также демонстрируют, что инокуляция флуоресцентными псевдомонадами из больных папоротников привела к значительному снижению общий рост и жизнеспособность растений. Например, количество корневищ на растение, диаметр корневищ, общая сырая масса растений и сухая масса корней и побегов были достоверно ( P  = 0.01) снижается при инокуляции всеми шестью обработками псевдомонад от больных растений по сравнению с инокуляцией двумя обработками псевдомонад от здоровых растений и водным контролем (табл. 4).

Повторная изоляция флуоресцентных псевдомонад через 17 месяцев после инокуляции здоровых корневищ: количественная оценка эндофитных популяций внутри корневищ, идентификация и характеристика

Количественное количество флуоресцентных псевдомонад внутри корневищ всех девяти вариантов обработки определяли через 17 месяцев после инокуляции (таблица 4). Важно отметить, что эти выделения были выполнены на новых корневищах, которые развились на растениях папоротника, выросших из каждого из инокулированных корневищ. Популяции флуоресцентных псевдомонад в водном контроле и внутри корневищ растений, инокулированных псевдомонадами здоровых папоротников, были значительно ниже, чем популяции всех вариантов, инокулированных псевдомонадами больных папоротников (табл. 4). Величина увеличения плотности популяции по сравнению с водным контролем варьировалась от log 1.51 для лечения 3А до log 2,74 для лечения 5В, что соответствует увеличению в 32 и 550 раз соответственно. Важно отметить, что конечные популяции флуоресцентных псевдомонад в растениях, инокулированных штаммами из корневищ здоровых папоротников (обработки 2А и 2В в таблице 4), были статистически эквивалентны популяциям в неинокулированном водном контроле. Это открытие подтверждает вывод о том, что способность FP проникать, колонизировать и сохраняться в корневищах зависит от штамма.

Чтобы определить, могут ли те же самые бактерии, инокулированные в корневища, быть выделены из растений с симптомами, 350 штаммов были выделены из новообразованных корневищ при обработках 3, 4 и 5 через 17 месяцев после инокуляции, как описано в методах. Филогенетические анализы этих повторно выделенных штаммов сравнивали с соответствующими анализами штаммов, которые использовались для инокуляции корневищ для воссоздания симптомов FDS. В целом результаты (рис. 7) показывают, что некоторые из инокулированных штаммов были выделены из папоротников, у которых развились симптомы.В частности, повторно изолированные штаммы вписываются в четыре филогенетических кластера. Три из этих кластеров (B, D и E) были такими же, как инокулированные штаммы, первоначально выделенные из симптоматических папоротников в Коста-Рике (таблица 5). Преобладающим филогенетическим кластером был В, на долю которого приходилось более 50% из 350 повторно выделенных штаммов из всех четырех вариантов лечения.

Рис. 7. Консенсусное дерево с присоединением к соседям (NJ) частичного гена 16S рРНК (1412 п.н.), иллюстрирующее филогенетическое родство среди флуоресцентных Pseudomonas spp.выделены изнутри корневища через 17 месяцев после инокуляции.

Первая цифра в кодах штаммов указывает номер обработки из эксперимента по инокуляции (таблица 2). Анализы были выполнены с помощью MEGA версии 5 [6], и числа в каждом узле представляют значение начальной загрузки (1000 повторов). Масштабная линейка: замещения/участок.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0058531.g007

Также интересно сравнить процент повторно выделенных штаммов при обработках 5 и 5INT.Обе эти обработки были инокулированы одной и той же группой флуоресцентных псевдомонад из ризосферы симптоматических папоротников, но 5INT был повторно выделен путем печати поперечных срезов корневищ, показывающих внутренний некроз, на агар, как описано в методах. Из 5-INT было обнаружено только два филогенетических кластера (B и E) (табл. 5). Кроме того, 13 штаммов, повторно выделенных из 5-INT, были идентичны двум штаммам из кластера E, находившимся в инокуляте (табл. 2). В совокупности эти результаты свидетельствуют о том, что специфический симптом внутреннего некроза может быть вызван членами кластеров B и E, что требует дальнейшего изучения.

В дополнение к филогенетическому анализу 350 повторно выделенных штаммов мы также сравнили их физиологические профили по сравнению с инокулированными штаммами путем оценки продукции HR, пектинолитических ферментов и ИУК. Результаты показали, что HR вызывали через 24–48 часов 77% инокулированных штаммов (обработки 3+4+5 в таблице 1) и 50% штаммов, повторно выделенных из корневища (обработки 3+4+5 в таблице). С1). Интересно, что частота выявления HR была выше (62%) для обработки 5INT (таблица S1), которая включала штаммы, выделенные путем прессования на агар поперечных срезов корневищ, демонстрирующих внутреннее обесцвечивание (рис. 6D).Аналогичным образом, сильную пектинолитическую активность, о чем свидетельствует гниение ломтиков картофеля в течение 24 часов, проявляли 17 % инокулированных штаммов (варианты 3+4+5 в табл. 1) и 34 % штаммов, реизолированных изнутри корневищ (варианты 3). +4+5 в таблице S1). Как и в случае с частотой HR, частота сильной пектинолитической активности была выше (66%) для лечения 5INT (таблица S1). ИУК продуцировался на среднем уровне от 8,4 до 12,0 мкг/мл штаммов при трех инокулированных обработках (обработки 3, 4 и 5 в таблице 1) и при 8 обработках.от 5 до 12,3 мкг/мл повторно выделенных штаммов.

Обсуждение

Результаты идентификации флуоресцентных псевдомонад, выделенных из полевых папоротников в Коста-Рике, показывают, что здоровые и больные папоротники имеют разные сообщества псевдомонад внутри корневища и в ризосфере. Например, идентификация штаммов на основе анализа гена 16S рРНК (табл. 1, рис. 1 и табл. 2) продемонстрировала тенденцию к снижению бактериального разнообразия внутри корневищ больных папоротников по сравнению с корневищами здоровых папоротников.Таким образом, при развитии ФДС некоторые филогенетические кластеры становились доминирующими внутри корневищ папоротников, а штаммы, принадлежащие к доминирующему филогенетическому кластеру псевдомонад внутри здоровых корневищ, не обнаруживались внутри корневищ больных папоротников.

Характеристика штаммов псевдомонад (табл. 1) показала, что, помимо различий в филогенетических группах, флуоресцентные псевдомонады больных и здоровых папоротников различались функционально. Штаммы из больных папоротников имели более высокие частоты возникновения реакции гиперчувствительности в табаке, что свидетельствует о том, что бактериальный штамм является патогенным [6]. Выяснилось, что 46% штаммов, выделенных из корневищ или из ризосферы больных папоротников, проявляли сильную пектинолитическую активность, вызывая мягкую гниль ломтиков картофеля в течение 24 часов, по сравнению с ни одним из штаммов здоровых папоротников. Пектинолитические ферменты являются фактором вирулентности некоторых патогенов, таких как бактерии мягкой гнили. Интересно, что одним из вторичных симптомов, иногда связанных с FDS, является внутреннее обесцвечивание корневищ (рис. 6), напоминающее мягкую гниль клубней картофеля.Помимо того, что пектинолитические ферменты являются фактором вирулентности для некоторых патогенов, они могут способствовать проникновению ризосферных бактерий внутрь растений за счет гидролиза пектиновых веществ в средней пластинке наружной клеточной стенки растений [12]. Пектинолитические ферменты также были предложены в качестве возможного механизма, с помощью которого вредоносные ризобактерии вызывают повреждение растений [13].

В отличие от выявления HR и активности пектинолитических ферментов, уровень продукции ИУК у штаммов, выделенных из здоровых растений, был не ниже, чем из больных. Сообщалось, что продукция ИУК является детерминантой аллелопатического или вредного воздействия некоторых ризосферных бактерий на растения [14] и [3]. Линдоу и др. [15] сообщили, что красновато-коричневый цвет плодов груши был связан со смешанными популяциями ИУК-продуцирующих эпифитных бактерий, включая виды флуоресцентных псевдомонад. Возможно, что продукция ИУК эндофитными псевдомонадами вносит свой вклад в симптомы СВД, поскольку бактериальная продукция ИУК регулируется с помощью чувства кворума [16]. Следовательно, по мере увеличения эндофитных популяций псевдомонад внутри корневищ, как это произошло после инокуляции в нашем исследовании, можно ожидать увеличения продукции ИУК в planta .

Штаммы флуоресцентных псевдомонад, выделенные из ризосферы и внутри корневищ больных папоротников, но не выделенные из здоровых папоротников, воссоздали основные симптомы ФДС через 12 месяцев после инокуляции в условиях теплицы (рис. 2). Растения кожистолистного папоротника растут медленно, когда их впервые выращивают из отдельного корневища, как в нашем исследовании. Первые симптомы деформированных листьев были отмечены примерно через пять месяцев после инокуляции, когда на вновь посаженных корневищах развивались третьи новые листья, и мы ждали еще 7 месяцев, чтобы оценить симптомы, чтобы смоделировать вегетационный период в полевых условиях.Эти основные симптомы включали скручивание и деформацию листьев и потерю нормальной пирамидальной формы листьев, за что высоко ценится папоротник Кожаный лист. Удивительно было видеть степень вторичных симптомов FDS, которые также воспроизводились после инокуляции корневищ бактериями больных папоротников. Например, утолщение листьев, что приводит к хрустящей текстуре, снижение общего роста, иногда приводящее к карликовости растений, наличие красных или желтых полос на перьях листьев, неравномерный рисунок спороношения, уменьшение размера новых корневищ и внутреннее обесцвечивание. корневища были отмечены у некоторых растений, инокулированных штаммами псевдомонад, выделенных из больных растений, в то время как папоротники, инокулированные флуоресцентными псевдомонадами из здоровых папоротников, не имели этих признаков. Это появление основных и вторичных симптомов FDS после инокуляции подтверждает идею о том, что вторичные симптомы, о которых сообщают производители в Коста-Рике [1], на самом деле являются частью того же синдрома болезни, FDS, что и основные симптомы искривления листьев.

Как описано в результатах, коллекция псевдомонад была получена непосредственно из поперечных срезов новых корневищ, которые проявляли внутренний некроз через 17 месяцев после инокуляции. Филогенетический анализ этих штаммов показал, что только два из инокулированных кластеров были представлены штаммами внутри зоны некроза.Одной из интерпретаций этого открытия может быть то, что некоторые из вторичных симптомов вызваны специфическими штаммами в сообществе вредных эндофитных бактерий, связанных с FDS. Необходимы дальнейшие исследования, направленные на выяснение того, как смешанные генотипы флуоресцентных псевдомонад вызывают различные симптомы, чтобы полностью понять, как наличие вторичных симптомов варьируется в зависимости от генотипов присутствующих эндофитных псевдомонад и климата, такого как высота над уровнем моря и годовое количество осадков, два климатических условия, которые различаются в зависимости от папоротника кожаного листа. производственные площади.

Важно отметить, что род Pseudomonas содержит большое разнообразие видов и штаммов внутри вида [17] и что среди флуоресцентных псевдомонад есть много штаммов биологического контроля, а также вредных и патогенных штаммов. Лопер и др. [18] секвенировали геном семи полезных штаммов, связанных с растениями, в группе P. fluorescens и обнаружили, что только около половины генома были общими для всех штаммов. Интересно, что в исследовании Loper el al.[18], ни один из полезных штаммов Pseudomonas не вызывал HR, и только один продемонстрировал пектинолитическую активность на ломтиках картофеля, результаты, которые согласуются с нашим выводом о том, что выявление HR и пектинолитической активности было обычным явлением среди штаммов из больных, но не здоровых папоротников. Также важно отметить, что, хотя основное внимание в этом исследовании уделялось роли флуоресцентных псевдомонад в этиологии СВД, возможно, что другие культивируемые и некультивируемые бактерии также способствуют возникновению некоторых разнообразных симптомов СВД.

Выводы

В целом, представленные здесь результаты ясно демонстрируют, что бактерии, выделенные из больных растений папоротника в Коста-Рике, воссоздали основные зарегистрированные симптомы [1] FDS, в то время как водный контроль и бактерии, выделенные из здоровых растений, этого не сделали. Интересно, что инокуляция бактериями из здоровых растений на самом деле значительно ( P  = 0,01) увеличивала один параметр роста растений, ширину вайи, по сравнению с водным контролем (таблица 3) (рис. 2B).Это открытие показывает, что некоторые эндофитные бактерии внутри корневищ здоровых растений полезны для развития растений, что согласуется с исследованиями PGPR (ризобактерий, стимулирующих рост растений).

Как указал Престон [17], различие между сапрофитами и патогенами не всегда четкое, потому что и те, и другие живут на тканях растений и внутри них, где часто возникают возможности для рекомбинации после горизонтального переноса генов, процесса, который придает новые фенотипические признаки ( или наборы признаков) к бактериям, разделяющим экологическую среду обитания [19]. Следовательно, гены продукции факторов вирулентности могут перемещаться среди видов филогенетических групп бактерий в ризосфере или внутри растений, а экспрессия факторов вирулентности может быть связана с плотностью популяции бактериальных штаммов. Например, было показано, что несколько факторов вирулентности регулируются плотностью бактериальных клеток посредством определения кворума, включая выявление HR [16], продукцию IAA [17] и продукцию ферментов, разрушающих клеточную стенку, включая пектиназу [19], [20]. ]. Кроме того, чувство кворума регулирует как горизонтальный перенос генов, так и бактериальную колонизацию растений-хозяев [19].Основываясь на этих отчетах и ​​наших результатах, мы предлагаем следующую модель того, как флуоресцентные псевдомонады вызывают FDS. Среди нативной популяции бактерий в ризосфере и внутри корневищ здоровых папоротников есть группы флуоресцентных псевдомонад и, вероятно, других родов эубактерий, которые содержат гены продукции факторов вирулентности и колонизации. Нарушения роста папоротников, такие как применение специфических системных фунгицидов [3], вызывают увеличение численности этих групп бактерий.По мере увеличения популяции чувство кворума активирует экспрессию факторов колонизации и вирулентности, а также горизонтальный перенос генов вирулентности в другие близкородственные филогенетические группы. С течением времени происходит сдвиг бактериального сообщества внутри корневищ с сопутствующим развитием симптомов СВД. Эта модель согласуется с предыдущими исследованиями, рассмотренными Berg et al. [19], что ризосфера является резервуаром условно-патогенных микроорганизмов, вызывающих инфекции человека.

Благодарности

Тепличное помещение и уход за растениями предоставил Исследовательский центр растениеводства ААЭС.Мы благодарим Уильяма Фаулера за редактирование рукописи.

Вклад авторов

Задумал и разработал эксперименты: JWK C-HH. Проведены эксперименты: KL JAM JWK C-HH. Проанализированы данные: JWK C-HH. Предоставленные реагенты/материалы/инструменты для анализа: JAM KL. Написал статью: JWK C-HH.

Каталожные номера

  1. 1. Клоппер Дж. В., Саборио Ф., Бустаманте Э., Полстон Дж. Э., Санчес Э. и др. (2010)Синдром искажения папоротника кожистого папоротника в Коста-Рике: симптомы, заболеваемость и тяжесть.Болезни растений 94: 940–951.
  2. 2. Миллс Х.А., Сассевиль Д.Н., Кремер Р.Дж. (1996)Влияние бенлата на рост кожистых папоротников, морфологию корней и ризосферные бактерии. J Plant Nutrition 19: 917–937.
  3. 3. Kloepper JW, Hu CH, Burkett-Cadena M, Liu K, McInroy JA (2012)Увеличение популяции вредных флуоресцентных псевдомонад, колонизирующих корневища кожистого папоротника ( Rumohra adiantiformis ), и проявление симптомов синдрома искажения папоротника после применения системного фунгицида Benlate .Appl Soil Ecology 61: 236–246.
  4. 4. Страндберг Дж. О. (1999) Влияние интенсивности света, обеспечиваемой различными уровнями затенения, на развитие антракноза папоротников. Доступно: http://mrec.ifas.ufl.edu/jos/SUNLIGHT.PDF. Доступ: август 2012 г.
  5. 5. Тамура К., Петерсон Д., Петерсон Н., Стечер Г., Ней М. и др. (2011) MEGA5: молекулярно-эволюционный генетический анализ с использованием методов максимального правдоподобия, эволюционного расстояния и максимальной экономии. Мол Биол Эволюшн 28: 2731–2739.
  6. 6. Клемент З., Фаркас Г.Л., Ловеркович Л. (1964) Реакция гиперчувствительности, вызванная фитопатогенными бактериями в табачном листе. Фитопатология 54: 474–477.
  7. 7. Кэмпбелл Дж. Н., Конн К., Сорли Л., Кук Ф. Д. (1986) Ингибирование роста рассады канолы, вызванное условно-патогенным штаммом Pseudomonas sp. в лабораторных и полевых условиях. Can J Microbiol 32: 201–207.
  8. 8. Гарднер Дж. М., Фельдман А. В., Заблотович Р. М. (1982) Идентификация и поведение бактерий, обитающих в ксилеме, в грубых лимонных корнях цитрусовых деревьев Флориды.Appl Environ Microbiol 43: 1335–1342.
  9. 9. González AJ, Rodicio MR, Mendoza MC (2003)Идентификация новой и атипичной линии Pseudomonas viridiflava , вызывающей бактериоз растений, имеющих агрономическое значение, в испанском регионе. Appl Environ Microbiol 69: 2936–2941.
  10. 10. Гордон С.А., Вебер Р.П. (1951) Колориметрическая оценка индолуксусной кислоты. Завод Физиол 26: 192–195.
  11. 11. Frankenberger WT Jr (1988) L-триптофантрансаминаза бактерии, выделенной из ризосферы Festuca octoflora (Graminae).Soil Biol Biochem 20: 299–304.
  12. 12. Okon Y, Vanderleyden J (1997) Связанные с корнями виды Azospirillum могут стимулировать растения. Новости ASM 63: 366–370.
  13. 13. Кремер Р.Дж., Сассвилл Д.Н., Миллс Х.А. (1996)Продвижение фитотоксических бактерий в ризосферах кожистого папоротника Бенлейтом Д.Ф. J Plant Nutrition 19: 939–953.
  14. 14. Баразани О., Фридман Дж. (2001)Аллелопатические бактерии и их влияние на высшие растения. Critical Rev Microbiol 27: 41–55.
  15. 15. Линдоу С.Е., Десурмонт С., Элкинс Р., МакГурти Г., Кларк Э. и др. (1998) Присутствие бактерий, продуцирующих индол-3-уксусную кислоту, на грушевых деревьях и их связь с красновато-коричневой окраской плодов. Фитопатология 88: 1149–1157.
  16. 16. Матезиус У., Малдерс С., Гао М., Теплицки М., Каэтано-Аноллес Г. и др. (2003)Обширные и специфические ответы эукариот на бактериальные сигналы восприятия кворума. ПНАС 100: 1444–1449.
  17. 17. Preston GM (2004) Восприятие растениями стимуляторов роста растений Pseudomonas .Phil Trans R Soc Lond B 359: 907–918.
  18. 18. Лопер Дж. Э., Хассан К. А., Дмитрий В. М., Дэвис Э. В., Лим К. К. и соавт. (2012) Сравнительная геномика видов Pseudomonas , ассоциированных с растениями: понимание разнообразия и наследования признаков, участвующих в мультитрофических взаимодействиях. Генетика PLoS 8: 1–27.
  19. 19. Берг Г. , Эберл Л., Хартман А. (2005)Ризосфера как резервуар условно-патогенных бактерий человека. Environ Microbiol 7: 1673–1685.
  20. 20.Лаасик Э., Андресен Л., Мяэ А. (2006) Чувство кворума типа II регулирует вирулентность Erwinia carotovora ssp. каротовора . Письма по микробиологии FEMS 258: 227–234.

Симптомы синдрома деформации папоротника в результате инокуляции условно-патогенной эндофитной флуоресцентной Pseudomonas spp.

Задний план: Синдром деформации папоротника (FDS) — серьезное заболевание папоротника Кожанолистного (Rumohra adiantiformis).Основным признаком ФДС является деформация листьев, что делает их непригодными для продажи. Дополнительные симптомы включают задержку роста, неравномерное спороношение, уменьшение диаметра корневища и внутреннее обесцвечивание корневища. Ранее мы сообщали о связи симптомов с увеличением популяций эндофитных корневищ флуоресцентных псевдомонад (FP). Цель текущего исследования состояла в том, чтобы определить, будут ли FP из папоротников в Коста-Рике с типичными симптомами FDS воссоздавать симптомы FDS.

Методология и выводы: Тепличные испытания проводились в течение 29 месяцев.Микроразмноженные папоротники, полученные из культуры тканей, сначала выращивали в течение одного года для получения корневищ. Затем, используя план эксперимента с рандомизированными полными блоками 8×9, 8 повторяющихся корневищ инокулировали путем погружения в 9 различных обработок перед посадкой. Обработка включала воду без бактерий (контроль) и четыре разные группы ФП, каждая в двух концентрациях. Четыре группы FP включали одну группу здоровых папоротников без симптомов (еще одна контрольная обработка), две группы, выделенные из корневищ симптоматических папоротников, и одну группу, выделенную из внутренних корней симптоматических папоротников. Симптомы оценивали через 12 и 17 мес, а популяции ФП внутри новообразованных корневищ определяли через 17 мес. Результаты показали, что инокуляция смесями ФП от папоротников с симптомами ФДС, но не от здоровых папоротников, воссоздает первичный симптом деформации вайи, а также вторичные симптомы неправильного спороношения, уменьшения диаметра корневища и внутреннего обесцвечивания корневища.

Выводы: Эти результаты предполагают модель причинно-следственной связи FDS, в которой симптомы возникают в результате латентных инфекций несколькими видами условно-патогенных эндофитных бактерий, содержащих гены вирулентности, которые экспрессируются, когда популяции внутри растения достигают минимального уровня.

Птеридиум — обзор | SCIENTIRECT TEMICS

Absinth, Artemisia Absinthium -4

акация, черный, Robinia Pseudoacacia -4

-4

Acacia, False, Robinia Pseudoacacia -4

Acacia Palida, Leucaena leucocephala -4

-4

Aconite, Aconitium Napellus -4

Acorn, Quercus SPP-1, 3

ADAM-Adam-Eve, Arum Maculatum -1, 2A

Африканская лилия, AGAPANTHUS SPP-1

SPP-1

Agapanthus, Pink, Nerine Bathdiii -3

Tree Alder, ALNUS SPP-1

Алламанда, розовая или пурпурная, Cryptostegia grandiflora —4

Алламанда, дикая, Urechites spp—4

90 006 Allium, Allium Sativum -1, 3

Alocasia, ALOCASIA SPP-2A

Aloe Vera, Aloe Barbadensis -1, 3

AlstroeMeria, Alstroemeria Aurantiaca -1 . -1

цветок аметиста, browallia SPP-1

анемон, анемона SPP-1, 3

22

Caladium -2A

Angelica, Angelica ArchangeLica —1, 4

Слезы ангела, Narcissus triandrus —1, 3

Труба ангела, Datura spp— 4

Антуриум, Антуриум SPP-2A

SPP-2A

Apple (жевательные семена), Malus SPP-4

Apple (жевательные семена), Pyrus Sylvestris -4

Apple , Бальзам, Momordica Balsamina -3

Apple of Peru, Datura Stramonium -4

Абрикос (жевательные ямы), Prunus Armiciaca -4

-4

Passiflora INCARNATA -4

Архангел, Angelica Archangelica -1, 4

-1, 4

Arnica, Arnica SPP-1, 4

Arrowhead Vine, Syngonium Podophylum -2A

Arum, Arum spp—1, 2a

Ясень американский, Fraxinus americana —1

Ясень европейский, Fraxinus excelsior

9032 STHMA завод или сорняки, Chamaesyce Hirta -1

22

Euphorbia Hirta -1

-1

22

Asthma Weed, Lobelia Inflata -1, 4

Atamasco Lily, Zephyrantes atamasco -1, 3

-1, 3

авокадо (листья, стебли, семена), Perstea americana -4

AZALEA, Rhododendron RUDUS-4

Baltic Ivy Hedera Hedix -1 , 3

Baneberry, ACTAEA RUBRA -1, 4

22

Барбадос Цветок, Caesalpinia Pulcherrima -3

-3

Barbados Pride, Caesalpinia SPP-3

Barbados Pride, Poinciana gilliesii —3

Барбарис, Berberis spp—4

Корзинка цветочная, Centaurea americana —1, 3

9

7 9 Baske T lily, hymenocallis americana -3

Будь еще дерево, TheVetia Peruviana -4

-4

Bean Bean, Cytisus Laburnum -4

Bean Tree, Laburnum SPP-4

Beech, European, Fagus Sylvatica -3

1127 22

Beech, Японский, Fagus Crenata -3

7

22

Beech, Декоративные, Fagus Sylvatica -3

Belladonna, Atropa Belladonna -4

-4

Belladonna Lily, amaryllis Belladonna -3

22

Calystegia Sepium -1, 3

Bird of Paradise, Caesalpinia Gilliesii -3

рай, Poinciana gilliesii —3

Плющ обыкновенный, Hedera helix —1, 3

Епископ сорняк, Ammi maju S -1

-1

Bitter Almond, PRUNUS DULCIS -4

горький оранжевый, цитрусовых Arrantium -1

22

черный Cohosh, Cimicifuga Racemosa -4

Черноглазых Сьюзен, Abrus Pracatorius -4

Rudbeckia Hirta -1

22

Черный Henbane

-4

-4

22

черный дуб, кверкуса Velutina -1, 3

Кровотечение сердца, Dicentra Formosa -1, 4

-1, 4

цветок крови или кровь Лилий, Haemanthus Coccineus -3

-3

-3 Sanguinaria Canadensis -3

Blue Blue Bonnet , Lupinus spp—4

Пуговицы синие, Vinca major —4

Циполистник, Caulophyllum thalictroides —1, 4 90 009

Blue Globe Tree, Eucalyptus Globulus -3

Boston Ivy -2a, 2b

-2a, 2b

Bougainvillea, Bougainvillea SPP-1

Box Thorn, Lycium Halimifolium -4

Boybookwood, Buxus Sempervirens -1, 4

22

Bracken Fern, PteriDium AquiLinum -4

22

Bradford Груша, Pyrus Calleryana -1

Beatfruit , Monstera deliciosa -2a

-2a

27 Chrysanthemum SPP-1, 3

метла Bush, Retama Raetam -4

Buckeye, Aesculus SPP-3

Облепиха, Osmunda cinnamomea —3

Облепиха, Karwinskia humboldtiana —4

Buckth Orn, Rhamnus Cathartica -4

-4

, Dictamnus Albus -1

22

сжигание куста, Euonymunt Atropurpurea -3

-3

сжигание куста, Kochia Scoparia -1, 2A, 2b

Buttercup, Ranunculus SPP-1, 3

27 IRIS SPURIA -1, 3

Butterfly Weed, Asclepias Tuberosa -4

Butternut, Juglans cinerea -1

Caffre Lily, CLIVIA MINIATA -3

-3

Caladium -2a

Caladium, Colocasia esculenta -2a

Calico Цветок, Aristolochia elegans —4

Калифорнийский конский каштан, Aesculus californica —3

Калифорнийский живой дуб, Quercus agrifolia 900 08 -1, 3

Calla Lily, Zantedeschia SPP-2A

Calycanthus (семена), Calycanthus SPP-4

ромашки, генюмис COTULA -1

Camphor Дерево, Cinnamomum Camphora -4

Camus, белый, зигаденус Elegans -4

-4

22

свеча ягоды, алейуритов MOLUCCANA -1, 3

Свеча сенлы, SENECIO ARTICULATUS — 4

Skideberry, Myrica Cerifera, -1

-1

22

Jatropha Moluccana -1, 3

Дерево подсветки, Jatropha Moluccana -1, 3

Масло подсветки дерево, Aleurites moluccana —1, 3

Капская белладонна, Amaryllis belladonna —3

Кардинал, Lobelia ca rdinalis -1, 4

-1, 4

гвоздика, Dianthus SPP-1

CAROLINA ALLPICE (семена), Calycanthus SPP-4

Carolina Jasmine, Gelsemium Sempervirens -1, 4

CAROLINA JESSAMINE, GELSEMIUM SEMPERVIRENS -1, 4

7

COCCULUS CAROLINAUS -4

CAROLINA Pink, SPIGELIA MARILANDICA -4

CAROLINA WILD WOLDBINE, GELSEMIUM SEMPERVIRENS -1, 4

-1, 4

27

Caroline Yellow Jessamine, GELSEMIUM SEMPERVIRENS -1, 4

-4

-4

22

Cassava, Jatropha Manihot -4

Касторовая фасоль, Ricinus communis —4

Кошачья мята, Nepeta cataria —3

Кошачий клещ aw, pithecellobium unguis-cati -1

22

2 euphorbia drummondii -1, 3

Cayenne Pepper, Capsicum SPP-1, 3

7

Cedar, Juniperus Virginiana -1, 3

70327

века, агавы americana -1, 3

27

Cestrum -4

-4

Chalice Vine, Solandra Longiflora- 4

ромашка, генюмис Cotula -1

Chapparal Lait, Larrea Tridentata -4

-4

Chenille завод, Acalypha Hispida -1, 3

Cherry (жевательные ямы), Prunus spp—4

Лавр вишневый, Laurocerasus officinalis —4

Лавр вишневый, Prunus laurocerasus —4

903 PER, CAPSICUM SPP-1, 3

SPP-1, 3

Cherry Tomato (зеленые детали), Lycopersicon Lycopersicum -4

-4

Cherry Tomato (зеленые части), Phangalis Peruviana -4

Cherry, Горький (жевательные семена), Prunus Emarginata -4

Cherry, Wild (жевательные семена), Prunus Serotina -4

Chicken Crained, Euphorbia Thymifolia -1

Chili Pepper, capsicum spp-1, 3

Melia Azedarach -4

27 22

китайский фонарь, ABUTILON HYBRIDUM -1

китайский завод на фонаре, Phashalis Alkekengi -4

Сало китайское, Sapium sebiferum —1, 3

Арония арония (жеваные семена), Prunus virginiana —4

Рождественская ягода (листья ES), Photinia arbutifolia -4

рождественские ягоды, Schinus Terebinthifolius -1

22

рождественские свечи, эйтималоидов (ранее PEDILANTHUS SPP) -1, 3

Orange, Solanum Capsicastrum -4

Рождественская роза,

-4

Chrysanthemum, Chrysanthemum

SPP-1, 3

Cinnamonwood, Sassafras SPP-4

Citronella Trass, CymboPogon Nardus -1

SPP-1, CLEMATIS SPP-1, 3

Клевер, розовый, Dianthus Caryophyllus -1

Клевер, сладкий белый, Melilotus Alba —4

Клевер сладкий желтый, Melilotus officinalis —4

Буревестник, Xanthiu M SPP-1, 3

кофе в зернах, Sesbania Vesicaria -4

-4

дерево кофе, Polyscias Guilfoyei -1, 3

Chumberry, Rhamnus Californica -3

Cohosh, actaea spicata -1, 4

-1, 4

Cola гайка, COLA Nitida -4

-4

Colchicine, Colchicum Осенняя 120006 -4

-4

Colocasia, Colocasia esculenta -2A

Comfrey, Symphytum Offrey -4

22

Coral Bear, COCCULUS CAROLINUS -4

Coral Bean, эритрина SPP-4

Coral Berry, Rivina Humilis -3

Коралловые ягоды, Symphoricarpus spp—3

Коралловые растения, Jatropha multifida —4

Coralberry, 9000 7 actaea spicata -1, 4

-1, 4

Coriaria, Coriaria

SPP-4

кукурузной лилии, Veratrum SPP-4

Cotoneaster, Cotoneaster SPP-4

корова Петрушка, heracleum spхontylium -1

коровяной пастернат, Herclemum Spхontylium -1

Cowbane, Cicuta Maculata -4

CICOWLIP, CALTHA PALUSTRIS -1, 3

COWSLIP, Primula Veris -1

Malus (жевательные семена), Malus Baccata -4

-4

CrabApple (жевательные семена), Pyrus Sylvestris -4

Crabapple, цветение, Malus ioensis —4

Яблоня декоративная (жеваные семена), Pyrus floribunda —4

Ползучая чарли, Glechoma hederacea -3

ползучая Чарли, Nepeta Hederacea -3

22

Creosote Bush,

Tridentate -4

Крокус, осень, Colchicum Осенняя осень -4

крокус, падение , Colchicum Осец -4

Crotalaria, Crotalaria Spectabilis -4

Croton, CODIAUM SPP-1

Croton, Croton Tiglium -1, 4

Crown Thorns, Euphorbia Milii -1, 3

-1, 3

Crown Crown, Calotropis Gigantea -4

Crown Vetch, Coronilla Varia -1

22

Жестокое растение, Araujia Sericifera -1 , 3

Табак культурный, Nicotiana tabacum —4

Щавель курчавый, Rumex crispus —1, 2b

900 06 Cycads, Cycadaceae Family-4

Cycads, ZAMIA SPP-4

Cycas, Cycas SPP-4

Cycas, ZAMIA SPP-4

Cyclamen, Cyceramen SPP-3

SPP-3

Cyperus, Cyperus SPP-4

нарцисс (лампочка), Narcissus SPP-1, 3

7

Daisy, Chrysanthemum SPP-1, 3

Daphne, Daphne Mezereum -1, 4

27

Datura, Datura SPP-4

День Цветущий Cestrum, Cestrum Dirrunm -4

День Цветущий Джессамин, Cestrum Diurnum —4

Пальцы мертвеца, Oenantha crocata —4

Болиголов смертоносный, Conium maculatum —4

2

Ночной смертоносный 08 -4

Смертный Nightshade, Solanum SPP-4

Death Camus, ZigAdenus

или Zygadenus SPP-4

Delphinium, Delphinium SPP-4

пустыня Rose, Adenium Obesum -4

-4 Datura Stamonium -4

27

2

Devil’s Backbone, Kalanchoe Daigremontianiana -4

-4

PEDILANTHUS Титималоиды -1, 3

Devil’s Bit, Chamaelrium Luteum -3

27 22

22

27 Clematis Virginiana -1, 3

IVY

-2A

IVY, Scindapsus aureus —2a

Дьявольский язык, Amorphophallus rivieri —1, 2a

Дьявольское яблоко, 900 07 Datura Stramonium -4

Devil’s Apple, Solanum Dulcamara -4

-4

Euphorbia Tithymaloides -3

27 22

Devil’s табак, Lobelia TUPA -4

Tomato, Solanum EleaGnifolium -4

-4

22

-4 Datura Stramonium -4

-1, Ariisaema Triphyllum -1, 2A

Dieffenbachia, Dieffenbachia SPP-2A

Dock, Rumex SPP-2B

27

Собака, -1

COTULA -1

Dogwood, Bloodtwig, Крунус Sanguinea -1

Dolls-Eyes, Actaea Spicata — 1,4

Ослиный хвост, Euphorbia myrsinites —1,3

Драконья лилия или драконовое растение, Дракункул US VULGARIS -2A

ROOD DRAGON, ARISAEA SPP-2A

22

Дракон хвоста, Ariisaema Dracontium -2A

DRACT DRACT DIEFFENBACHIA SPP-2A

ганч, Dieffenbachia SPP-2A

SPP-2A

Dusty Miller, SENECIO SPP-4

пасхальный цветок, анемона патентов -1, 3

пасхальная роза, Helleborus Niger -4

Восточный яд Дуб, Rhus Quercifolium -1

22

Восточный яд Дуб, Токсикодендрон Керсифолий -1

-1

Elderberry (все, но спелые ягоды), Sambucus SPP-3

слон чеснок Allium ampeloprasum —1, 3

Филодендрон слоновий, Philodendron hastatum —2a

Слоновий f OOT, Slephantopus Scaber -4

Ухо слона, Alocasia -1, 2A

27

Ухо слона, Caladium -2a

Ухо слона, Colocasia esculenta -2A

Английский Холли, ILEX SPP-3

English Laurel, Laurocerasus Officinalis -4

-4

English Laurel, Prunus Laurocerasus -4

English Yew, Taxus Baccata -4

Eucalyptus, Eucalyptus Globulus -3

Euonymus SPP-3

False Jerusalem Cherry, Solanum Capsicastrum -4

Ложная петрушка, Atheusa Cynapium -4

Ложная петрушка, Cicuta maculata —4

Ложная пуансийская, Daubentonia punicea 900 08 -4

False PoIniana, Sesbania Puniedea -4

Make Maeque -1 AMMI MAJUS -1

22

FIRDLE Flower, Euphorbia Tithymaloides -3

Fiddleflower pedilanthus tithymaloides -1, 3

-1, 3

Siddleheads, osmunda Cinnamonea -3

FiddLeleaf PiloDendron, Филодендрон Bipennifolium -2A

FILBERT, CORYLUS SPP-1

Завод крекера, Aesculus Pavia -3

Fire Fern, Oxalis SPP-2B

Огонь Lily, Hippeastrum Amaryllis -3

Огненный шар или Firebush, Kochia Scoparia -1, 2a, 2b

Огненный дракон, Acalypha wilkesiana —3

Пальма рыбий хвост, Solanum aculea TINGIMIMIM -4

Флаг, IRIS SPP-1, 3

SPP-1, 3

Флаг Лилия, IRIS Versicolor -1,3

Flamingo Цветок, Антюриум Scherzeranum- 2A

Flak, linium spp-4

Irus Germanica -1, 3

22

Цветущий миндаль, Prunus SPP-4

Цветущая вишня, Prunus SPP -4

Цветущий Crabapple (жевательные семена), Malus IOensis -4

27

Цветущий Crabapple (жевательные семена), Pyrus Ioensis -4

Цветущий клен, ABUTILON HYBRIDUM -1

Слива цветущая, Prunus cerasifera «atropurpurea»— 4

Летающие тарелки, Ipomoea tricolor —4

2 Atropurpurea

Foethus

-4

четыре часа (семена), mirabilis Jalapa -1, 3

22

Foxglove, Digitalis Purpurea -4

Foxtail, Acalypha Hispida -1, 3

Foxtail, EquiseTum SPP-4

7

аромат ночи, Cestrum Nocturnum -4

Fraxinella, Dictamnus Albus -1

фруктовый салатный завод, Monstera Deliciosa -2А

Гирлянда цветок, DAPNE CNEORUM -1, 4

27

чеснок, Allium Sativum -1, 3

Gelsemium, Gelsemium Sempervirens -1, 4

Geranium , Калифорния, Senecio petasitis— 4

Герань бархатная, Senecio petasitis —4

Гинкго, Гинкго двулопастный 9007 —30 4, 904 322

Гинкго Билоба, Гинкго Biloba -1, 4

-1, 4

Ginseng, Panax Pseudoginseng -4

-4

Llacier Lily, эритрониум Grandiflorum -1, 3

— 3

Gloriosa Lily, Gloriosa Superba -4

Glory Lily, GLORISA SUPERBA -4

золотые кнопки, Tanacetum Vulgare -1, 3

Golden Pothos, Epipremnum Aureum -2A

-2A

Golden Pothos, Scindapsus aureus -2A

Golden Ragwort, SENECIO AUREUS -4

Golden Rain, CASSIA SPP-3

Золотая печать , Hydrastis canadensis —4

Лист или растение удачи, Oxalis deppei —2b

Растение суслика, Euphorb Ia lathyrus -1, 3

Gordoloba, ACHILLEA MILLEFORIUM -1, 3

GOTU KOLA, Hydrocotyle SPP-1, 4

Зеленый дракон, Ariisaema Dracontium -2A

Green Dragon, Datura Stramonium -4

Green Verlebore, Veratrum VeriDe -4

зеленые рябь, Hedera Hedix -1, 3

Habanero Pepper, Capsicum SPP-1, 3

Гавайских Детских Детских Вудроза (Семена), Аргирей Нервоза -4

22

Гавайский Мак, Аргемон Glauca -4

Гавайский колючий мак, Argemone Glauca -4

Гавайская древовидная роза, Мерремия тубероза —4

Лесной орех, Corylus spp—1

Целебный лук, 9000 Udatum -1, 4

-1, 4

Bicolor -2A

Bicolor -2A

Hearts и Mody Vine, IPomoea × Multifida -4

Heath / Heather, Calluna vulgaris -4

небесный синий, Ipomoea SPP-4

Heliotrope, Heliotropium SPP-4

Mellebore, Helleborus Niger -4

Verlebore, VeraTrum VeriDe — 4

HHLAS Bells, Datura Stramonium -4

22

цветок шлем, ACONITIUM NAPELLUS -4

Hemblock, Conium Maculatum -4

-4

Hemblock, яд, —4

Болиголов пятнистый, Cicuta maculata —4

Болиголов пятнистый, Conium maculatum —4

9032

Hemlock, вода, Cicuta Maculata -4

SPP-4

Холли (Берри), ILEX SPP-3

Hop, Common, HUMULUS LUPULUS -1

хоп, европейский, гумулюс lupulus -1

Hops, Wild, BRYONIA SPP-3

HORD-of-TOLE, DATURA SPP-4

Конский каштан, Aesculus SPP-3

22

лошадь яда, гиппообрута Longiflora -4

SPP-Willow, Equisetum SPP-4

Horseradish, Armoracia Rusticana -3

Hossetail, Equisetum SPP-4

Гиацинт (лампочка), Гиацинт Orientalis -1, 3

Гортензия

SPP-4

900 06 Hypericum, Hypericum Perforatum -1, 3

22

Decurnens -1

-1

Indian Aloe, Aloe Barbadensis -1, 3

Индийское Apple, Datura Inoxia -4

Индийский бусин или бобы, ABRUS PROCATRIUS -4

Индийская фасоль, эритрина

SPP-4

Индийская смородина, Symphoricarpos SPP-3

Индийская краситель Гидрастис Canadensis -4

27

Индийская краска, CHENOPODIUM CAPITATUM -1

Индийская краска, Гидрастис Canadensis -4

Индийская кисть, Asclepias spp—4

Индийская розовая, Dianthus chinensis —1

Индийская Pink, Lobelia Cardinalis -1, 4

-1, 4

22

Индийские розовые, SPIGELIA MARILANDICA -4

22

Indian Poke, Phytolacca Acinosa -3

Indian Poke, VeraTrum Viride -4

Индийская резиновая лоза, Cryptostegia Grandiflora -4

индийский табак, , 4

22

Inkberry (Pokeweed), Phytolacca americana -3

IPomea, Exogonium Purga -3

Iris, IRIS

SPP-1, 3

SPP-1, 3

Irish Shamrock, OXALIS Acetosella -2B

Irish Tops, Cytisus Scoparius -3

Irish ботва, Spartium scoparium —4

Железное дерево, Cassia siamea —4

Арум итальянский, Arum italicum —2a 9 0009

плющ, Hedera SPP-1, 3

SPP-1, 3

плющный куст, Kalmia Latifolia -4

22

плющ, алжир, Hedera Canariensis -1

плющ, Балтик, Hedera helix -1, 3

27

плющ, Калифорния, Hedera Helix -1, 3

7

Hedera Canariensis -1

-1

Avy, Common, Филодендрон Скандинс — 2a

IVY, английский, Hedera Helix- 1, 3

IVY, MaDira, Hedera Canariensis -1

PhiloDendron Scandens -2A

IVY , Вода, SENECIO MIKANIIDIDIDIDES -4

22

Джек-в-The-The-The-The-Pulpit, Ariisaema Triphyllum -1, 2A

7

Jaggery Palm, Caryota Urens -1, 2A

Jalapeno PE PPER, Capsicum SPP-1, 3

SPP-1, 3

японских абрикосов, Prunus Mumum -4

22

японская aucuba, Aucuba japonica -3

японское дерево из бисера, Melia Azedarach -4

японские цветущие абрикос, Prunus Mumum- 4

4

SPP-4 Prunus SPP-4

Японский фонарь

-4

-4

Японских ларелей, Aucuba japonica -3

японская пагода дерево, Sophora japonica -4

японская слива (семена), эриоботрия japonica -4

-4

Жасмин, французский, Calotropis Procera -4

Жасмин ночной, Cestrum nocturnum —4

Жасмин поэтический, Jasminum officinale —1

Жасмин, Желтый, Гелсемиум Sempervirens -4

Jequirety Bean, Abrus Pracatorius -4

22

Иерусалим Cherry, Solanum Pseudocapsicum -3

Джессамин, День, Cestrum Diournum -4

Джессамин, День Цветущий, Cestrum Diurnum -4

Джессамин, Ночь Цветущий, Cestrum Nocturnum -4

Джессамин, поэт, Джейминум Officinale -1

Jessamine, Yellow, Gelsemium sempervirens -1, 4

Jimson Weed, Datura Stramonium- 4

4

Джонни прыгают (только семена), Viola Cornuta -3

Juniper, Juniperus spp—1, 3

Kaffir lily, Clivia miniata —3

Kaffir-boom, Erythrina s PP-4

Kalo Nut, Aleurites Fordii -1, 3

-1, 3

27

Klamath Weed, HyceriCum Perforatum -1, 3

7

Кольской гайки, Cola Nitida -4

Laburnum, Laburnum SPP-4

лак дерево, Rhus Verniciflua -1

-1

27

Lacquer Tree, токсикодендрон Vernicifluum -1

Lady Tailler, Cypripedium SPP-1

лет ночи, Brunfelsia americana -4

леди,

esculentus -1

Lady’s Lace, AMMI MAJUS -1

Madey’s Tailler, Cypripedium spp—1

Туфля обыкновенная, Pedilanthus tithymaloides —1, 3

Щавель обыкновенный, Oxalis 902 7 3009 9008 900 2b Кварталы ягненка, Chenopodium альбом -1

22

27 Lantana Camara -4

-4

SPP-4, SPP-4

Laurel, Kalmia Angustifolia -4

Laurel , отлично, Rhododendron максимум -4

Laurel, индийская (семенное ядро), калофиллум INophyllum -3

Laurelwood (семян ядра), калофиллум INOPHYLLUM -3

кожаный цветок, Clematis SPP-1, 3

Лимон (Ceels and Thorns), Citrus Limon -1

Лимон, Wild, Подофиллум Peltatum -1, 4

Лентун Роуз, Helleborus spp—4

Леопардовая лилия, Dieffenbachia spp—2a

Леопардовая пальма, Amorphophallus rivieri —1, 2a

9

Leopard’s Bane, ARNICA MONTANA -1, 4

22

27 22

GLABRA -4

-4

22

Vine солодки, ABRUS Pracatorius -4

22

солодка, индийская, ABRUS Pracatorius — 4

солодки, WILD, ABRUS PROCATRIUS -4

Lily of Incas, ALSTREEMERIA AURANTIACA -1, 3

Lily of NiLe, AGAPANTHUS SPP-1

Лили дворца, Hippeastrum auliceum -3

Lily, Arum, Zantedeschia aethioPica -2a

Lily, черный, Dracunculus vulgaris -2A

Лилий, свинья, Zantedeschia aethiopica —2a

Лилия трубчатая, Zantedeschia aethiopica —2q

Ландыш, Convallaria majalis 8 —4 —4 009

Куст или кустарник ландыша, Pieris japonica —4

Куст или кустарник ландыша, Andromeda japonica —4

Thorns), Citrus Aurantiifolia -1

-1

Linium SPP-4

Lion’s Beard, Anemone Nuttalliana -1, 3

Liquorict, глицирризов Glabra -4

Live Oak, Quercus Virginiana -1, 3

-1, 3

SPP-1, 40007 Lobelia SPP-1, 4

сорняки локона, Datura Stramonium -4

Locoweed, Astragalus SPP -4

LocoWeed, Cannabis Sativa -4

Locoweed, фиолетовый, Oxytropis LAMBERTII -4

LocoWeed, безздоровый, Oxytropis Lambertii -4

LocoWeed, White, Oxytropis Lambertii -4

саранча, черный или желтый, Robinia Pseudoacacia -4

22

Loquat (семена), Eriobotrya japonica -4

Дамы, Arum Maculatum -1, 2A

-1, 2A

Love Apple (зеленые части), Lycopersicon Lycopersicum -4

Love Bean, ABRUS Pracatorius -4

Love-In-A- Туман, Nigella Damascena -3

Lucky Bean, Abrus Pracatorius -4

-4

-4

Lupine, Lupinus SPP-4

MA HUANG, EPHEDRA SPP-4

MACE, Myrustera Fragrans -4

Maidenhair Дерево

Biloba -1, 4

мкл

м Alabar Tree, Euphorbia Tiirucalli -1, 3

-1, 3

Мандарин Оранжевый (Ceels and Thorns), цитрусовых Nobilis -1

-1

Mandrake, Подофиллум PELTATUM -1, 4

Мраморная королева , Epipremnum Aureum -2A

Scindapsus aureus -2a

Marguerite, хризантема Frutescens -1, 3

Marigold, Big, Tagetes Erecta -1

Marmalade Bush, стрептосолен Jamesonii -4

27

болотный хвощ, Equisetum Palustre -4

Marsh Marsh Marigold, Caltha Palustris -1, 3

MAIT-IF- IF- you-can, Acalypha wilkesiana —1

Mate, Ilex paraguariensis —3

Брачная лоза, Lycium halimifolium -4

Mauna Loa, Spathiphyllum SPP-2A

27

-1, 4

Meadow Crocus, Colchicum Осень 120008 -4

луговой шафран, COLCHICUM TEALLEALE -4

MEDINAL ALOE, ALOE BARBADENSIS -1, 3

Медицина, ALOE SPP-1, 3

MESCAL, LOPHOPHORA WILLIAMSII -4

MESCAL (не путать с Lophophora Williamsii -peyote), Agave Uthaensis -1, 3

Mescal Bean, Sophora Secundiflora -4

-4

MESCAL, Lohophora WilliaMsii -4

Мескитовый, Прозопис железистый —1

Мексиканская райская птица, Caesalpinia mexicana —3

900 06 Мексиканский хлебфрукт, Monstera Deliciosa -2A

27

Mexican Batterfruit, Филодендрон Pertusum -2A

Mexican Fireweed, Kochia Scoparia -1, 2A, 2B

Мексиканская винограда, SENECIO confusus -1

-1

Мексиканский хвощ, Equisetum SPP-4

Mexican Colving Poppy, Argemone Mexicana -4

7

-4

Мексиканский чай, CHENOPODIUM AMBROSIDES -3

Мексиканский чай , EPHEDRA SPP-4

7

Meyer Lemon (Ceels and Thorns), Citrus Meyeri -1

-1

22

Milk Barrel, Euphorbia SPP-1, 3

Молочный куст, Euphorbia Tiirucalli —1, 3

Портулак молочный, Chamaesyce maculata —1

Портулак молочный, Euphorbia maculata —1

Milk Weed, Chamaesyce Drummondii -1

Milkweed, Asclepias

SPP-4

Milkweed, Euphorbia Drummondii -1, 3

Miner’s Tea, EFHEDRA SPP -4

Mistletoe, American, Phoradendron flavescens -3

27 Viscum альбом -3

Moccasin Цветок, Cypripedium SPP-1

Mock Orange, Citrus Trifoliata -3

-3

Mock Orange, Laurocerasus Caroliniana -4

-4

-3 Poncirus Trifoliata -3

Mock -4

-4

фасоль, Ricinus communis —4

Кротовина, Euphorbia lathyris —1, 3

Пн Lisa, Codiaeum SPP-1

Monkshood, ACONITUM NAPELLUS -4

22

22

Moon, Lophophora WilliaMsii -4

Moon Weed, Datura Stramonium -4

Moonflower, Datura Inoxia -4

Moonflower, IPomoea ALBA -1

-1

Moonflower, Purple, iPomoea Muricata -4

Moonseed, Menispermum SPP-1, 4

Мормон Чай, EFHEDRA SPP-4

Утренняя слава (семена), IPomoea SPP-4

Утренний полдень — ночь, Brunfelsia SPP-4

Мать Тещина, Caladium —2a

Тещина, Dieffenbachia seguine —2a

Тещин язык, Dieffenbachia spp. 8

Mountain Ivy, Kalmia Latifolia -4

22

Mountain Laurel, Kalmia Latifolia -4

-4

Горный табак, Arnica Montana -1, 4

7

Mum, Chrysanthemum SPP-1, 3

Nicotiana Glauca -4

Myrtl, Vinca Minor -4

-4

Таинственный завод, Daphne Mezereum -1, 4

голые Мальчики, colchicum Осеньлал- 4

4

22

Голая леди, amaryllis Belladonna -3

Narcissus, Narcissus SPP-1, 3

Nectar богов, Allium Sativum -1 , 3

Нектарин (жеваные косточки), Prunus persica —4

Игольчатый плющ, Hedera helix —1, 3 9yph

7 Ne TIS, Syngonium Podophyllum -2A

нервных корня, Cypripedium SPP-1

-1

-1

-1

Urtica SPP-1

Nicotiana, Nicotiana SPP-4

ночь Цветущий Жасмин, Cestrum Nocturnum -4

ночь Цветущий Jessamine, Cestrum Nocturnum -4

-4

Nightshade, американец, Phytolacca Americana — 3

Nightshade, Black, Solanum Nigrum- 4

4

Nightshade, Blue, Solanum Dulcamara -4

-4

Nightshade, восхождение, Solanum Dulcamara -4

Nightshade , Solanum nigrum —4

Паслен смертельный, Solanum dulcamara —4

Ночь TSHAD, ядовитый, Solanum Dulcamara -4

22

Nightshade, вонючий, HYOSCYAMUS NIGER -4

22

Nightshade, Woody, Solanum Dulcamara -4

Nighshade, yellow, Urechites SPP -4

Noah’s Ark, Cypripedium SPP-1

Nutmeg, Myrustera Fragrans -4

мускатный орех -1, 3

Огайо Buckeye, Aesculus Glabra -3

22

Oleander, Nerium Oleander -4

Олеандр, желтый, Thevetia Peruviana -4

лук (большой количество), Allium cepa —1, 3

Лук репчатый, дикий, Allium cernuum —1, 3

Апельсин (кожура и шипы), Citru s sinensis -1

Оранжевый корню,

Canadensis -4

Орхидея, Леди Тайка, Киприпед SPP-1

Орегон Crabapple (жевательные семена), Malus Fusca -4

Орегон Холли, Ilex SPP-3

Восточная слива, Гинкго Билоба -1, 4

27

Восточный мак, Papaver Reartale -3

Декоративная вишня (жевательная SEEDS), PRUNUS SPP-4

7

Декоративные Crabapple (жевательные семена), Malus Floribunda -4

Декоративные крабов (жевательные семена), Pyrus Floribunda -4

Декоративные цветущие сливы , Prunus cerasifera “atropurpurea” —4

Никотиана декоративная, Nicotiana longiflora —4

Груша декоративная, P YRUS SPP-1

SPP-1

декоративный перец, Capsicum SPP-1, 3

22

декоративный перец, Solanum Pseudocapsicum -3

декоративные сливы (жевательные семена), Prunus SPP-4

OXALIS,

OXALIS, OXALIS SPP-2B

Palm, Fialtail, Caryota Misit -1, 2A

Palma Christi, Ricinus Communis -4

Panda Plant, Филодендрон Bipennifolium -2a

-2A

Pansy (только семена), AILA TRICOLOR -3

бумажный цветок, Bougainvillea SPP-1

бумажный завод, Cyperus Papyrus -4

Бумажный белый нарцисс, Narcissus tazetta —1, 3

Бумажная кора, Melaleuca spp—1

Папирус, Cyperus papyrus 900 08 -4

Рая Рая, Daphne Mezereum -1, 4

-4 Melia Azedarach -4

-4

22

Paraguay чай, ILEX PARAGUARIENSIS -3

Пальлор плюща , SENECIO MIKANIIDES -4

-1

-1

петрушка, пятнистые, Cicuta Maculata -4

Parsnip (все, кроме корня), Pastinaaca Sativa -1

Parsnip, Poison, Cicuta Maculata -4

Parsnip, Wild, Cicuta Maculata -4

-4

Pasque Flower, анемона Patens -1, 3

страсть Passiflora caerulea —4

Маракуйя, Passiflora edulis —4

Пассифлора, Passiflora spp. — 9

322

Спасаясь, Passiflora SPP-4

Pea, Everlasting, Lathyrus SPP-4

2

горошек, трава, Lathyrus Sativus -4

горошек, приморский, Lathyrus Japonicus -4

Мир Лили, Spathiphyllum SPP-2A

SPP-2A

Prunus Prunus Chertica -4

Павлин Цветок, Caesalpinia Pulcherrima -3

Разжеванные семена), Pyrus Communis -1,4

Pearly Gates, IPomoea SPP-4

пекан (пыльца и ореховое масло), Carya Illinoinensis -1

кактус карандаша или Карандашное дерево, Euphorbia Tiirucalli -1, 3

22

7

Mentha Pelegium- 4

4

Pennywort, Hydrocotyle SPP-1, 4

peony, Peoonia officinalis -1, 4

-1, 4

22

Peony, дерево, Paeonia SURFRUTICOSA -1, 4

перца Bush, Croton Humilis -1

-1

перца, Schinus Molle -1, 3

перца, Белл, Capsicum SPP-1, 3

SPP-1, 3

перца, сладкий, Capsicum SPP-1, 3

Pepper, Tobasco, Capsicum SPP- 1, 3

Periwinkle, VICSA ROSEA -4

Periwinkle, Madagascar, Canthanthus Roseus -4

Periwinkle, Rose, Catharanthus Roseus -4

Персидская сирена Melia Azedarach -4

перуанская лилия, Hymenocallis Americana -3

22

Peyote, Lophophora Williamsii -3

Филодендрон, P Hilodendron SPP-2A

SPP-2A

Филодендрон, Гигант, Филодендрон в Gigantum -2A

Филодендрон, Лист сердца, Филодендрон Scandens -2A

Филодендрон, Сплит Лист, Филодендрон: 2A

Photinia Arbutifolia (листья), Photinia arbutifolia -4

22

SPP-1, RHEM SPP-1, 2B

Pigeon Berry, Duranta Repens -1, 4

Pigeon Berry, Phytolacca Americana -3

27 RIVINA HUMILIS -3

22

Pimento, Capsicum SPP-1, 3

Pinkroot, SPIGELIA MARILANDICA -4

Гвоздики, Dianthus spp—1

Слива (жеванные семена), Prunus domestica —4

Podoc ARPUS (не путать с Taxus SPP), Podocarpus Macrophyllus -3

Caesalpinia SPP-3

POINGIANA, POINGIANA GILLIEIII -3

Poison Berry, Solanum Nigrum -4

ядовитый Буш, Acokanthera SPP-4

Roison Camus, зигаденус Nuttallii -4

-4

7

22

Craind Creeper, токсикодендрон SPP-1

Poison Dovodood , токсикодендрон Vernix -1

Poison Elder, токсикодендрон Vernix -1

Roison Flag, Iris Versicolor -1, 3

27

Poison Hemblock, Conium Maculatum -4

Плющ ядовитый, Rhus spp—1

Плющ ядовитый, Toxicodendron radicans —1

P Орех Ois, Strychnos Nux-Vomica -4

Toxicodendron SPP-1

Point Parsley, Conium Maculatum- 4

Parsnip, Cicuta Maculata -4

Poison Sumac, токсикодендрон Vernix -1

-1

Poison TOBACCO, HYOSCYAMUS NIGER -4

-4

Poison Vine, Rhus SPP-1

Radicans Vine, Токсикодендрон Radicans -1

Pois Water Hemlock, Cicuta Douglasii -4

Poke Berry, Phytolacca americana -3

Poke Salad Salad, Phytolacca SPP-3

Pokeweed, Phytolacca americana —3

Хорек сорный, Symplocarpus foetidus —2a

Polyscias, Polyscias g UILFOYEI -1, 3

-1, 3

мака, обыкновенные, папавер Somniferum -3

Popy, сад

-3

22

мак, опиум, папавер Somniferum -3

Мак, Восточные, Papaver Orientale -3

70327

Solanum Tuberosum -4

-4

картофеля, Solanum Jasminoides -4

Pothos, Epipremnum aureum -2a

-2a

пот Горох или фасоль посевная, Abrus precatorius —4

Лук беременный, Ornithogalum caudatum —1, 4

Мак опунционный, Argemon E Mexicanana -4

Гордость Барбадоса, Caesalpinia Pulcherrima -3

-3

Гордость Китая, Melia Azedarach -4

Гордость Индии, Melia Azedarach -4

Гордость MaDira, ECHIM SPP-4

Primrose, Primula vulgaris -1

Primula, Primula SPP-1

Привет, Ligustrum Vulgare -3

Privet, California, Ligustrum Californicum -3

Ligustrum Ovalifolium -3

22

фиолетовый лист сливы, Prunus Cerasifera «Atropurpurea» -4

-4

Pussy oep, Eupatorium conyzoides —3

Кружево королевы Анны, Daucus carota —1

Восторг королевы, Stillingia 90 008 SPP-1

Кружева Queen’s, Daucus Carota -1

Queen’s Root, Metingingia Sylvatica -1

Radish, китайский (листья), Raphanus Sativus -1

Ragweed, Ambrosia Artemisiifolia -1

22

Ragwort, Tansy, SENECIO Jacobaea -4

Rain Flower, Grevillea Banksii -1

Rain Lily, Zephyrantes atamasco -1, 3

Дождевое дерево, Brunfelsia Undulata -4

27

-3

-3 Samanea Saman -3

22

Rainbow Pink, Dianthus Chinensis —1

Ranunculus, Ranunculus spp—1, 3

Rattlebox, Crotalaria spectabilis —4

потросистые коробки, Daubentonia Punicea -4

Sesbania Punizea -4

Red Hot Cat Cat Cat, Acalypha Hispida -1, 3

Red Hot Poker Tree, эритрина Abyssinica -4

красные чернила, Phytolacca Americana -3

красный корня, Ceanothus americanus -3

красный корня, Sanguinaria Canadensis -3

Red Spurge, Euphorbia Cotinifolia -1, 3

-1, 3

Red Squiell, urginea Maritima -4

Redberry, Arctostaphylos UVA-URSI -1, 4

Redberry, Panax Quinquefolius -4

Кактус или цветок красной птицы, Euphorbia tithymaloides —3

Кактус или цветок красной птицы, Pedilanthus tithymaloides —1, 3 900 09

Rhododendron, Rhododendron Genus-4

Rhubarb (листья), RHEUM SPP-1, 2b, 3

Rock Poppy, Chelidonium Majus -1,4

Rocket Larkspur, Delphinium SPP-4

розарийные бусины (не путать с розарийной лозой), SENECIO SPP-4

розарийных бобов или горошек, ABRUS Pracatorius -4

Розарий жемчуг, SENECIO SPP-4

роза Periwinkle, Catharanthus Roseus -4

-4

Rhododendron максимум -4

Rose-Bay, Nerium Oleander -4

Палисандр, Dalbergia retusa —1

Каучуковое дерево, Hevea brasiliensis —1

Резиновая лоза, Cryptostegia grandiflora 9 0

Rush, Equisetum spp—4

Sacred datura, Datura inoxia —4

Saffron, Crocus sativus —4

Saffron crocus, Crocus sativus —4

Sagebrush, Artemisia spp—4

Sago cycas, Cycas spp—4

Sago cycas, Zamia spp—4

Sago palm, Cycas spp—4

Sambucus (all but ripe berries), Sambucus caerulea —3

Sand begonia, Rumex venosus —2b, 3

Sandberry, Arctostaphylos uva-ursi —1, 4

Sapphire flower, Browallia spp—1

Sassafras, Sassafras spp—4

Sassafras tea, Sassafras spp—4

9032 2

Scorpion weed, Heliotropium indicum —4

Scorpion’s tail, Heliotropium angiospermum —4

Scotch broom, Cytisus scoparius —3

Scotch broom, Spartium scoparium —4

Scotch heather, Calluna vulgaris —4

Scouring rush, Equisetum hyemale —4

Scrub oak, Quercus utahensis —1, 3

Sea onion, Scilla verna —4

Sea onion, Urginea maritima —4

Sea onion, false, Ornithogalum caudatum —1, 4

Seminole bead, Abrus precatorius —4

Sesbania, Daubentonia punicea —4

Shamrock, Oxalis spp—2b

Shasta daisy, Chr ysanthemum spp—1, 3

Shell flower, Pistia stratiotes —2a

Silk weed, Asclepias syriaca —4

Silvercup, Solandra grandiflora —4

Singletary pea, Lathyrus spp—4

Skunk cabbage, Symplocarpus foetidus —2a

Skunk cabbage, Veratrum spp—4

Skunkweed, Symplocarpus foetidus —2a

Slipper flower or plant, Euphorbia tithymaloides —3

Slipper flower or plant, Pedilanthus tithymaloides —1, 3

Slipper orchid, Cypripedium spp—1

Slippery elm, Ulmus fulva —1

Slippery root, Symphytum officinale —4

Smoke plant, bush or t ree, Rhus cotinus —1

Snake flower, Echium vulgare —4

Snake lily, Iris spp—1, 3

Snakeberry, Actaea spicata —1, 4

Snakeroot, Aristolochia serpentaria —4

Snakeroot, Cicuta maculata —4

Snakeroot, Eupatorium rugosum —4

Snakeroot, black, Zigadenus or Zygadenus venenosus —4

Snakeroot, black, Cimicifuga racemosa —4

Snakeweed, Eupatorium adenophorum —3

Snakewood, Brosimum guianense —1

Snow lily, Erythronium grandiflorum —1, 3

Snow on the mountain, Euphorbia marginata —1, 3

Snowberry, Symphoricarpos spp—3

Snowdrop, Galanthus nivalis —3

Snowflake, Leucojum vernum —3

Snowflower, Spathiphyllum spp—2a

Solandra, Solandra spp—4

Sorrel, Oxalis spp—2b

Sorrel, Rumex spp—2b

Southern mock orange, Laurocerasus caroliniana —4

Southern mock orange, Prunus caroliniana —4

Spanish broom, Spartium junceum —3

Spathe flower, Spathiphyllum spp—2a

Spathiphyllum, Spathiphyllum spp—2a

Spider flower, Hymenocallis americana —3

Spider lily, Hymenocallis americana —3

90 327

Spider mum, Chrysanthemum spp—1, 3

Spindle tree, Euonymus europaea —3

Split leaf philodendron, Monstera deliciosa —2a

Split leaf philodendron, Philodendron pertusum —2a

Spoonwood, Kalmia latifolia —4

Spring onion, Scilla verna —4

Spurdock, Rumex crispus —1, 2b

Spurge, Euphorbia myrsinites —1, 3

Spurge flax, Daphne mezereum —1, 4

Squaw tea, Ephedra spp—4

Squill, Urginea maritima —4

St. John’s Wort, Hypericum Perforatum -1, 3

-1, 3

звезд Картофельная лоза, Solanum Seaforthianum -3

звезда Вифлеем, Hippobroma Longiflora -4

Звезда-Вифлеем , Laurentia Longiflora -4

ornithogalum SPP-4

во внимание травку, Datura Stramonium -4

вонючий вонючий морозник, Helleborus Foepidus -4

вонючая роза, Allium Sativum- 1, 3

клубничный кустарник (семена), Calycanthus SPP-4

SPP-4 SENECIO SPP-4

строка жемчуг, Senecio spp—4

Аир аира, Acorus calamus —1

Душистый горошек, Lathyrus odoratus 8 7 —4

9

9 Sweet William, Dianthus Barbatus -1

Deliciosa -2A

2A

Talow Tree, Sapium Sebiferum -1, 3

Tansy, Chrysanthemum SPP-1 . -4

чайное дерево, Melaleuca Quinquenervia -1

чайное дерево, Sassafras SPP-4

Texas Umbrella, Melia Azedarach -4

Thistle, желтая звезда , Centaurea solstitialis —1, 3

Терновник, Argemone mexicana —4

Терновник, Datura stramonium -4

TOBACCO, Nicotiana SPP-4

табак, культивированные, Nicotiana Tabacum -4

22

табак, дерево, Nicotiana Glauca -4

Табак, дикий, Lobelia Increata -1, 4

-1, 4

27

Tobacco, Wild, Nicotiana attenuata -4

Tomatillo (зеленые части), Phangalis IXOCARPA -4

помидор (зеленые части), Lycopersicon Lycopersicum -4

Tomato, Devil’s, Solanum Elaeagnifolium -4

22

Toyon (листья), Photinia arbutifolia -4

-4

CniDoscolus Стимулоз -1

Трубчатый цветок или трубчатое растение, Solandra spp—4

Трубчатая лилия, Datura stramonium —4

Трубчатая лилия, Zantedeschia aetheoPica -2a

-2a

Труба, TabeBuia SPP-1, 3

TROMPET VINE, CAMPSIS RADICANS -1

22

TUBEROSE, Полрантез Tuberosa -4

TUBLIP , Tulipa SPP-1, 3

зонтик, Подофиллум PELTATUM -1, 4

зонтик, Cyperus alternifolius -4

-4

Valerian, Valeriana Officinalis -4

лак дерево, алейуритов Moluccana -1, 3

-1, 3

Veratrum, Veratrum SPP-4

Verbena, Verbena SPP-1

Vinca Major, Vinca Major — 4

Барвинок малый, Барвинок малый —4

Барвинок розовый, Catharanthus roseus —4

Барвинок розовый ОСЕА, ВИНКА RSA ROSEA -4

AILA (только семена), Viola Odorata -3

фиолетовый (только семена), AILA ODORATA -3

Virginia Creeper, Parthenocissus Quinquefolia -2a, 2b

Virgin’s Bower, Clematis Virginiana- 1, 3

1, 3

27

Voodoo Lily, AMORPHOPHALLUS Rivieri -1, 2A

Walut, черный, Juglans Nigra -1

Walut, английский, Juglans Regia -1

воды конопли,

Cannabinum -3

22

WAX Berry, Symphoricarpos SPP-3

Wax, Rhus Succedanea —1

Waxberry, Myrica cerifera —1

Метла ткача, Spartium junceum —3

Дерево Sepingpagoda

Ophora japonica -4

Rhus DiversiLoba -1

-1

Западный яд дуб, Токсикодендрон DiversiLobum -1

Wild Apple (жевательные семена), Malus Pumila -4

Wild Apple (жевательные семена), Pyrus Sylvestris -4

дикая бегония, Rumex Venosus -2b, 3

дикое кровотечение сердца, Dicentra Eximia -1, 4

Wild Calla, Calla Palustris -2A

дикая гвоздика, Dianthus SPP-1

Wild MarroT, Cicuta Maculata -4

Wild Marrot, Daucus Carota -1

Дикий кофе, Polyscias guilfoylei —1, 3

Дикая яблоня (жеванные семена), Malus ioensis —4

22 Bapple (жевательные семена), Pyrus ioensis -4

22

22

дикий крокус, анемона патис -1, 3

22

дикий укроп, Nigella Damascena -3

дикий чеснок, Allium SPP-1, 3

дикий имбирь, Asarum Canadense -4

-4

22

дикий гортензия, грандиангена arborescens -1, 3

дикая гортензия, Rumex Venosus -2B, 3

Wild Leek, Allium Ampeeloprasum -1, 3

дикий лимон, Подофиллум PELTATUM -1, 4

дикая солодка, ABRUS Pracatorius -4

дикая солодка, глицирризов lepidota —4

Ипомея дикая, Calystegia sepium —1, 3

Ипомея дикая, Convolvulus arvensis —1, 7 9, 3 9 Wild Oats, Avena Fatua -3

дикий лук, Allium SPP-1, 3

322

дикий апельсин, Laurocerasus Caroliniana -4

дикий апельсин, Prunus Caroliniana -4

Wild Parsnip, Angelica Archangelica -1, 4

-1, 4

27 Cicuta Maculata -4
-4

дикий пастернак, Heracleum Mantegazzianum -1

Wild Parsnip (все, кроме root), pastinaca sativa -1

22

Wild Passian Passian Tailing, Passiflora Incarnata -4

-4

Дикий горох, Lathyrus SPP-4

Дикий перец, Daphne Mezereum -1, 4

Редька дикая, Raphanus raphanistrum —3

Ревень дикий, Heracleum mantegazzianum —1

2 Дикорастущий Arb, Rumex HymenosePalus -2B

-2B

Wild Snowball, Ceanothus Americanus -3

22

дикий сладкий горошек, Lathyrus Incanus -4

дикий табак, , 40006-1, 4

дикий табак, Nicotiana attenuata -4

-4

дикий помидор, Solanum Carolinense -4

-4

дикий репортаж, арисама трииллум -1, 2A

Windflower, Anemone SPP-1, 3

SPP-3 ILEX SPP-3

27

-3

-3

Wolf’s Bane, Arnica SPP-4

Wolf’s Milk, Euphorbia esula —1, 3

Wolfsbane, Aconitum napellus —4

Wonderflower, Ornithogalum thyrsoides —4 9000 9

древесная роза (семена), Merremia Tuberosa -4

древесная роза, Гавайская (семена), MERREMIA TUBEROSA -4

Wood Vine, Gelsemium Sempervirens -1,4

Woodbine, Clematis Virginiana -1, 3

Wormseed, Chenopodium Ambrosiode -3

SPP-4

SPP-4

Yarrow, Achillea Millefolium — 1, 3

желтый жасмин, Gelsemium Sempervirens -1, 4

7

желтый джессамин, GELSEMIUM SEMPERVIRENS -1, 4

желтый олеандр, TheVetia Peruviana- 4

Вчера-сегодня, Brunfelsia spp—4

Вчера-сегодня-завтра, Brunfelsia spp—4

Тис, Налог us baccata —4

Тис, японский или китайский (не путать с Taxus spp), Podocarpus macrophyllus —3

Тис, южное дерево (не путать с Taxus 9008), Taxus 9008 Podocarpus macrophylla -3

Йохимбе или Йохимбин, Corynanthe yohimbe -4

-4

Zamia, Zamia SPP-4

Zephyr Lily, Zephyrantes Atamasco -1, 3

Отравление животных папоротником-орляком – токсикология

Пораженный крупный рогатый скот слаб, быстро теряет вес и у него развивается лихорадка (106–110°F [41–43°C]). У телят часто бывает затрудненное дыхание, слизистые оболочки бледные. Кровоизлияния варьируют от незначительных петехий слизистой оболочки до экссудативного кровотечения, иногда с фекалиями могут выделяться большие сгустки крови. Коагуляция затягивается, а кровотечение может быть выраженным и обильным даже при небольших ранах, таких как укусы насекомых или другие мелкие царапины.

Если у животных развивается клиническая форма заболевания, отравление почти всегда приводит к летальному исходу. Вскрытие обычно выявляет множественные кровоизлияния или синяки по всей туше.Также могут быть некротические и геморрагические язвы в желудочно-кишечном тракте. Слизистая оболочка мочевого пузыря часто содержит мелкие кровоизлияния, расширенные сосуды или сосудистые, фиброзные или эпителиальные новообразования. Сообщалось также о других новообразованиях верхних отделов желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота и других видов. В большинстве случаев обнаруживаются смеси геморрагических и опухолевых поражений.

Хотя не все токсины папоротника полностью охарактеризованы, основная причина энзоотической гематурии связана с птакилозидом, норсесквитерпеновым глюкозидом.Другие токсичные и потенциально канцерогенные токсины включают кверцетин, изокверцетин, птескулентозид, каудатозид, астрагалин и различные дубильные вещества.

Птакилозид является сильнодействующим радиомиметическим соединением, которое сначала повреждает костный мозг, а затем становится канцерогенным (в первую очередь вызывает неоплазию мочевыводящих путей у жвачных животных). Как геморрагический синдром, так и уроэпителиальные новообразования были воспроизведены экспериментально с помощью папоротника орляка и птаквилозида. Высокие дозы птаквилозидов в течение нескольких месяцев вызывают характерную геморрагическую болезнь.Это связано с радиомиметическим повреждением птакилозидом пролиферирующих стволовых клеток костного мозга. Это характеризуется истощением мегакариоцитов костного мозга с последующей как лейкоцитарной, так и эритроцитарной гипоплазией. Полученная лейкограмма часто представляет собой смешанный ответ. В начальной фазе отравления часто наблюдается выраженный моноцитоз с последующей гранулоцитопенией и тромбоцитопенией. Заключительные фазы включают выраженную тромбоцитопению с анемией, лейкопенией и гипергаммаглобулинемией. Анализ мочи обычно включает гематурию и протеинурию.Пораженные животные имеют как повышенную восприимчивость к инфекции, так и склонность к спонтанным кровотечениям.

Меньшие дозы папоротника папоротника в течение более длительного времени, по-видимому, более канцерогенны. Эффекты, по-видимому, накапливаются, поскольку животные подвергаются многократному воздействию в течение многих лет. Часто начало клинической болезни задерживается на недели или даже месяцы после того, как животных выгоняют с ареалов и пастбищ, заселенных папоротником-орляком. Помимо домашнего скота, канцерогенный потенциал папоротника папоротника и птаквилозида был подтвержден у крыс, мышей, морских свинок, перепелов и египетских жаб.

Отравление папоротником-орляком у лошадей

Отравление папоротником-орляком в Лошади



Содержание

  1. Введение
  2. Клинические признаки
  3. Лечение
  4. Идентификация папоротника папоротника
  5. Управление
  6. Папоротники, обычно встречающиеся в Онтарио
  7. Ссылки
  8. Связанная ссылка

Введение

Папоротник орляк ( Pteridium aquilinum ) (рис. 1) является одним из наиболее распространенные виды сосудистых растений, превосходящие по географическому колеблются лишь по нескольким однолетним сорнякам (1).Папоротник орляк не требует высокого уровня воды и может расти в самых разных условиях, в отличие от других папоротников (1). Идеальны песчаные почвы на открытых лесных участках, пастбищах и вдоль дорог. места для устойчивого роста. У моногастричных (одножелудочных) животных таких как лошади, токсичность связана с ферментом тиаминазой (2). У жвачных животных, таких как крупный рогатый скот, угнетение костного мозга приводит к острый геморрагический синдром (3).

Рисунок 1. Папоротник папоротник-орляк может расти в самых разных условиях, в отличие от других папоротники.

У лошадей тиаминаза расщепляет незаменимый витамин тиамин (B1) на пиримидин и тиазол, которые по отдельности неактивны в тело (2). Тиамин в целом ключевое соединение в обмене веществ и в поддержании миелиновой периферических нервов (4).В присутствии тиаминазы, уровень тиамина в крови у лошадей может снижаться от нормальный от 80-100 мг/л до 25-30 мкг/л (4). Однако на токсичность напрямую влияет количество, время года и часть растения, которая потребляется (4). Наиболее ядовиты корневища и молодые листья. Вайи наиболее токсичен в фазе быстрого роста (3).

Потребление орляка папоротника на пастбищах обычно ограничивается лошадьми. предпочтение и обилие других вкусных растений.Большинство клинических случаев связаны с кормлением недоброкачественным сеном который содержит высокие уровни папоротника. Папоротник папоротник становится включенным в сене, когда он проникает на сенокосы с соседних кустов и обочины. Признаки дефицита тиамина возникают при содержании сена. папоротник орляк из расчета 10-20% или более от потребления сухого вещества лошадью питается примерно 4 недели (1).Для средней лошади весом 454 кг (1000 фунтов) 1-2 кг (2,2-4,5 фунта) папоротник орляк-орляк должен потребляться каждый день в течение как минимум месяц.

Клинические признаки

Дефицит тиамина у животных с однокамерным желудком и у лошади в частности, отмечается потеря физического состояния (общая неряшливая физическая внешний вид), потеря веса (первоначально без потери аппетита) и слегка нескоординированные движения (4, 5).Если не лечить, болезнь может прогрессировать до такой степени, что лошадь демонстрирует присевшую стойку и потерю мышечного контроля (например, в виде подергиваний и тремора) (4, 5). То лошадь может стать беспокойной и нервной из-за своей неспособности контролировать движение мышц; может лечь и не встать (1, 4). Интоксикация заканчивается смертью, следующей за судорогами, от нескольких дней до нескольких недель после появления симптомов (4).

У жвачных животных острый геморрагический синдром (кровопотеря) связано с химическим птакилозидом и хроническим употреблением в пищу папоротника-орляка папоротник Концентрация птаквилозида в папоротнике папоротнике зависит о географическом расположении завода (2). Острая кровопотеря и внезапная смерть наступают в результате поражения костного мозга. депрессия с последующей тромбоцитопенией (состояние низкое количество тромбоцитов) и повышенная склонность к кровотечениям (4).

Отравления у животных редки с:

  • для накопления токсических эффектов требуется 1-3 месяца.
  • существуют различия в восприимчивости видов животных.
  • необходимо потреблять большое количество сухого вещества.
  • Токсичность
  • зависит от географического положения и времени года (поскольку только что появившиеся fiddleheads в пять раз более токсичны, чем зрелые листья) (2).

Острые отравления наблюдаются после периодов засухи при выпасе скота мало или когда поле вспахано и животные имеют доступ к корневища (3). Отравления чаще всего проявляется у стойловых животных и когда папоротник папоротник является основным загрязнителем сена (4).

Лечение

Раннее выявление симптомов имеет решающее значение при Лечение отравления орляком.Если поймать рано, просто удаление источника папоротника приведет к полному выздоровлению. Уход с тиамином иногда необходимо. Схемы или методы лечения различаются в зависимости от автора. Одна рекомендация – управлять тиамин (витамин В1) 500 мг-1 г/день — в 1-й день внутривенно, а затем внутримышечно в течение нескольких дней (1). Лучшим методом профилактики является сохранить хорошие пастбища, уничтожить папоротник папоротник с полей и убедитесь, что в сене нет папоротника-орляка.

Идентификация папоротника папоротника

Папоротник орляк-орляк, в отличие от других видов папоротников, предпочитает сухие, хорошо дренированные, песчаные и гравийные почвы, такие как открытые лесные участки, пастбища и придорожной среде. Это травянистые, многолетние растения которые появляются из-под земли в виде свернутых головок. скрипач открывается в сложный лист или вайю, которая, по-видимому, имеет три крупные деления из-за ветвления стебля с обнажением трех листочков.Каждый листочек около 30-140 см в длину, 30-100 см в ширину и треугольной формы. по форме (6). Проецирование от основного вайи представляют собой отчетливо лопастные подлисточки, в которых находятся споры. папоротника. В конце лета листочки скручиваются, чтобы защитить коричневые репродуктивные споры, характерные для присутствуют по периметру нижней стороны каждого листочка (5).Как и большинство папоротников, папоротник орляк видоизменился под землей. стебли, называемые корневищами, которые растут в стороны и от которых многочисленные появляются надземные стебли. Корневища папоротника папоротника черные и может расти горизонтально на несколько метров (5). Эти стойкие корневища, а также споры, образующиеся половым путем, сделать эти папоротники трудно искоренить.

Управление

Из-за корневищной системы растения и его способность производить массовое количество спор, контролировать и распространять папоротника папоротника может быть трудно.Рост может замедлиться со временем регулярной обрезкой взрослого растения или глубокой вспашкой (1). Гербицид также может быть эффективным средством борьбы, если обрезка для стимулирования вегетативного роста перед применением лечения (1).

Папоротники, обычно встречающиеся в Онтарио

Папоротник папоротник (
Pteridium aquilinum )

Листья сложные, и каждый лист разветвляется на 3 широко треугольных листовки (7).Одно из главных отличительных факторами папоротника орляка-орляка является то, как подлистья имеют лопастную форму. основание, но не кончик (правое фото).

  

Страусиный папоротник (
Matteuccia struthiopteris )

Листья страусиные перья (продолговатые и заостренные на верхушка) и около 1,5 м высотой (7), ветвящиеся прямо из чешуйчатого луковичного корневища. Отдельный спорообразующий структура, развивающаяся из корневища, выглядит как стебель, который не развиваются и подрумяниваются.То, что кажется свернутыми листьями, похоже на стручки структуры, содержащие споры (7).

Чувствительный папоротник (
Onoclea sensibilis )

Эти папоротники обычно растут во влажных местах. Листья около 50-70 см высотой, а листочки гораздо шире, с очень неглубокие лопастные края по краям, создающие волнистый вид (7). Скатилась отдельная темно-бурая, спороносная, плодородная структура. бусиновидные скопления вокруг спор (7).

Потребление чувствительного папоротника при 10%-20% содержания сена также вызывает симптомы, сходные с симптомами отравления, связанного с тиаминазой. встречается с папоротником-орляком и хвощом (1).

Ссылки

  1. Берроуз GE, Tyrl RJ. Токсичные растения Северной Америки. Эймс, Айова: Издательство штата Айова, 2001: 415–422.
  2. Рыцарь AP, Уолтер Р.Г. Руководство по отравлению животных растениями в Северной Америке.Джексон, Вайоминг: Teton NewMedia, 2001: 194–197, 222-224.
  3. Радостиц О.М., Гей К.С., Блад Д.С., Хинчклифф К.В. Ветеринария, 9-е изд. Эдинбург: WB. Сондерс Компани Лтд., 2000:1556-1558, 1659.
  4. Отравление папоротником папоротником: Введение. In: Ветеринария Merck Руководство, 9-е изд. Станция Уайтхаус, Нью-Джерси: Merck & Co., Inc. и ООО Мериал., 2005. По состоянию на 8 апреля 2010 г.
  5. .
  6. Кингсбери Дж.М. Ядовитые растения США и Канады. Энглвуд Клиффс, Нью-Джерси: Prentice-Hall, Inc., 1964: 105–108.
  7. Алекс Дж.Ф. Ontario Weeds, публикация 505. Торонто, Онтарио: Queen’s. Принтер для Онтарио, 1992: 20.
  8. Чемберс Б, Легаси К, Бентли К.В. Лесные растения Центрального Онтарио. Эдмонтон, Альберта: Lone Pine Publishing, 1996: 341, 359, 361.

Ссылка по теме

Синдромы защиты листьев у тропических папоротников

  • Агравал А.А. (2000) Специфичность индуцированной резистентности у дикой редьки: причины и последствия для двух специализированных и двух универсальных гусениц. Ойкос 89: 493–500. https://doi.org/10.1034/j.1600-0706.2000.8

    .x

    Статья Google ученый

  • Агравал А. А., Фишбейн М. (2006)Синдромы защиты растений.Экология 87: 132–149. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2006)87[132:PDS]2.0.CO;2

    Статья Google ученый

  • Aide TM (1992) Производство листьев в сухой сезон: бегство от травоядных. Биотропика 24: 532–537. https://doi.org/10.2307/2389016

    Статья Google ученый

  • Amorim ELC, Nascimento JE, Monteiro JM, Sobrinho TJSP, Araújo TAS, Albuquerque UP (2008) Простая и точная процедура определения уровней танина и флавоноидов и некоторые применения в этноботанике и этнофармакологии.Функция Ecosyst Commun 2:88–94

    Google ученый

  • Augner M (1995) Низкое питательное качество как средство защиты растений: Эффекты взаимодействий, опосредованных травоядными. Эвол Экол 9: 605–616. https://doi.org/10.1007/BF01237658

    Статья Google ученый

  • Балик Дж. , Ферт Д.Г., Купер-Драйвер Г. (1978) Биохимические и эволюционные аспекты хищничества членистоногих на папоротниках.Экология 35:55–89. https://doi.org/10.1007/BF00345541

    Статья пабмед Google ученый

  • Безерра-Нето Э., Баррето Л.П. (2011) Анализ химических веществ и биохимических веществ на растениях. UFRPE, Ресифи

    Google ученый

  • Bremner JM, Mulvaney CS (1982) Общий азот. В: Страница AL (ред.) Методы анализа почвы, 2-е изд. Общество почвоведов Америки, Мэдисон, стр. 595–624

    Google ученый

  • Calo L, García I, Gotor C, Romero CL (2006) Листовые волоски влияют на фитопатогенную грибковую инфекцию и придают повышенную устойчивость при экспрессии Trichoderma a-1,3-глюканазы.J Exp Bot 57: 3911–3920. https://doi.org/10.1093/jxb/erl155

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Carmona D, Lajeunesse MJ, Johnson MTJ (2011) Признаки растений, предсказывающие устойчивость к травоядным. Функция Экол 25: 358–367. https://doi.org/10.1111/j.1365-2435.2010.01794.x

    Статья Google ученый

  • Coley PD, Barone JA (1996) Травоядные и средства защиты растений в тропических лесах.Энн Рев Экол Сист 27: 305–335. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.27.1.305

    Статья Google ученый

  • Coley PD, Bryan JP, Chapin F (1985) Доступность ресурсов и защита растений от травоядных. Наука 230:895–899. https://doi.org/10.1126/science.230.4728.895

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Cooper-Driver G (1985) Стратегии борьбы с хищниками у папоротников – биохимический подход.Proc R Soc Edinb B 86:397–402. https://doi.org/10.1017/S0269727000008381

    Статья Google ученый

  • Cornelissen JHC, Lavorel S, Garnier E, Díaz S, Buchmann N, Gurvich DE, Reich PB, ter Steege H, Morgan HD, van der Heijden MGA, Pausas JG, Poorter H (2003) Справочник протоколов для стандартизированное и простое измерение функциональных характеристик растений по всему миру. Ауст Дж. Бот 51: 335–380. https://doi.org/10.1071/BT02124

    Статья Google ученый

  • Далин П., Агрен Дж., Бьоркман С., Хуттунен П., Карккяйнен К. (2008) Образование трихом на листьях и устойчивость растений к травоядным.В: Шаллер А. (ред.) Индуцированная устойчивость растений к травоядным, 1-е изд. Springer, Штутгарт, стр. 89–106

    Глава Google ученый

  • Farias RP, Costa LEN, Silva IAA, Barros ICL (2015) Фенологические исследования отдельных признаков листьев и растений Didymochlaena truncatula (Dryopteridaceae) в предгорных тропических лесах Бразилии. Норд Дж. Бот 33: 249–255. https://doi.org/10.1111/njb.00656

    Статья Google ученый

  • Farias RP, Arruda ECP, Santiago ACP, Almeida-Cortez JS, Carvalho-Fernandes SP, Costa LEN, Barros ICL, Mehltreter K (2018a) Первое обнаружение галлов в древовидном папоротнике Cyathea phalerata (Cyatheaceae) из тропический лес в Бразилии. Браз Дж. Биол 78: 799–801. https://doi.org/10.1590/1519-6984.174674

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Фариас Р.П., Коста ЛЕН, Баррос ICL, Оливейра АФМ, Мелтретер К. (2018b) Селективное травоядное животное папоротника муравьями-листорезами Atta cephalotes (L.) в Бразилии. Браз Дж. Бот 41: 923–929. https://doi.org/10.1007/s40415-018-0499-z

    Статья Google ученый

  • Feio AF, Aguiar-Dias ACA, Potiguara RCV (2013) Elaphoglossum (Dryopteridaceae-Fern) тропических лесов Амазонки в Бразилии: анатомическая характеристика и стратегии адаптации.Am J Plant Sci 4: 1863–1871. https://doi.org/10.4236/ajps.2013.49229

    Статья Google ученый

  • Футуйма Д.Дж., Агравал А.А. (2009) Макроэволюция и биологическое разнообразие растений и травоядных. Proc Natl Acad Sci USA 106:18054–18061. https://doi.org/10.1073/pnas.0

    6106

    Статья пабмед Google ученый

  • Хэнли М.Е., Ламонт Б.Б., Фэрбенкс М.М., Рафферти К.М. (2007) Структурные признаки растений и их роль в защите от травоядных.Perspect Plant Ecol Evol Syst 8:157–178. https://doi.org/10.1016/j.ppees.2007.01.001

    Статья Google ученый

  • Хармс К.Е., Пауэрс Дж.С., Монтгомери Р.А. (2004) Различия в плотности мелких саженцев, подлеске и доступности ресурсов в четырех неотропических лесах. Биотропика 36:40–51. https://doi.org/10.1111/j.1744-7429.2004.tb00294.x

    Статья Google ученый

  • Hartmann T, Ober D (2008) Защита с помощью пирролизидиновых алкалоидов: вырабатывается растениями и привлекается насекомыми.В: Шаллер А. (ред.) Индуцированная устойчивость растений к травоядным, 1-е изд. Springer, Дордрехт, стр. 213–231

    Глава Google ученый

  • Хаукиоя Э. , Руохомяки К., Суомела Дж., Вуорисало Т. (1991) Качество питания как защита от травоядных. Для Экол Манаг 39: 237–324. https://doi.org/10.1016/0378-1127(91)

    -Y

    Статья Google ученый

  • Хендрикс С.Д., Маркиз Р.Дж. (1983) Повреждение травоядными трех тропических папоротников.Биотропика 15: 108–111. https://doi.org/10.2307/2387952

    Статья Google ученый

  • Гермс Д.А., Мэттсон В.Дж. (1992) Дилемма растений: расти или защищаться. Q Rev Biol 67:283–335

    Статья Google ученый

  • Huberty AF, Denno RF (2006) Последствия ограничения азота и фосфора для производительности двух личинок растений с разными стратегиями жизненного цикла.Экология 149: 444–455. https://doi.org/10.1007/s00442-006-0462-8

    Статья пабмед Google ученый

  • Джаред Г. А., Агравал А.А. (2012) Специалист против травоядных насекомых-универсалов и защита растений. Trends Plant Sci 17: 293–302. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2012.02.006

    Статья КАС Google ученый

  • Johnson MTJ, Ives AR, Ahern J, Salminen JP (2014) Макроэволюция защиты растений от травоядных у вечерних первоцветов.Новый фитол 203: 267–279. https://doi.org/10.1111/nph.12763

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Jolliffe IT (2002) Анализ главных компонентов. Спрингер-Верлаг, Нью-Йорк

    Google ученый

  • Kitajima K, Poorter L (2010) Прочность листа на уровне ткани, но не толщина листовой пластинки, предсказывает продолжительность жизни саженца листа и теневыносливость тропических видов деревьев.Новый фитол 186: 708–721. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2010.03212.x

    Статья пабмед Google ученый

  • Коптур С. , Паласиос-Риос М., Диас-Кастеласо С., Маккей В.П., Рико-Грей В. (2013) Выделение нектара на листьях папоротника, связанное с более низким уровнем повреждения травоядными животными: полевые эксперименты с широко распространенным эпифитом мексиканского облачного леса остатки. Энн Бот 111: 1277–1283. https://doi.org/10.1093/aob/mct063

    Статья пабмед ПабМед Центральный КАС Google ученый

  • Курсар Т.А., Коли П.Д. (2003)Конвергенция защитных синдромов молодых листьев в тропических лесах.Biochem Syst Ecol 31:929–949. https://doi.org/10.1016/S0305-1978(03)00087-5

    Статья КАС Google ученый

  • Lamarre GPA, Mendonza I, Fine PVA, Baraloto C (2014) Синхронизация листьев и растительноядность насекомых среди специалистов по среде обитания тропических деревьев. Завод Экол 215:209–220. https://doi.org/10.1007/s11258-013-0290-y

    Статья Google ученый

  • Лежандр П. , Лежандр Л.Ф. (2012) Численная экология.Эльзевир, Амстердам

    Google ученый

  • Лемуан Н.П., Жири С.Т., Беркепиле Д.Е. (2014) Различия ограничений питания потребителей в разных экосистемах. Экология 174: 1367–1376. https://doi.org/10.1007/s00442-013-2860-z

    Статья пабмед Google ученый

  • Люкинг Р. (1998) Экология лиственных лишайников на тропе «Ботаррама» (Коста-Рика), неотропическом тропическом лесу.Часть II: закономерности разнообразия и площадного покрова, их зависимость от микроклимата и видов форофитов. Экотропика 4:1–24

    Google ученый

  • Matos FJA (1997) Introdução à Fitoquimica Experimental. Edições UFC, Форталеза

    Google ученый

  • Mattson WJ (1980) Травоядность в зависимости от содержания азота в растениях. Annu Rev Ecol Syst 11: 119–161. https://дои.org/10.1146/annurev.es.11.110180.001003

    Статья Google ученый

  • Мелтретер К. (2010) Взаимодействие папоротников с грибами и животными. В: Мелтретер К., Уокер Л.Р., Шарп Дж.М. (ред.) Экология папоротника, 1-е изд. Издательство Кембриджского университета, Кембридж, стр. 220–254. https://doi.org/10.1017/CBO9780511844898.008

    Глава Google ученый

  • Mehltreter K, García-Franco G (2008) Фенология листьев и рост ствола листопадного древесного папоротника Alsophila firma (Baker) D.С. Конант в мексиканском лесу Нижней Монтаны. Ам Ферн J 98: 1–13. https://doi.org/10.1640/0002-8444(2008)98[1:LPATGO]2.0.CO;2

    Статья Google ученый

  • Мелтретер К., Шарп Дж.М. (2013) Причины и последствия изменчивости продолжительности жизни листьев папоротников. Папоротник Газ 9: 193–202

    Google ученый

  • Мелтретер К. , Толоме Дж. (2003) Травоядные на трех видах тропических папоротников мексиканского облачного леса.В Chandra S, Srivastava M (eds) Pteridology in the New Millennium, Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, стр. 375–381

    Глава. Google ученый

  • Mehltreter K, Rojas P, Palacios-Ríos M (2003) Личинки моли повредили гигантский кожаный папоротник Acrostichum danaeifolium в качестве хозяина для вторичной колонизации муравьями. Ам Ферн J 93: 48–54. https://doi.org/10.1640/0002-8444(2003)093[0049:mlglad]2.0.co;2

    Статья Google ученый

  • Мелтретер К., Хюльбер К., Хитц П. (2006) Травоядные на эпифитных папоротниках мексиканского облачного леса.Ферн Газ 17: 303–309

    Google ученый

  • Mesipuu M, Shefferson RP, Kull T (2009) Погода и травоядные животные влияют на фертильность исчезающего папоротника Botrychium multifidum (SG Gmel. ) Rupr. Завод Экол 203:23–31. https://doi.org/10.1007/s11258-008-9501-3

    Статья Google ученый

  • Микель Дж. Т., Смит А. Р. (2004) Птеридофиты Мексики.Mem N Y Bot Gard 88:1–1055

    Google ученый

  • Моул С., Росс Дж. А., Уотерман П. Г. (1988) Изменение уровня фенолов в листве растений тропических лесов, вызванное светом: I. Химические изменения. J Chem Ecol 14:1–21. https://doi.org/10.1007/BF01022528

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Молина-Монтенегро М.А., Авила П., Уртадо Р., Вальдивия А.И., Джаноли Э. (2006) Плотность трихом на листьях может объяснить характер травоядных видов Actinote sp.(Lepidoptera: Acraeidae) на Liabum mandonii (Asteraceae) в горном влажном лесу (Нор Юнгас, Боливия). Acta Oecol 30: 147–150. https://doi.org/10.1016/j.actao.2006.02.008

    Статья Google ученый

  • Морейра X, Пирс И. С. (2017) Внешний вид листа не определяет инвестиции как в физическую, так и в химическую защиту и парные корреляции между этими защитными признаками. Биология растений 19: 354–359. https://дои.org/10.1111/plb.12537

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Морейра X, Сампедро Л., Зас Р., Пирс И.С. (2016) Защитные черты молодых сосен объединяются в два расходящихся синдрома, связанных с ранней скоростью роста. ПЛОС ПЕРВЫЙ 11:1–12. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0152537

    Статья КАС Google ученый

  • Новотный В., Бассет Ю., Миллер С.Е., Вейблен Г.Д., Бремер Б., Чижек Л., Дрозд П. (2002) Низкая специфичность растительноядных насекомых в тропическом лесу.Природа 416: 841–844. https://doi.org/10.1038/416841a

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Страница CN (2002) Экологические стратегии в эволюции папоротников: неоптеридологический обзор. Преподобный Палеобот Палинол 119: 1–33. https://doi.org/10.1016/S0034-6667(01)00127-0

    Статья Google ученый

  • Пирс И.С. (2011) Роль защитных свойств листьев у дубов в предпочтении и производительности многоядных травоядных, Orgyia vetusta .Экол Энтомол 36: 635–642. https://doi.org/10.1111/j.1365-2311.2011.01308.x

    Статья Google ученый

  • Pennings SC, Simpson JC (2008) Подобно травоядным, растения-паразиты ограничены содержанием азота в хозяине. Завод Экол 196: 245–250. https://doi.org/10.1007/s11258-007-9348-z

    Статья Google ученый

  • Pérez-Harguindeguy N et al (2013) Новый справочник по стандартизированному измерению функциональных признаков растений во всем мире.Ауст Дж. Бот 61: 167–234. https://doi.org/10.1071/BT12225

    Статья Google ученый

  • Perkins MC, Woods HA, Harrison JF, Elser JJ (2004) Пищевой фосфор влияет на рост личинок Manduca sexta . Arch Insect Biochem Physiol 55: 153–168. https://doi.org/10.1002/arch.10133

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Ppg I (2016) Классификация существующих ликофитов и папоротников, созданная сообществом.J Syst Evol 54: 563–603. https://doi.org/10.1111/jse.12229

    Статья Google ученый

  • Прингл Э.Г., Адамс Р.И., Бродбент Э., Басби П.Е., Донатти К.И., Куртен Э.Л., Рентон К., Дирзо Р. (2011)Отчетливые синдромы листовых признаков вечнозеленых и лиственных деревьев в сезонно засушливом тропическом лесу. Биотропика 43: 299–308. https://doi.org/10.1111/j.1744-7429.2010.00697.x

    Статья Google ученый

  • R Core Team (2016) R: Язык и среда для статистических вычислений.Основная команда R. https://cran.r-project.org/. По состоянию на 12 ноября 2018 г.

  • Расманн С., Агравал А.А. (2009) Защита растений от травоядных: прогресс в выявлении синергизма, избыточности и антагонизма между признаками устойчивости. Curr Opin Plant Biol 12: 473–478. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2009.05.005

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Рид Дж., Сансон Г.Д., Колдуэлл Э., Клиссолд Ф.Дж., Чатен А., Питерс П., Ламонт Б.Б., Гарин Вичатицкий М., Джаффре Т., Керр С. (2009) Корреляции между прочностью листьев и фенолами среди видов в контрастных средах Австралии и Новая Каледония.Энн Бот 103: 757–767. https://doi.org/10.1093/aob/mcn246

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Робинсон Р.К., Шеффилд Э., Шарп Дж.М. (2010) Проблемные папоротники: их влияние и управление. В: Мелтретер К., Уокер Л.Р., Шарп Дж.М. (ред.) Экология папоротника, 1-е изд. Издательство Кембриджского университета, Кембридж, стр. 255–322

    Глава Google ученый

  • Ruiz NR, Ward D, Saltz D (2008) Компенсаторный рост листьев как стратегия толерантности для противостояния травоядным у Pancratiumickenbergeri . Завод Экол 198:19–26. https://doi.org/10.1007/s11258-007-9381-y

    Статья Google ученый

  • Sagers CL, Coley PD (1995) Выгоды и затраты на защиту неотропического кустарника. Экология 76: 1835–1843. https://doi.org/10.2307/1

    5

    Статья Google ученый

  • Санкаран М., Макнотон С.Дж. (2005)Взаимодействия наземных растений и травоядных: интеграция множества детерминант и трофических уровней.В: Маарел Э. (ред.) Экология растительности, 1-е изд. Блэквелл, Соединенное Королевство, стр. 265–285

    Google ученый

  • Сантос М.Г., Хэнсон П., Майя В.К., Мелтретер К. (2019) Обзор галлов на папоротниках и ликофитах. Окружающая среда Энтомол 48: 53–60. https://doi.org/10.1093/ee/nvy172

    Статья Google ученый

  • Schneider H, Schuettpelz E, Pryer KM, Cranfill R, Magallón S, Lupia R (2004) Разнообразие папоротников в тени покрытосеменных растений. Природа 428: 553–557. https://doi.org/10.1038/nature02361

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Schoonhoven LM, van Loon JJA, Dicke M (2005) Биология насекомых и растений, 2-е изд. Издательство Оксфордского университета, Оксфорд

    Google ученый

  • Scriber JM (2009) Взаимодействие растений и насекомых. В: Реш В., Карде Р. (ред.) Энциклопедия насекомых, 1-е изд. Academic Press, Нью-Йорк, стр. 806–810

    Глава Google ученый

  • Sharpe JM (1997) Рост листьев и демография реофитного папоротника Thelypteris angustifolia (Willdenow) Проктор в тропических лесах Пуэрто-Рико.Завод Экол 130:203–212. https://doi.org/10.1023/A:1009766412840

    Статья Google ученый

  • Шарп Дж.М., Мелтретер К., Уокер Л.Р. (2010) Экологическое значение папоротников. В: Мелтретер К., Уокер Л.Р., Шарп Дж.М. (ред.) Экология папоротника, 1-е изд. Издательство Кембриджского университета, Кембридж, стр. 1–21

    Google ученый

  • Сильва Д.М., Баталья М.А. (2011) Синдромы защиты от травоядных в растительном сообществе серрадо.Завод Экол 212:181–193. https://doi.org/10.1007/s11258-010-9813-y

    Статья Google ученый

  • Симмс Э.Л., Раушер М.Д. (1987) Затраты и преимущества устойчивости растений к травоядным. Ам Нат 130: 570–581. https://doi.org/10.1086/284731

    Статья Google ученый

  • Soeder RW (1985) Составляющие папоротника: включая встречаемость, хемотаксономию и физиологическую активность.Бот Откр. 51:442–536. https://doi.org/10.1007/BF02860970

    Статья Google ученый

  • Штамп N (2003) Из трясины гипотез защиты растений. Q Rev Biol 78: 23–55. https://doi.org/10.1086/367580

    Статья пабмед Google ученый

  • Штамп NE, Casey TM (1993) Гусеницы: экологические и эволюционные ограничения на поиск пищи. Чепмен и Холл, Нью-Йорк

    Google ученый

  • Стюард Дж.Л., Килер К.Х. (1988) Существуют ли компромиссы между защитой от травоядных в Ipomoea (Convolvulaceae)? Ойкос 53:79–88.https://doi.org/10.2307/3565666

    Статья Google ученый

  • Штраус С.Ю., Агравал А.А. (1999) Экология и эволюция устойчивости растений к травоядным. Тенденции Ecol Evol 14: 179–185. https://doi.org/10.1016/S0169-5347(98)01576-6

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Таненцап А.Дж., Ли В.Г., Дагдейл Дж.С., Патрик Б.П., Феннер М., Уокер С., Кумс Д.А. (2011) Дифференциальные реакции позвоночных и беспозвоночных травоядных на признаки новозеландских субальпийских кустарников. Экология 92: 994–999. https://doi.org/10.1890/10-0861.1

    Статья пабмед Google ученый

  • Travers-Martin N, Müller C (2008) Соответствие синдромов защиты растений характеристикам и предпочтениям специализированных травоядных. Функция Экол 22: 1033–1043. https://doi.org/10.1111/j.1365-2435.2008.01487.x

    Статья Google ученый

  • Туоми Дж., Ниемала П.С., Чапин Ф.С., Брайант Дж.П., Сирен С. (1987) Защитные реакции деревьев в отношении их баланса углерода/питательных веществ.В: Mattson WJ, Levieux J, Bernard-Dagan C (eds) Механизмы защиты древесных растений от насекомых: поиск закономерностей. Springer-Verlag, Нью-Йорк, стр. 57–72

    Google ученый

  • Turcotte MM, Davies TJ, Thomsen CJM, Johnson MTJ (2014)Макроэкологические и макроэволюционные закономерности травоядности листьев у сосудистых растений. Proc Roy Soc B 281: 1–7. https://doi.org/10.1098/rspb.2014.0555

    Статья Google ученый

  • Wagner H, Bladt S (1996) Анализ лекарственных препаратов растений: атлас тонкослойной хроматографии, 2-е изд.Springer-Verlag, Берлин. https://dx.doi.org/10.1007/978-3-642-00574-9

    Книга Google ученый

  • Watkins JE Jr, Kawahara AY, Leicht SA, Auld JR, Bicksler AJ, Kaiser K (2006) Ламинарная чешуя папоротника защищает от фотоингибирования от избыточного света. Ам Ферн J 96: 83–92. https://doi.org/10.1640/0002-8444(2006)96[83:FLSPAP]2.0.CO;2

    Статья Google ученый

  • Винклер М., Хюльбер К., Мелтретер К., Гарсия-Франко Дж., Хитц П. (2005) Травоядные эпифитные бромелиевые, орхидеи и папоротники в мексиканском горном лесу.Дж. Троп Экол 21: 147–154. https://doi.org/10.1017/S0266467404002081

    Статья Google ученый

  • Райт И. Дж. и др. (2004) Мировой спектр экономики листьев. Природа 428: 821–827. https://doi.org/10.1038/nature02403

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • Zhou TS, Ye WC, Wang ZT, Che CT, Zhou RH, Xu GJ, Xu LS (1998) ß-карболиновые алкалоиды из Hypodematium squamuloso-pilosum .Фитохимия 49: 1807–1809. https://doi.org/10.1016/S0031-9422(98)00232-5

    Статья пабмед КАС Google ученый

  • «Альтер-эго»: у Мии Чериз Холл, также известной как Ферн, был диагностирован синдром Туретта

    Если ‘Alter Ego’ до сих пор что-то и доказало, так это то, что это сцена, открытая для всех, кто увлечен пением и сосредоточен именно на этом. Шоу позволяет исполнителям творчески подходить к своим аватарам, позволяя им объединить свой певческий талант со своим сценическим образом.Все дело в том, чтобы найти правильный баланс и избавиться от запретов.

    С Аланис Мориссетт, Ником Лаше, Граймсом и will. i.am в качестве судей шоу; они ищут следующую цифровую суперзвезду, которая сможет поразить публику своим талантом и сценическим мастерством. Миа Чериз Холл и ее альтер-эго Ферн произвели на них сильное впечатление — и вот почему.

    СВЯЗАННЫЕ СТАТЬИ 

    «Альтер-эго»: Исраа Дарвич рассказывает о трудностях американки ливанского происхождения пение на сцене часто приводит к тому, что ее осуждают.У Холла синдром Туретта, и недавно ему поставили этот диагноз. Для тех из вас, кто интересуется, синдром Туретта — это расстройство нервной системы, которое заставляет человека совершать повторяющиеся движения или нежелательные звуки, часто известные как тики. Эти действия непроизвольны. Для Холла ее тики проявляются в виде писка и движений головы. Живое выступление заставляет людей больше сосредотачиваться на ее тиках, чем на ее певческом голосе.

    Видя, что она описывает себя как кроткого человека, «Альтер Эго» позволяет судить о ней только по ее выступлению и не отвлекает людей от ее пения. Ей нравится идея, что ее голос теперь на первом месте. В детстве у нее никогда не было образца для подражания, который выглядел бы и звучал как она, и поэтому она хотела быть им для людей, смотрящих шоу. Она также отметила, что победа для нее станет любовным письмом людям с синдромом Туретта. Холл исполнил песню Элли Голдинг «Love Me Like You Do». Посмотреть ее выступление можно здесь.

     

    Судьи были удивлены, увидев, насколько мощной она была вокально, и были глубоко впечатлены ее использованием Альтер-Эго, увидев, что Холл дал ее персоне, Ферн, крылья, которые позволили ей взлететь посреди песни.Как объяснил will.i.am, шоу задумано как брак между исполнителем и альтер-эго, и Холл именно это и сделал. Хотя она обеспечила себе место в Алмазе, ее сбила другая участница Сирена. Тем не менее, зрителям в студии понравилось ее выступление, и они проголосовали за нее, что позволило ей пройти в следующий раунд.

    Смотрите первый сезон сериала «Альтер Эго» по средам в 9/8 на канале Fox.

    Синдром папоротника: Симптом папоротника

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.